Лекции  Т. И. Самойлова арбовирусные инфекции и биотерроризм

109



к  осмыслению  этой  вспышки,  поскольку  ранее  безвредный 

тери и, самое главное, изнурительные врожденные дефекты 

и неврологические проблемы, подтверждая известный воен-

ный принцип – никогда нельзя недооценивать своего против-

ника. В Латинской Америке и Карибском бассейне проживает 

около 500 млн. человек в регионах, подверженных риску пе-

редачи  ВИЗ,  поэтому  существует  необходимость  постоянных 

инвестиций в здравоохранение [15].

Распространение  ВИЗ  в  Республике  Беларусь  в  настоя-

щее время маловероятно в связи с отсутствием на территории 

страны  переносчиков,  однако  случаи  завоза  из  эндемичных 

стран  исключить  нельзя.  Это  обусловливает  необходимость 

принятия  превентивных  мер,  в  т.  ч.  наличие  современных 

методов  для  своевременного  и  эффективного  выявления 

возбудителей тропических лихорадок в пробах от пациентов. 

В РНПЦ эпидемиологии и микробиологии в настоящее время 

имеются  необходимые  комплектующие  и  разработана  тех-

нология  диагностики  вируса  Зика  с  использованием  метода 

ПЦР.  Порядок  забора,  транспортировки  и  тестирования  био-

логического материала от пациентов с подозрением вирусной 

трансмиссивной лихорадки Денге, Чикунгунья, Зика и других 

арбовирусных  инфекций,  а  также  оперативная  информация  

о  санитарно-эпидемиологической  ситуации  в  мире,  связан-

ной  с  распространением  инфекций,  размещается  на  сайте 

центра – www.belriem.by.

Лабораторная  диагностика. 

Основывается  на  выделе-

нии возбудителя и выявлении прироста антител в сыворотках 

крови больных. Материалом, в котором с наибольшей веро-

ятностью может содержаться вирус, является кровь и ликвор 

больного. При этом материал следует брать как можно рань-

ше, в самом начале заболевания, в период высокой лихорад-

ки.  Оптимальными  сроками  для  выделения  вируса  являются 

первые 2–3 дня лихорадочного периода. В случае летального 

исхода  должен  быть  использован  секционный  материал  –  ку-

сочки  мозга  (желательно  обследовать  каждый  отдел  мозга 

раздельно),  печени,  легких,  селезенки,  почек.  У  обследован-

ных больных кровь берут стерильно из локтевой вены шпри-

цем в объеме не менее 5 мл в стерильную пробирку и делят 

на 2 части: одну, для выделения вируса, сразу же заморажи-

вают, другую – с целью получения сыворотки для серологиче-

ских исследований, ставят на 1,5 часа в термостат при 37 

о

С 

или на сутки в холодильник при +4 

С. После выдержки в тер- 

мостате  (холодильнике)  кровь  центрифугируют  в  течение  

20 мин при 1500 об/мин. Сыворотку отбирают в стерильный 

флакон и хранят в замороженном состоянии до момента ис-

следования. Если исследования проводят в течение 3–4 дней 

после  получения  сыворотки,  замораживать  ее  не  следует. 

Поскольку  повторное  замораживание  и  оттаивание  разру- 

шает  антитела,  рекомендуется  разлить  сыворотку  на  не-

сколько  небольших  порций  для  одноразового  использования 

(по 0,1–0,2 мл). Спинномозговая жидкость берется при помо-

щи  спинномозговой  пункции  квалифицированным  врачом-

специалистом. Полученный материал помещают во флаконы, 

этикетируют  и  ставят  в  контейнер  со  льдом  для  транспорти-

ровки в вирусологическую лабораторию. Контейнер закрыва-

ют плотно крышкой, заклеивают лейкопластырем, обрабаты-

вают  дезраствором.  Сопроводительный  документ  (оформля-

ется  в  2-х  экз.),  один  остается  в  учреждении,  направившим 

материал.  Документ  должен  содержать  следующие  данные: 

наименование  лаборатории,  куда  направляется  материал; 

наименование материала и вид исследования; фамилия, имя  

и отчество больного; пол и возраст; диагноз; дата заболевания; 

дата  и  время  забора  материала;  наименование  медучреж-

дения, забиравшего материал; фамилия и должность забирав-

шего  материал  и  наименование  медучреждения  направив-

шего материал.

