Материал для исследования
1. Кровь.
2. Испражнения.
3. Моча.
4. Дуоденальное содержимое.
В зависимости от стадии болезни исследуют разный материал.
Исследованию могут быть также подвергнуты содержимое розеол, костный
мозг, мокрота и материал, полученный на вскрытии - кусочки органов.
При токсикоинфекциях материалом для исследования могут служить
промывные воды желудка, рвотные массы, остатки пищевых продуктов.
Способы сбора материала
Способы сбора материала
Независимо от характера взятого для исследования материала с момента
выделения чистой культуры исследование ведут по общей схеме.
Основные методы исследования
1. Бактериологический (рис. 43).
2. Серологический.
Рис. 43. Схема микробиологического исследования при брюшном тифе и
паратифах в разные периоды заболевания. I - 1-й период исследования
(гемокультура); II - 2-й период исследования (реакция Видаля); III - 3-й период
исследования (копрокультура)
Ход исследования
Первый день исследования
Первый день исследования
Второй день исследования
Вынимают чашки из термостата (инкубация 18-24 ч) и просматривают
выросшие колонии невооруженным глазом и при помощи лупы. Несколько (5-
6) подозрительных колоний выделяют на среду Олькеницкого или Рассела.
Посев производят следующим образом: снятую колонию осторожно, не
задевая края пробирки, вносят в конденсационную жидкость, затем штрихами
засевают всю скошенную поверхность среды и делают укол в глубину
столбика для выявления газообразования. Укол следует производить в центр
агарового столбика.
Пробирки с посевами ставят в термостат. Если исследуемый материал был
посеян на среду обогащения, то через 18-24 ч производят высев со среды
обогащения на чашки с дифференциальными средами. Дальнейшее
исследование ведут по общей схеме.
Таблица 32. Рост сальмонелл на дифференциально-диагностических средах
1
(
На месте снятых колоний остается черный след (изменяется цвет среды).
)
Третий день исследования
Вынимают пробирки с посевами из термостата и просматривают характер
роста.
В состав комбинированных сред входят лактоза, глюкоза, иногда мочевина
и индикатор. Расщепление глюкозы происходит только в условиях
анаэробиоза. Поэтому скошенная поверхность среды при расщеплении
глюкозы не изменяется, а столбик окрашивается в цвет, соответствующий
индикатору. Бактерии, расщепляющие лактозу и мочевину, изменяют цвет
всей среды.
Если выделенные культуры сбраживают лактозу или расщепляют мочевину,
меняя цвет всей среды, то они не являются сальмонеллами и можно дать
отрицательный ответ.
Культуру, расщепляющую только глюкозу, подвергают дальнейшему
изучению: делают мазки, окрашивают их по Граму и микроскопируют. При
наличии в мазках грамотрицательных палочек изучают их подвижность и
ферментативные свойства.
Подвижность можно определить в висячей капле или в раздавленной капле,
а также по характеру роста в полужидкой среде Гисса или в 0,2% агаре. При
наличии подвижности при посеве уколом рост на среде диффузный, среда
мутнеет.
Для выявления ферментативной активности производят посев на среды
Гисса, МПБ, пептонную воду. В пробирки с последними средами опускают
(под пробку) индикаторные бумажки для определения индола и сероводорода.
Делают также посев на лакмусовое молоко.
Четвертый день исследования
Учитывают биохимическую активность по результату ферментации
углеводных и других сред (см. табл. 33).
Таблица 33. Ферментативные свойства сальмонелл
Примечание. к - образование кислоты; кг - образование кислоты и газа; щ -
щелочение; + наличие свойства; - отсутствие свойства.
Определив морфологические, культуральные и ферментативные свойства
выделенной культуры, необходимо провести анализ антигенной структуры
(табл. 34).
Таблица 34. Сокращенная схема антигенной структуры сальмонелл (по
Кауфману - Уайту)
Серологическую идентификацию сальмонелл начинают с реакции
агглютинации на стекле с поливалентной О-сывороткой А, В, С, D, Е. При
отсутствии агглютинации выделенную культуру испытывают с поливалентной
О-сывороткой к редким группам сальмонелл. При положительной реакции с
одной из сывороток культуру испытывают с каждой О-сывороткой, входящей
в состав поливалентной, для определения О-серогруппы. Установив
принадлежность культуры к О-группе, определяют ее Н-антигены с
сыворотками первой, а затем второй фазы (табл. 35).
Таблица 35. Антигенная структура возбудителей брюшного тифа и
паратифов
Культуру сальмонелл тифа испытывают также с Vi-сывороткой.
Возбудители брюшного тифа, содержащие Vi-антиген, испытывают Vi-фагами
(их 86). Определение фаготипа имеет большое эпидемиологическое значение
(см. рис. 43).
Достарыңызбен бөлісу: |