О книге Special for Dabl-v aka Эукариот Фрида Карловна Черкес, Лина Борисовна Богоявленская, Наталья Александровна Бельская – Микробиология

верхней и нижней частью держателя. Смонтированный фильтр укрепляют в 
резиновой пробке, вставленной в горлышко колбы Бунзена. В отводную 
трубку колбы, которую присоединяют к вакуумному насосу, вставляют ватный 
тампон. Подготовленную установку обертывают бумагой и стерилизуют в 
автоклаве под давлением 1 атм в течение 20-30 мин. Весь прибор в собранном 
виде называют также фильтром Зейтца (рис. 13). 
 
Рис. 13. Фильтр Зейтца 
Непосредственно перед фильтрованием отводной конец колбы Бунзена 
соединяют резиновой трубкой с масляным или водоструйным насосом. Места 
соединения различных частей заливают парафином для создания 
герметичности. В цилиндр аппарата наливают фильтруемую жидкость и 
включают в действие насос, создающий вакуум в приемнике. В результате 
образующейся разности давлений фильтруемая жидкость проходит через поры 
фильтра в приемник, а микробы остаются на поверхности фильтра. 
Мембранные фильтры перед употреблением стерилизуют кипячением в 
дистиллированной воде. Чтобы предупредить скручивание фильтров, их 
сначала помещают в дистиллированную воду, подогретую до температуры 50-
60° С, и кипятят на слабом огне 30 мин, 2-3 раза меняя воду. Держатель и 
приемник фильтра стерилизуют заранее, прибор монтируют в асептических 
условиях. Чтобы не порвать мембранный фильтр о металлическую сетку, под 
него кладут кружки стерильной фильтровальной бумаги. Затем стерильным 
пинцетом с гладкими кончиками берут мембранный фильтр из стерилизатора 
и помещают на опорную сетку блестящей поверхностью вниз. 

Простерилизованные в автоклаве свечи (Шамберлана) соединяют 
посредством резиновой трубки с приёмником и опускают в сосуд (чаще 
цилиндр) с фильтруемой жидкостью. Фильтрация происходит при помощи 
вакуумного насоса. В приемник поступает стерильный фильтрат, а бактерии 
задерживаются порами свечи. 
Мембранные и асбестовые фильтры рассчитаны на одноразовое 
использование. Свечи после употребления кипятят в водопроводной воде, 
затем прокаливают в муфельной печи. 
Перед последующим употреблением свечи проверяют на целостность. 
Свечу опускают в сосуд с водой и пропускают воздух. Если на поверхности 
свечи выступают пузырьки воздуха, значит в свече образовались трещины и 
она непригодна. 
Контрольные вопросы 
1. В чем заключается метод стерилизации фильтрованием? Что стерилизуют 
этим методом? 
2. Какие бактериальные фильтры Вы знаете? Как монтируют прибор для 
фильтрования, какие условия необходимо соблюдать? 
Химические способы 
Этот вид стерилизации применяют ограниченно, и он служит в основном 
для предупреждения бактериального загрязнения питательных сред и 
иммунобиологических препаратов (вакцин и сывороток). 
К питательным средам чаще всего прибавляют такие вещества, как 
хлороформ, толуол, эфир. При необходимости освободить среду от этих 
консервантов ее нагревают на водяной бане при 56° С (консерванты 
испаряются). 
Для консервирования вакцин, сывороток пользуются мертиолатом, борной 
кислотой, формалином и т. д. 
Биологическая стерилизация 
Биологическая стерилизация основана на применении антибиотиков. Этот 
метод используют при культивировании вирусов. 
Контрольные вопросы 
1. Что такое химическая стерилизация и когда ее используют? 
2. Что такое биологическая стерилизация? 

Основные способы стерилизации представлены в табл. 4. 
 
Таблица 4. Основные способы стерилизации 
1
(
Стерилизация неполная: в стерилизуемом материале сохраняются споры.
) 
2
(
Стерилизация неполная: в стерилизуемом материале сохраняются вирусы.
) 
Дезинфекция 
В микробиологической практике применяют различные дезинфицирующие 
вещества: 3-5% растворы фенола, 5-10% растворы лизола, 1-5% растворы 
хлорамина, 3-6% растворы перекиси водорода, 1-5% растворы формалина, 
растворы сулемы в разведении 1:1000 (0,1%), 70° спирт и др. 
Дезинфекции подвергают отработанный патологический материал (гной, 
кал, моча, мокрота, кровь, спинномозговая жидкость) перед сливом его в 
канализацию. Обеззараживание проводят сухой хлорной известью или 3-5% 
раствором хлорамина. 
Загрязненные 
патологическим 
материалом 
или 
культурами 
микроорганизмов пипетки (градуированные и пастеровские), стеклянные 
шпатели, предметные и покровные стекла опускают на сутки в стеклянные 
банки с 3% раствором фенола или перекиси водорода. 
По окончании работы с заразным материалом лаборант должен обработать 
дезинфицирующим раствором рабочее место и руки. Поверхность рабочего 
стола протирают кусочком ваты, смоченным 3% раствором фенола. Руки 
дезинфицируют 1% раствором хлорамина. Для этого ватный шарик или 
марлевую салфетку смачивают дезинфицирующим раствором и протирают 
левую кисть, потом правую, а затем моют руки теплой водой с мылом. 
Выбор дезинфицирующего вещества, его концентрация и длительность 
воздействия (экспозиция) зависят от биологических свойств микроба и от той 
среды, в которой будет происходить контакт дезинфицирующего вещества с 
патогенными микроорганизмами. Например, сулема, фенол, спирты 

непригодны для обеззараживания белковых субстратов (гной, кровь, мокрота), 
так как под их влиянием происходит свертывание белков, а свернувшийся 
белок предохраняет микроорганизмы от воздействия дезинфицирующих 
веществ. 
При дезинфекции материала, инфицированного споровыми формами 
микроорганизмов, применяют 5% раствор хлорамина, 1-2,5% растворы 
активированного хлорамина, 5-10% растворы формалина и другие вещества. 
Дезинфекцию, которую проводят на протяжении всего дня по ходу работы, 
называют текущей, а по окончании работы - заключительной. 

жүктеу/скачать 14,39 Mb.

Достарыңызбен бөлісу: