Х а б а р ш ы с ы в е с т н и к государственного

154 
 
0
100
200
300
400
500
40 мг/л
100 мг/л
250 мг/л
средний  вес  растений, мг
сод
ерж
ан
ие
 ги
дро
ли
за
та
 
ка
зе
ина
Гала
Невский
Розара
 
Рисунок 3. Средний вес культуральных растений картофеля в зависимости  
от дозировки гидролизата казеина 
 
При  этом  увеличение  массы  растений  при  повышении  дозировки  препарата  гидролизат 
казеина наблюдалось у регенерантов всех изучаемых сортов. Так у регенерантов сорта Розара  при 
увеличении дозировки до 100 мг/л наблюдалось увеличение среднего веса  в среднем на 51 % , в при 
дозировке  250  мг/л  на  123  %,  то  есть  более  чем  в  2  раза.  У  регенерантов  сорта  Невский  при 
увеличении дозировки до 100 мг/л наблюдали  увеличение среднего веса  в среднем на 58 %, в при 
дозировке  250  мг/л  на  127  %.  У  регенерантов  сорта  Гала  при  увеличении  дозировки  до  100  мг/л 
наблюдали  увеличение среднего веса  в среднем на 64 %, в при дозировке 250 мг/л на 129 %.  
Таким  образом,  можно  сделать  вывод,  что  регенеранты  картофеля  сортов  Невский,  Гала, 
Розара    при  увеличении  концентрации  гидролизата  казеина  в  питательной  среде  от  40  мг/л  до  250 
мг/л имеют тенденцию к увеличению как количества междоузлий, так и общего веса растений. При 
дозировке  100  мг/л,  количество  междоузлий  у  регенерантов  в  среднем    увеличилось  на    39  %,  вес 
растений    на  58  %  .    При  дозировке  250  мг/л  количество  междоузлий  у  регенерантов  в  среднем  
увеличилось на  63 %, вес растений  на 126 %, то есть более чем в 2 раза.   
Таким образом, при  изучении влияние дозировок препарата гидролизат казеина 40 мг/л, 100 
мг/л,  250  мг/л  в  составе  культуральной  среды  MS  на  рост  и  развитие  регенерантов  картофеля 
выявлено,  что  оптимальной  для  изучаемых  сортов  Невский,  Розара,  Гала  является  дозировка 
препарата  гидролизат  казеина  250  мг/л.  При  этой  концентрации  наблюдается  наибольший  прирост 
биомассы растений и увеличение количества междоузлий. 
Результаты  экспериментов  доказывают,    что  препарат  гидролизат  казеина  оказывает 
значительное влияние на морфогенез культуральных растений картофеля, к частности на образование 
листьев  и  наращивание  биомассы  регенерантов,  что  имеет  важное  значение  как  для  повышения 
общей  резистентности  растений  in  vitro,  так  и  для  повышения  коэффициента  микроклонального 
размножения при тиражировании сортов в первичном семеноводстве.  
 
Литература 
1.  Бутенко,  Р.Г.  Культура  изолированных  тканей  и  физиология  морфогенеза  растений  /  Р.Г. 
Бутенко —М.:«
Наука»,1964.—272с. 
2. Величко Н.А. Научные основы индуцированного синтеза алкалоидов в клеточной культуре 
Catharanthus Roseus L.(Don): дис. доктора т.н. -  Красноярск. – 2004. – 306 с. 
3.  Ozyigit  I.I.,  Gozukirmizi  N.,  Semiz  B.D.  Genotype  dependent  callus  induction  and  shoot 
regeneration in sunfl ower (Helianthus annus L.) // African Journal of Biotechnology. – 2007. – Vol. 6 (13). 
– P. 1498–1502. 
4.  Choi  Y. E. Production of plantlets of  Eleutherococcus sessiliflorus via somatic embryogenesis 
and successful transfer to soil / Y.-E. Choi, S.K. Ko, K.S. Lee, E.-S. Yoon // Plant Cell, Tissue and Organ 
Culture. 2002. - V.69. -P. 201-204. 
5.  Трофимец  -JI.H., 
Остапенко Д.П.,  Бойко  В.В.  и  др.  Оздоровление  и  ускоренное 
размножение семенного картофеля. — Методические рекомендации. М., 1985. - с. 35. 
6.  Артюхова  С.И.,  Киргизова  И.В.  Модификации  питательной  среды  с  использованием 
биотехнологических  методов  микроклонального  размножения  картофеля  для  культивирования  в 
Омской области // Омский Научный Вестник, № 134 / 2014 С.187-191 

155 
 
7. Бексеитов Т.К., Аникина И.Н., Джаксыбаева Г.Г. Использование препарата эпибрассинолид 
при  выращивании  картофеля  in  vitro  //  Вестник  Семиполатинского  государственного  университета 
им. Шакарима. Семей – 2015. № 1 (69), с. 32-35 
8.  Лобачев  Ю.В.,  Костина  Е.Е.,  Ткаченко  О.В.  Влияния  консистенции  питательной  среды  и 
генетических факторов на морфогенез подсолнечника in vitro // Международный журнал прикладных 
и фундаментальных исследований. – 2014. – № 3 – С. 60-61  
9.  Шорников  Д.Г.  Совершенствование  технологии  размножения  редких  садовых  растений  в 
культуре in vitro и оценка их потенциала устойчивости к абиотическим стрессорам: дис.. канд. с.-х. н. 
-  Мичуринск.2008 – 192 с. 
10. Palacios  N. Regeneration of  Lonicera tatarica plants via adventitious organogenesis 
fromcultured stem explants / N. Palacios, P. Christou, M.J. Leech // Plant Cell Rep. 2002. - V.20. - № 9. - 
P.808-813. 
 
КАЗЕИННІҢ ГИДРОЛИЗАТЫ IN VITRO КАРТОБЫНЫҢ МОРФОГЕНЕЗІНЕ ӘСЕРІ                             
И. Н. Аникина,  К. С. Исаева, М. Е. Жагипарова 
 
Мақалада  in  vitro  картобының  өсіп-өнуі  және  козеиннің  гидролизат  препараты  өсуіне 
қалай  әсер  ететіні  зерттеліп  ұсынылған.  250  мг/л    MS  ортасында  препараттың  мөлшерін 
көбейту, өсуіне байланысты регенираторлардың буынаралық санын 2-2,5 есе артуына ықпалын 
тигізеді. Соңында, казеиннің гидролизаты in vitro картобының морфогенезінің индукторы болып 
табылады. 
 
INFLUENCE OF THE CASEIN HYDROLYZATE ON MORPHOGENESIS                                 
POTATOES IN VITRO                                                                                                                                       
I.Anikina, K.Isaeva M. Zhagiparova 
 
The article presents a research on influence of casein hydrolyzate on growth and development of 
potato  in  vitro  plants.  Increasing  doses  of  the  drug  to  200  mg  /  l  in  MS  medium  causes  an  increase  in 
number  of  regenerants  internodes  2.5  times,  depending  on  the  grade.  Thus  casein  hydrolyzate  is  an 
inducer of potato in vitro morphogenesis.  
 
 
УДК 576.31 
Г.Т.Тусупбекова, М.М.Омаров 
Инновационный Евразийский университет города Павлодар 
 
МОРФОЛОГИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА КОРКОВОГО СЛОЯ НАДПОЧЕЧНИКОВ 
КРЫС В УСЛОВИЯХ ВОЗДЕЙСТВИЯ НА ОРГАНИЗМ ЛИНДАНА 
 
Аннотация: 
анализ 
гистологических 
препаратов 
ткани 
надпочечных 
желез 
экспериментальных  животных  в  условиях  воздействии  на  организм  линдана,  свидетельствует  об 
ингибирующем его влиянии на клеточные структуры  как в остром, так и в хроническом опытах.  
 