Для  выделения  арбовирусов  используют  новорожден-

ных  белых  мышей,  а  также  перевиваемые  (Vero,  ВНК-21, 

ПЭС, СПЭВ) и первично трипсинизированные культуры клеток 

(ФЭК) и др. Универсальным методом выделения вирусов явля-

ется заражение новорожденных белых мышей в мозг, иногда 

комбинировано в мозг и подкожно или в мозг и внутрибрю-

шинно. Такой метод дает возможность ввести большой объем 

исследуемого  материала  и  повышает  число  положительных 

находок.  Мыши  заболевают  в  зависимости  от  вида  вируса  

и его количества в исследуемом материале, начиная с 36 ч  

и кончая 10–14 сутками. Для последующих пассажей исполь-

зуют мозг заболевших мышей, взятых на высоте клинических 

проявлений. Из инфицированного мозга готовят антигены для 

идентификации  выделенных  арбовирусов  в  серологических 

реакциях (РСК, РГА, РТГА, РН). В качестве наиболее быстро-

го экспресс метода диагностики арбовирусных инфекций ис-

пользуют метод ПЦР, позволяющий выделять вирусные РНК. 

Профилактика. 

С целью предотвращения заражения лю-

дей КЭ и другими арбовирусными инфекциями предусмотре-

ны  меры  неспецифической  и  специфической  профилактики, 

которые предусматривают оздоровление природных комплек-

сов, расположенных вокруг населенных пунктов, санаториев, 

баз отдыха, детских летних оздоровительных лагерей, садово-

огороднических кооперативов и др. [6].

Таким образом, на основании проведенных нами иссле-

дований, показано, что в республике происходит циркуляция 

арбовирусов,  ответственных  за  возникающие  опасные  ин-

фекции,  которые  представляют  наибольшую  опасность  при 

биотеррористической атаке для мирного населения. 

Для  успешного  решения  проблемы  арбовирусных  ин-

фекций в первую очередь необходимо создание Националь-

ного  центра  по  контролю  за  арбовирусными  инфекциями,  

в задачи которого будут входить: разработка, освоение и вне-

дрение наиболее чувствительных современных методов лабо-

раторной  диагностики,  подготовка  высококвалифицирован-

ных специалистов. Созданная ранее в лаборатории экологии  

и эпидемиологии арбовирусных инфекций коллекция арбови-

русов,  включающая  как  эталонные,  так  и  выделенные  в  РБ  

и за ее пределами штаммы (более 80 изолятов) из различных 

семейств, является базой для проведения научно-исследова-

тельской  работы  и  производства  диагностических  тест-сис-

тем.  Использование  коллекции  вирусов  в  производственных 

целях сэкономит средства, необходимые для закупки импорт-

ных диагностикумов. 

В целях обеспечения безопасности населения республи-

ки необходимо:

–  разработать  научно  обоснованные  программы  по 

свое временной  специфической  диагностике  и  иммунизации 

населения с целью создания заслона на путях проникновения 

инфекций в Беларусь;

–  обеспечить  разработанную  программу  соответству- 

ющей системой финансирования на различных уровнях;

–  не  допустить  снижения  национальной  безопасно- 

сти страны.

Литература

1. Венгеров, Ю. Я., Фролочкина Т. И., Жуков А. Н. и др. Инфекция, 

вызываемая  вирусом  лихорадки  Западного  Нила,  как  клиническая  

и эпидемиологическая проблема // Эпидемиология и инфекционные 

болезни. – 2000. – № 4. − С. 27–31.

2.  Вирусные  болезни,  передаваемые  членистоногими  и  гры-

зунами: доклад научной группы ВОЗ. – Женева: ВОЗ, 1985. – 120 с.

3.  Вотяков,  В.  И.,  Титов  Л.  П.,  Злобин  В.  И.  и  др.  Гено-  и  фе-

нотипическая  гетерогенность  вируса  клещевого  энцефалита  и  про-

бле мы специфической профилактики // Вакцины и иммунизация: ма-

териалы V Междунар. форума по глобальной вакцинологии. − Минск, 

2001. − С. 19.

110

 

 

•  

жүктеу/скачать 319,74 Kb.

Достарыңызбен бөлісу: