Key words: platelets, platelet granules, low-dose irradiation, activation of platelets, degranulation of platelets. For citations: Makarov M.S., Khvatov V.B. Morphofunctional properties of human platelets exposed to
in situ low-intensity laser
irradiation.
Lasernaya Medicina. 23 (2): 26–31. [In Russ.].
Contacts: Makarov M.S., e-mail: mcsimmc@yandex.ru
Введение Низкоинтенсивное лазерное излучение (НИЛИ)
в видимой части спектра способно стимулировать мно-
гие процессы в клетках человека [2, 8, 18]. Показано,
что облучение диплоидных клеток монохроматичным
красным светом (630–638 нм) повышает их пролифера-
тивную и миграционную активность [8, 15], запускает
работу систем внутриклеточного сигналинга [2, 16],
в условиях
in vivo стимулирует процессы ангиогене-
за, способствует улучшению состояния пациентов при
острых отравлениях, панкреатите, холецистите и дру-
гих патологиях [3, 7, 8, 11]. Клинический эффект фото-
модификации крови в значительной степени основан
на увеличении активности клеточных компонентов
крови, в частности тромбоцитов [11, 18]. Считается,
что видимый свет в фиолетово-сине-зеленой области
модулирует агрегационную активность тромбоцитов,
а красный цвет – подавляет [7, 10, 12]. Однако эти ис-
следования проводились без подробного морфофунк-
ционального анализа клеток. Адекватно оценить мор-
фофункциональный статус тромбоцитов, облученных
НИЛИ, можно с помощью микроскопических методов
исследования, включающих витальное (прижизненное)
окрашивание клеток [5, 13].
Цель работы – изучить морфофункциональные
свойства тромбоцитов человека, облученных
in situ мо-
нохроматическим светом разной длины волны.
Материал и методы Исследовали тромбоциты доноров крови, получен-
ные путем автоматического афереза на сепараторе крови
Trima Accel (Терумо БСТ, США). Для морфофункцио-
нального анализа тромбоцитов использовали оригиналь-
ный метод, основанный на витальном окрашивании кле-
ток трипафлавином и акридиновым оранжевым с после-
дующим их анализом во флуоресцентном микроскопе [5].
Витальное окрашивание позволяет оценить структурную
целостность и функциональную активность тромбоцитов
без нарушения их жизнеспособности. Суспензию с ви-
тально окрашенными тромбоцитами в объеме 10–20 мкл
наносили на предметное стекло, накрывали покровным
стеклом (толщина 0,2 мм), после чего
in situ проводили
низкоимпульсное облучение с помощью лазерной ус-
тановки в составе конфокального микроскопа «Nikon
D-Eclipse C1» (Nikon, Япония) под объективом ×4. Для
облучения использовали модулированный ультрафиоле-
товый свет (λ = 408 нм, плотность мощности 40 мВт/см
2
,
частота 150 Гц), голубой свет (λ = 488 нм, плотность
мощности 20 мВт/см
2
), зеленый свет (λ = 543 нм, плот-
ность мощности 20 мВт/см
2
, частота 80 Гц) и красный
свет (λ = 637 нм, плотность мощности 5, 10 и 20 мВт/см
2
,
частота 80 Гц). Продолжительность облучения состав-
ляла 0,5–60 мин. В процессе морфофункционального
исследования тромбоцитов до и после облучения опреде-
ляли содержание адгезивно активных клеток с гранулами
(биологически полноценные тромбоциты), оценивали
общую морфологию тромбоцитов и рисунок распреде-
ления в них гранул, наличие и размер тромбоцитарных
агрегатов. Полученные данные обрабатывали с помощью
методов вариационной статистики с использованием па-
кета программ «Microsoft Excel 2000».
Вычисляли сред-
ние арифметические значения (M) и среднеквадратич-
ные отклонения (σ). Для оценки различий использовали
t-критерий Стьюдента и критерий хи-квадрат для малых
выборок. Различия значений считали достоверными при
уровне значимости более 95% (р < 0,05).