Ключевые  слова:  надпочечные  железы,  клубочковая  (пучковая,  сетчатая)  зона 
надпочечников, мозговой слой надпочечников, линдан (гамма-ГХЦГ).   
 
В  последние  десятилетия  ХХ  века  наиболее  широко  применялись  в  народном  хозяйстве 
многих  стран  хлорорганические  пестициды,  в  первую  очередь  дихлордифенилтрихлорэтан  (ДДТ)  и 
гексахлорциклогехсан  (ГХЦГ,  линдан).  Широкая  популярность  этих  соединений  была  обусловлена 
их  высокой  токсичностью,  устойчивостью  во  внешней  среде  и  экономической  эффективностью. 
Высокая персистентность этих соединений, наряду со способностью к кумуляции в различных тканях 
организмов  обусловили  необходимость  оценки  и  прогнозировании  опасности  хлорорганических 
пестицидов  для  человека  и  окружающей  среды,  а  также  отдаленных  последствий  применения 
препарата [1].  
Хотя в настоящее время ГХЦГ не производится, тем не менее, имеются сообщения о том, что 
он представляет 
определенную санитарно-гигиеническую опасность в качестве потенциального 
загрязнителя  продуктов  питания  [3].  Боярова  М.Д.  с  соавт.  приводит  данные  об  уровне 

156 
 
содержания    хлорорганических  пестицидов  в  морских экосистемах  [2].  Имеются  сообщения  об 
использовании  линдана  в  борьбе  с  вредителями  хвойных  растений  [4].  Таким  образом,  проблема 
накопления пестицидов в биосфере остается актуальной.  
Также имеются  сообщения об ингибирующем влиянии гамма-ГХЦГ на содержание гормонов 
коркового  слоя  надпочечников  [5].    Исключительно  важная  роль  глюкокортикоидов  коры 
надпочечников  в  процессе  адаптации  организма  к  изменяющимся  условиям  окружающей  среды,  к 
действию  повреждающих  химических  факторов,  диктует  необходимость  детального  изучения 
условий  нарушения  образования  гормонов  и  выделения  их  в  кровь,  что  является  причиной 
возникновения ряда заболеваний и, в частности, эндокринных. 
С  учетом  вышеизложенного  было  проведено  исследование  с  целью  изучения  и 
цитологического описания клеточной структуры ткани надпочечников крыс в условиях однократного 
и длительного воздействия на организм линдана (гамма-ГХЦГ). 
В данной серии опытов 90 крысам вводили через зонд или скармливали с пищей гамма-ГХЦГ 
на протяжение 3-120 дней. В остром опыте животным вводилось 18 мг/кг препарата перорально. В 
хроническом  –  количество  скармливаемого  с  пищей  линдана  составляло  ежедневно  0,9  мг/кг 
(суммарная доза введенного препарата составила 90 мг/кг). По окончании опытов умерщвление всех 
опытных  животных  осуществлялось  ингаляцией  им  смертельных  доз  эфира  для  наркоза. 
Надпочечники  немедленно  извлекали,  освобождали  от  жировой  ткани  и  фиксировали  в  жидкости 
Буэна.  Депарафинированные  срезы  надпочечников  толщиной  4-5  мкм  окрашивали  гематоксилином 
Майера.  Препараты  подвергали  световой  микроскопии.  Контролем  служили  гистологические 
препараты  надпочечников  интактных  животных,  находившихся  в  аналогичных  лабораторных 
условиях с экспериментальными крысами. 
При  микроскопическом  исследовании  гистологических  препаратов  надпочечных  желез 
интактных животных достаточно отчетливо выявлялись корковый и мозговой слои железы, а также 
клетки  зон  коркового  слоя  (рис.1).  Хорошо  просматриваются  ядра  клеток  на  различных  стадиях 
митотического  деления,  а  также  зернистость  цитоплазмы  клеток  (рис.2).  Относительный  вес 
надпочечников в среднем составил 1:2997. 
 
            
 
 
Рисунок  1  –  Срез  ткани  надпочечника 
интактной  крысы.  Гематоксилин-эозин. 
Увеличение 7х20. 
Рисунок  2  –  Срез  ткани  надпочечника 
интактной 
крысы. 
Гематоксилин-эозин. 
Увеличение 7х40. 
 
При гистологическом исследовании надпочечных желез экспериментальных животных была 
обнаружена следующая картина. Наибольшие отличия были выявлены в гистологических препаратах 
надпочечников животных, подвергавшихся однократному воздействию гамма-ГХЦГ в дозе 18 мг/кг. 
При  этом  соотношение  коркового  и  мозгового  слоя  в  опытных  препаратах  не  отличались  от 
контрольных, но изменяется соотношение зон коркового слоя. Воздействие гамма-ГХЦГ на организм 
сопровождается  расширением  клубочковой  зоны  в  опытных  препаратах  по  отношению  к  другим 
зонам  (пучковой  и  сетчатой).  Наблюдается количественный  сдвиг  в  соотношении  клеток  в  сторону 
клубочковой  зоны  (рис.3).  Как  и  в  контрольных  препаратах  выявляются  ядра  клеток  на  различных 
стадиях  митотического  деления.  Вместе  с  тем  в  гистологических  препаратах  надпочечных  желез 
экспериментальных  животных  в  некоторых  случаях  были  выявлены  участки  пучковой  зоны 
состоящие из клеток, цитоплазма которых была мутной или менее вакуолизированной (рис.4).  

157 
 
 
                 
 
 
Рисунок 3 – Срез ткани надпочечника опытной 
крысы.  Воздействие  линдана    (18  мг/кг,  72 
часа). Гематоксилин-эозин. Увеличение 7х20. 
Рисунок  4  –  Срез  ткани  надпочечника 
опытной  крысы.  Воздействие  линдана    (18 
мг/кг,  72  часа).  Гематоксилин-эозин. 
Увеличение 7х20. 
 
Границы таких клеток не определяются, цитоплазма имеет большую плотность по сравнению 
с другими участками пучковой зоны, а также с клетками контрольных препаратом (рис.5). Отмечена 
реакция на введение в организм пестицида и со стороны соединительнотканной капсулы: в опытных 
препаратах  некоторое  ее  увеличение,  расширение  кровеносных  и  лимфатических  сосудов,  а  также 
увеличение  их  наполнения.  Все  эти  изменения  наблюдались  на  фоне  достоверного  уменьшения 
относительного веса надпочечников опытных животных (1:4577).  
Изменения, наблюдаемые в остром опыте, обнаруживаются и в гистологических препаратах 
надпочечных желез животных, подвергавшихся хроническому воздействию пестицида. Также можно 
отметить  расширение  клубочковой  зоны  коркового  слоя  по  отношению  к  другим  зонам,  хотя  и  в 
меньшей  степени,  чем  в  остром  опыте.  При  этом  граница  между  клубочковой  и  пучковой  зонами 
отчетливо  выделяется  благодаря  большей  концентрации  ядер  клеток  в  этой  области  и  снижению 
вакуолизации клеток (рис.6).  
     
 
 
Рисунок  5  –  Срез  ткани  надпочечника 
опытной  крысы.  Воздействие  линдана    (18 
мг/кг,  72  часа).  Гематоксилин-эозин. 
Увеличение 7х20. 
Рисунок  6  –  Срез  ткани  надпочечника 
опытной  крысы.  Воздействие  линдана    (90 
мг/кг, 
6 
мес.). 
Гематоксилин-эозин. 
Увеличение 7х20. 
 
В  клетках  пучковой  и  сетчатой  зон  увеличивается  мелкозернистая  вакуолизация.  Во  всех 
зонах  коркового  слоя  надпочечных  желез  более  или  менее  равномерно  расположены  клетки, 
содержащие  ядра  с  плохо  выраженной  оболочкой  (рис.7).  В  подавляющем  большинстве  случаев  в 
ядрах  таких  клеток  отсутствуют  ядрышки  или  они  гораздо  меньших  размеров;  ядерная  структура 
четко не выделяется; плотное расположение гранул хроматина. Ядро клетки, как правило, окружено 
небольшой  массой  цитоплазмы,  а  остальная  часть  клетки  представляет  собой  одну  или  несколько 
вакуолей. Клеточные границы четко не выражены (рис.8).  
 

158 
 
  
 
 
Рисунок  7  –  Срез  ткани  надпочечника 
опытной  крысы.  Воздействие  линдана    (90 
мг/кг, 
6 
мес.). 
Гематоксилин-эозин. 
Увеличение 7х20. 
Рисунок  8  –  Срез  ткани  надпочечника 
опытной  крысы.  Воздействие  линдана    (90 
мг/кг, 
6 
мес.). 
Гематоксилин-эозин. 
Увеличение 7х40. 
 
Также  отмечена  явная  реакция  со  стороны  соединительнотканной  капсулы:  расширение 
кровеносных  и  лимфатических  сосудов,  в  некоторых  случаях  с  признаками  повышения 
проницаемости  стенок  сосудов,  увеличение  их  наполнения.  В  хроническом  опыте  отмечено 
полнокровия  всего  органа  по  сравнению  с  контролем.  Указанные  изменения  выявлены  на  фоне 
достоверного увеличения относительного веса надпочечников (1:2497). 
Таким образом, результаты проведенного нами исследования по изучению морфологических 
характеристик  ткани  надпочечных  желез  экспериментальных  животных,  подвергнутых  как 
однократному,  так  и  длительному  воздействию  гамма-ГХЦГ,  свидетельствуют  о  том,  что  данный 
препарат способен оказывать ингибирующее воздействие на функциональное состояние изучаемого 
органа. Причем реакция коркового слоя надпочечных желез крыс на это воздействие в остром опыте, 
как  правило,  обнаруживается  со  стороны  цитоплазмы  клеток,  а  в  хроническом  –  в  структурных 
изменениях ядер клеток. 
ЛИТЕРАТУРА 
1
 
Боярова  М.Д.  Современные  уровни  содержания  хлорорганических  пестицидов  в  водных 
организмах  залива  Петра  Великого  (Японское  море)  и  озера  Ханка.  –  Автореферат  дисс…… 
Владивосток, 2008.  
2
 
Боярова  М  Д., Лукьянова О.Н.  Хлорорганические  пестициды  в  морских,  пресноводных 
и эстуарных видах  рыб  зал  Петра  Великого  //  Современное  состояние  водных  биоресурсов: 
Материалы науч.конф., Владивосток, 2008. – С.443-447. 
3
 
Жуленко  В.Н.,  Рабинович  М.И.,  Таланов  Г.А..  Ветеринарная  токсикология.  –  М:  Колосс, 
2011. – С. 34-72.  
4
 
Меры 
борьбы 
с 
хермесами 
[Электронный 
ресурс]. 
– 
2009. 
– 
URL: 
http://guslik.ru/adelgidae/nadsemeystvo-khermesovye-adelgoidea.html
 (дата обращения 21.07.2014) 
5
 
Shivanandappa T., Krishnakumari M. Histochemical and biochemical changes in rats fed dietary 
benzene hexachloride //Indian J.exp.Biol. –1981. –19. –N12. –P.1163-1168. 
 
АҒЗАҒА ЛИНДАН ӘСЕР ЕТУ ЖАҒДАЙЫНДА ЕГЕУҚҰЙРЫҚТЫЛАРДЫҢ БҮЙРЕК ҮСТЕ 
БЕЗІ ҚАБАТЫНЫҢ МОРФОЛОГИЯЛЫҚ СИПАТТАМАСЫ 
Г.Т.Тусупбекова, М.М.Омаров 
 
Ағзаға линдан әсер ету жағдайында эксперименталды жануарлар бүйрек үсті бездерінен 
жасалған гистологиялық препаратқа талдау жасау арқылы осы заттың жануар жасушасына 
әсері анықталды. 
 
MORPHOLOGICAL DESCRIPTION OF CORTEX OF ADRENAL GLANDS OF RATS UNDER 
AFFECTING ORGANISM OF LINDENE 
G.T.Tusupbekova, M.M.Omarov 
 
Analysis  of  histological  preparations  of  tissue  of  adrenal  glands  of  experimental  animals  under 
influence on the organism of lindane testifies its repressing influence on cellular structures both in sharp 
and in chronic experiments. 

159 
 
 
ӘОЖ: 582.711.713 (043) 
А.У.Утаубаева, З.Х. Кунашева, А.А.Тайрова 
М.Өтемісов атындағы Батыс Қазақстан мемлекеттік университеті, Орал қаласы 
 
БАТЫС ҚАЗАҚСТАН ОБЛЫСЫ ЖАҒДАЙЫНДАҒЫ ӨРІКТІҢ  
БИОЛОГИЯЛЫҚ ЕРЕКШЕЛІКТЕРІ 
 
Аталмыш  мақалада  Батыс  Қазақстан  облысының  құрғақ  дала  зонасы  жағдайындағы 
өріктің биологиялық ерекшеліктері, қазіргі кездегі интродукциялану жолдары сипатталған. 
 
Түйін сөздер: өрік, іріктемелер, фенофаза, өнімділік, жерсіндіру, Батыс Қазақстан облысы. 
 
Өрік  (Armeniaca  vulgaris  Lam.)    –  адамзат  ерте  кезден  бері  өсіріп  келе  жатқан  бағалы 
шырынды  жемісті,  сәндік,  тез  пісетін,  жоғары  өнімді,  агротехникалық  күй  талғамайтын,  тағамдық, 
дәрілік  және  жемісінің  тауарлық  қасиеттері  бар  өсімдік.  Соңғы  жүз  жылдықта  селекционерлердің 
және  көптеген  бақ  өсіруші  бағбандардың  үлкен  еңбектері  нәтижесінде,  өрік  Еуразияның  солтүстік 
бөлігіне және сонымен қатар, Ресейдің Орынбор, Волгоград және Қазақстанның батыс бөлігіне ене 
бастады [1]. 
Орал қаласының жер бедері Шығыс Европа жазықтығының оңтүстік шығысындағы  барлық 
облыстар  сияқты  әртүрлі  сипатта  болып  келеді.  Өйткені  ол,  Жалпы  Сырттың,  Орал  аңғар  бойы 
жазықтығының (Сырт алды кемері), Каспий маңы ойпатының және Жайық өзені аңғарының аумағын 
алып жатыр. 
Батыс  Қазақстан  облысының  топырақ  жабынында  негізінен  үстемдік  ететін  қоңыр  топырақ 
және  оның  түрлері;  облыстың  ең  солтүстігінде  –  оңтүстік  қара  топырақ  және  аз  қарашірікті  қара 
топырақтар  кездеседі.  Облыстың  солтүстік-шығыс  және  солтүстік-батыс  бөліктерінде  күңгірт  қара-
қоңыр  топырақтар  кең  таралған  (күңгірт  қара-қоңыр  топырақтағы  қарашірік  –  3,6-6,5  %).  Грунт 
сулары аз тұздалған 1-2 г/л, негізгі тереңдіктері – 15-30 м аралығын қамтиды [2]. 
Біздің 2014-2015 жылдардағы зерттеу объектіміз − Armeniaca vulgaris Lam. түрінің жергілікті 
формалары болып табылады. 
Зерттеу  жылдарында  Батыс  Қазақстан  облысының  солтүстігі,  солтүстік-батысы,  Ресеймен 
шекаралас  аудандары  және  қаланың  өзінің  айналасында  кең  таралған  өріктің  биологиясы  мен 
экологиясы  зерттелді.  Өрік  ағаштарының  жастары  және  жеміс  беруі  әртүрлі,  қала  маңына  тән 
территория  жағдайындағы  өрік  ағашының гүлдеуі  ‒  20  сәуір  –  10  мамыр  айлары  аралығында  өтті. 
Жаппай гүлдеудің орташа мерзімі – 26 сәуірден 15 мамыр аралығы болып табылады. Гүлдеу кезіндегі 
ауаның  температурасы  +8
0
  С  –ден  +17
0
  С  аралығында,  тәуліктік  орташа  температура  +11
0 
–ден  15
0
 
арасында болды. 
Қазақстан  территориясында  жерсіндірілген  өріктің  Краснощекий  Никитский,  Королевский, 
Хурмаи,  Арзами  іріктемелері  Батыс  Қазақстан  облысына  интродукциялық  жолмен  келіп  отыр.  Бұл 
формалар  қысқа  жоғары  төзімділігімен,  өнімділігімен  ерекшеленеді.  Ерте  пісетін  формалардың 
жемісінің пісіп жетілуі – шілденің бірінші (І), орташа пісетіндері – шілденің ІІ-ІІІ, ал кеш пісетіндері 
–  тамыздың  бірінші  (І)  декадаларында  тіркелді.  Ерте  пісетін  формаларының  гүлдеуінің  соңы, 
түйіннің  өсуінің  басталуынан  жемісінің  ерте-пісіп  жетілуі  барысының  фенофазасының  орташа 
ұзақтығы – 65-75, орташа пісетіні − 75-90 және кеш пісетіні – 90-105 тәуліктер аралығында болды. 
Бұл көрсеткіштер соңғы 15 жылда өзгеріссіз қалып отыр. Батыс Қазақстан облысы жағдайында өрік 
жақсы  пісіп  жетіледі,  алайда  жергілікті  өріктің  өнімділігі  жылдың  метеорологиялық  жағдайларына 
тәуелді келеді. Шектеуші метеофакторлар – қатал, ұзақ аяздар және гүлдеу кезеңі кезіндегі көктемгі 
қатырулар. 
 
Жеміс  беретін  өрік  ағаштарының  жылдық  даму  циклы  екі:  вегетациялық  және 
бұйыққан немесе тыныштықтағы кезеңдерден тұрады.
 
Мұндай жылдық даму кезеңі барлық жапырақ 
тастайтын  ағаштардан  байқауға  болады.  Кейде  мұндай  даму  кезеңдері  күнтізбелік  уақытпен  сәйкес 
келмейді.  Вегетациялық  кезеңде  жер  үсті  мүшелерінің  өсуі  көктемгі  шырын  қозғалысының 
басталуымен анықталады, бұл кезең бүршік жарумен сәйкес келеді; ал тамыр жүйесінің вегетациялық 
кезеңі көктемгі белсенді тамыр жаюмен күзгі, қысқы тамыр өсуінің тоқтау кезеңіне дейін жалғасады 
[3]. 
Жеміс ағаштарының жылдық даму циклы даму фазасы мен фенологиялық фазалардан тұрады, 
бұл фазалар жыл сайын жүйелі түрде қайталанып, бірін бірі алмастырып отырады. Өріктің жылдық 
даму циклін 9 негізгі даму  фазаларымен сипаттауға болады (кесте 1). 
 
 
 
 

160 
 
 
Кесте 1 − Өріктің дамуының фенологиялық фазалары 

жүктеу/скачать 5,02 Mb.

Достарыңызбен бөлісу: