Қазақстан республикасы білім жəне ғылым министрлігі

 
192
XXI  ғасырда  əлемдегі  қайта  құрулар,  экономиканы  дамытудағы  жаңа 
стратегиялық  бағдарламар,  қоғамның  ашықтығы,  оның  жедел  ақпараттануы  мен 
қарқынды дамуы білім беруге қойылатын талаптарды түбегейлі өзгертті. Сондықтан да 
ғылыми  -  техникалық  процесс  бүкіл  əлемде  «инновациялық  процесс»  -  ұғымымен 
тығыз  байланыста  болуды  талап  етеді.  Инновациялық  процесс  жаңа  бір  өнімнің 
алынуын  білдіреді  де,  ол  идеяның  пайда  болуынан  бастап,  тұрақты  түрде  жүзеге 
асырылуына дейінгі ұзақ жолды қамтиды. 
Қазақстан  Республикасының  «Білім  туралы  Заңында»:  «Білім  беру  жүйесінің 
негізгі  міндеттерінің  бірі  –  оқытудың  жаңа  технологияларын  енгізу,  білім  беруді 
ақпараттандыру,  халықаралық,  ғаламдық  коммуникациялық  желілерге  шығу»  –  деп 
көрсетілген.  Бұл  міндеттерді  жүзеге  асыру  барысында  білім  ордаларында  жаңа 
педагогикалық  технологияларды  пайдаланудың  негізгі  мақсатын  айқындап  алу  əрбір 
педагог үшін ақиқат болып отырғандығы даусыз.Сондықтан білім беру саласы да өзінің 
дамуы  үшін  жаңа  қадамдарға  баруда.  Жаңа  ақпараттық  технологиямен  орындалатын 
қызмет өзінің кез келген нақты формасында тиімдірек орындалады. 
Жаратылыстану ғылымдарының бір саласы –«Өсімдіктер физиологиясы» пəнінен 
лабораториялық  жұмыстарды  өткізуде  жаңа  инновациялық  əдістерді  қолданудың 
мақсаты,  жаңа  технологияны  қолдану  арқылы  білімнің  сапасын  көтеру,  білім  беру 
мазмұнын жаңарту, студенттердің мамандыққа баулу мехнизмін құру. 
Бұл пəнде инновациялық əдістерді қолдануда төмендегідей міндеттер шешіледі: 
- Студенттердің ақпараттық технологияны пайдалану мүмкіндіктерін жетілдіру; 
- Алған білімі мен түсінігін кəсіби деңгейде қолдану; 
- Студенттердің шығармашылық қабілеттерін дамытып, танымдық іс –əрекеттерін 
арттыру. 
Жаратылыстану 
пəндерінен 
жүргізілетін 
лабораториялық 
жұмыстарда 
инновациялық əдістерді қолдану жүйелі түрде оқу үдерісін құрудағы жаңа тəсілдердің 
бірі  ретінде  қарастырылады.  Студенттердің  өз  бетімен  жəне  оқытушының 
жетекшілігімен 
жүргізілетін 
жұмыстарын 
сапалы 
дамытуда 
компьютерлік 
бағдарламаларды  қолдану  үлкен  жетістіктерге  əкеледі.  Студенттер  алдымен  оқытушы 
көмегімен  қабылданатын  теориялық  білімді  игерген  соң,  практикалық  жақтарын 
игеруде «ассоциаграмма», «ой картасын құру», «миға шабуыл», «топтық тапсырмалар», 
«жоба қорғау»,  «пікірталас»,  «топтық жарыстар» т.б. инновациялық оқыту əдістерінің 
элементтерін  де  қолданады.  Мұндай  прогрессивті  педагогикалық  технологияларды 
қолдану студенттердің зерделік көрсеткіштерін көтеріп қана қоймай, оның өзіндік іс – 
əрекетін  қанаттандырып,  шығармашылық  жəне  ізденімпаздылық  қасиеттерін  де 
дамытады.  
Оқытушының  маңызды  міндеттерінің  бірі  –студенттің  шығармашылық 
потенциалын ашу жəне дамыту. Ал студенттің шығармашылық потенциалын ашудағы 
маңызды аспект – жобалар жасау.  
Өсімдіктер физиологиясы пəнін оқып білу лабораториялық сабақсыз мүмкін емес. 
Лабораториялық  сабақта  өсімдіктердің  əр  түрлі  систематикалық  топтар  өкілдері-  
химиялық  ерітінділердің,  жарықтың,  жылудың,  температураның  əсер  етуі  арқылы 
зерттеледі.  Сонымен  қатар  болашақ  биология  пəнінің  оқытушылары  –  бүгінгі 
студенттер  лабораториялық  сабақ  барысында  əр  түрлі  өсімдіктерді  зерттеу  тəсілін, 
түрлі  препараттар  дайындау  техникасын,  тəжірибе  жүргізу  əдістерін  меңгеріп 
дағдыланады.  Лабораториялық  сабақта  студенттер  дəрісте  алған  білімдерін  тереңдете 
бекітеді.  
Əрбір  студент  лабораториялық  сабақ  алдында  өзінің  жұмыс  орнын  дайындауға 
міндетті:  оптикалық  құралдар  (микроскоп),  құрал  –  сайман  жиынтығы,  суретке 
арналған альбом, карандаш т.б. құралдармен жабдықталады.   

 
193
Аталмыш  пəн  бойынша  жүргізілетін  лабораториялық  жұмыстардың  бірнешеуі 
жоба күйінде қорытындыланады. Себебі тəжірибеден алынатын қорытынды белгілі бір 
уақыт  аралығын  қамтиды.  Ал  осы  уақыт  аралығында  студенттер  бақылау,  талдау, 
есептеу  жұмыстарын  жүргізеді.Студенттер  өздерінің  жобаларын  жасауда  ғаламтор 
желісін  белсенді  пайдаланады.  Пəннің  бөлімдерін  аяқтау  барысында  міндетті  түрде 
қайталау,  бекіту  сұрақтары  қойылады.  Осы  элементтерді  жоба  жасау  барысында 
біріктіреді.  Əр  топ  тəжірибеден  алынған  қорытындыны  жобаға  енгізіп,  презентация 
түрінде  қорғайды.Бұл  кезде  студенттердің  бойында  топтық  шығармашылық  жұмысқа 
деген  қызығушылық,  позитивті  көңіл–күй  оянады.  Сонымен  қатар  интернет  желісі 
арқылы  тақырыпқа  сай  отандық,  шетелдік  ғалымдардың  видеофильмдері  тыңдалады, 
бұл студенттердің шығармашылық қабілеттерін шыңдауға септігін тигізеді. 
Енді,  өсімдіктер  физиологиясы  пəнінен  өткізілген  бір  лабораториялық  сабақтың 
өтілуіне қысқаша тоқталсақ: 
Сабақтың тақырыбы: «Су өсімдіктерінің дақылдары» 
Пəн:Өсімдіктер физиологиясы 
Топ, курс, мамандық:01305 – 01306 топтар, III курс «Биология» мамандығы. 
Сабақтың мақсаты:Smart – мақсат 
  нақты (Specific) – силлабус бойынша жүргізілетін лабораториялық тақырыптың 
мақсаты мен жұмыс барысын студенттерге таныстыру. 
  өлшемді  (Measurable)  –  100  минут  уақыт  ішінде    лабораториялық  жұмысты 
қорытындылау. 
  қол  жетімді  (Achievable)  –  шағын  топтарға  бөлініп,  лабораториялық 
жұмыстың қорытындысын жоба түрінде қорғау. 
  ақиқаттылық (Realistic) - үздік қорғалған шығармашылық жобаның нəтижесін 
баспа беттеріне жариялау. 
  уақыты  айқын  (Timed/Timed-bound)  -  10  күн  уақыт  ішінде  жобаны 
қорытындылау.  
Сабақты  өткізу  əдісі:  Өсімдіктер  физиологиясы  пəні  бойынша  жүргізілетін 
лабораториялық сабақта инновациялық əдістерді қолдану. 
Сабақтың  өтілу  барысы:  Ұйымдастыру  бөлімінде  лабораториялық  жұмыстың 
жоспары таныстырылады. 
Лабораториялық жұмыстың жоспары: 
- Сабақ мақсатымен таныстыру; 
- Топқа бөлу; 
- Ассоциаграмма. Ой картасын құру; 
- Миға шабуыл. Топтық тасырмалар; 
- Жоба қорғау. Пікірталас; 
- Эссе; 
- Бағалау; 
Өсімдіктердің  құрамына  кіретін  элементтер  олардың  өсіп  жетілуі  үшін 
қаншалықты  қажет  екендігін  анықтау  мақсатында,  сондай-ақ  бұл  элементтер 
өсімдіктердің  құрамына  кездейсоқ  енбеді  ме  екен  деген  сұрауға  жауап  беру  үшін 
өсімдіктерді  жасанды  ортада  өсіру  əдісі  қолданылады.  Өсімдіктерді  жасанды  ортада 
өсіру  методын  тұңғыш  рет  француз  ғалымы  Ж.Б.Буссенго  (1802-1887)  қолданды.  Бұл 
əдістің  мəні  мынада:  тəжірибе  жүргізілетін  өсімдіктер  сосудтарда  өсіріледі,  оны 
вегетациялық  сосудтар  деп  атайды.  Сосудтың  ішіне  топырақ  немесе  таза  жуылған, 
қыздырылған  құм  салынады,  немесе  су  құйылады.  Оған  қажетті  мөлшерде  қоректік 
ерітінді  құйылып,  өсімдік  отырғызылады.  Көптеген  зерттеушілер  қоректік  ерітінділер 
рецептін  жасап  шығарды.  Кноп,  Прянишников,  Гельригель  қоректік  ерітінділері 
пайдалануға аса тиімді ерітінділер болып табылады. 

 
194
Мысалы,  1  литр  Кноптың  қоректік  ерітіндісін  дайындау  үшін  кальций,  магний, 
калий  және  темір  тұздары  арнайы  мөлшерде  алынады.  Бұл  құрамға  кіретін  жеті 
элемент  ең  қажетті  элементтер  болып  саналады.  Алайда  тәжірибе  барысында 
пайдаланылатын  тұздар  мен  суды  тазарту  әдісінің  жетілдірілуіне  байланысты, 
өсімдіктердің  қалыпты  өсуі  үшін  басқа  да  көптеген  микро  және  макроэлементтердің 
керектігі анықталды.  
Тәжірибе барысында 4түрлі жасанды қоректік орта алынады. Атап айтсақ: 
•  Толық қоректік қоспа – Кноп ерітіндісі. Құрамы (CaNO
3 
– 1гр, KH
2
PO
4 
– 0,25гр , 
MgSO
4 
– 0,25гр , KCl – 0,125гр , FeCl – 5 тамшы). 
• Толық  қоректік  қоспа  –  Азоттан  өзге.  Құрамы(CaSO
4 
–  1,03гр,  KH
2
PO
4 
– 
0,25гр,MgSO
4 
– 0,25гр, FeCl –5 тамшы). 
• Толық  қоректік  қоспа  –  Фосфордан  өзге.  Құрамы(CaNO
3 
–  1гр,  KCl–  0,255гр, 
MgSO
4 
– 0,25гр, FeCl – 5 тамшы). 
• Толық қоректік қоспа – Калийден өзге. Құрамы(CaNO
3 
– 1гр, NaH
2
PO
4 
– 0,25гр, 
NaCl – 0,09 гр, MgSO
4 
– 0,25гр, FeCl – 5 тамшы)[2, 151б]. 
Тәжірибе барысында әр түрлі қоректік қоспада жүргізілген өсімдіктердің өсуі мен 
даму процесіндегі барлық ауытқушылықтарды 1 кестеден көруге болады. 
 
Кесте 1. Өсімдіктерді толық және толық емес қоректік қоспада өсіру. 
 
№ 
Қоректік орта 
Өскін 
тамыры 
Өскін 
сабағы 
Өскін жапырағы 
Толық жетілген 
өскін саны 
Ұзын дығы 
Ені 
1. 
Кноп 
(толық 
қоректік қоспа) 
А) 
12,5 
11,5 
3,5 
2,0 
13 
Б) 
6 
11 
1,5 
1 
11 
С) 
4 
8 
2 
0,8 
11 
Д) 
2,5 
10 
1 
0,5 
11 
2. 
Фосфорсыз қоспа 
8 
8 
1,4 
4 
4 
3. 
Азотсыз қоспа 
4 
4,5 
- 
- 
- 
4. 
Калийсіз қоспа 
2 
1 
- 
- 
- 
 
Тәжірибеге  талдау  жұмыстарын  жүргізсек  толық  қоректік  және  фосфорсыз  
жасанды ортада өсірілген өсімдіктердің мүшелері жоғары дәрежеде жетілгенін көруге 
болады.  Ал  азот  пен  калийсіз  алынған  ортада  жапырақтың  мүлдем  жетілмегендігін 
байқауға болады. Себебі, азот пен калий қоректік минералды элементтердің ішіндегі ең 
негізгісі. Оларды қоректік заттардан шығарып тастаған кезде өсімдіктің өсуі мен дамуы 
тежеліп,  ақуыздар  мен  көмірсулардың  алмасуы  баяулайды.  Азот  пен  калийсіз  бірде  – 
бір  полисахарид  түзілмейтіндігін  тәжірибе  барысы  дәлелдеп  отыр.  Жоғарыда  аталған 
түрлі жасанды қоректік ортада өсірілген өсімдіктерді 1суреттен көруге болады. 
 
 
 

 
195
Сурет 1. Жасанды қоректік ортада күнбағыс тұқымын өсіру. 
Жасанды  ортада  дақылдарды  отырғызғанда  және  ерітінділерді  ауыстырғанда 
тұздардың  шекті  мөлшерін  алу  керек.  Негізінен  ерітіндінің  концентрлі  тұзымен 
тәжірибе жүргізген әлдеқайда тиімді. Себебі, әрбір 10мл ерітіндіде 1л ерітіндіге қажет 
тұз  мөлшері  болады.  Кейін  ерітінділерді  арнайы  мөлшермен  алып,  сәйкесінше 
дистильденген  сумен  толықтырады.  Ерітінділер  жарық  сәулесі  түспейтін  жерде 
сақталуы  тиіс.  Тәжірибе  барысында  күнара  ерітінділерге  шыны  түтік  арқылы  ауа 
үрленеді,  pH  ортасы  анықталады.  Сонымен  қатар  ерітіндіні  әрбір  екі  апта  сайын 
бақылап,  тексеру    жұмыстары  жүргізіледі.  Өсімдіктердің  жерасты  бөліктерінің 
ұзындығын  өлшеп,  тамырлар  жүйесінің  көлемін  цилиндрде  суды  ығыстыру  әдісімен 
анықтайды. Вегетативті мүшелердің саны және ауданы өлшенеді. Әр топ өз жұмысын 
жоба күйінде қорғайды. Өсімдіктерді жасанды ортада өсіру әдісі олардың қоректенуін 
бақылауға  мүмкіндік  береді,  ал  табиғи  жағдайда  мұндай  бақылаудың  жоқ  екендігі 
белгілі. Сонымен қатар бұл әдістің жасанды ортаны табиғи жағдайдан ерекшелендіріп 
тұратын бірқатар кемшіліктері де бар екендігін айтуға болады.  
Қорыта айтқанда,инновациялық әдістердің қай түрін алсақ та, олардың тиімділігі 
тек  қана  оқытушының шеберлігімен  және  осы  шеберлікті  шыңдай түскендігімен  ғана 
шын  күшіне  ие  бола  алады.  Сондықтан  білім  алушылардың  ынтасын  арттыруға 
арналған әдістемелік құралдардың жүйесі мен амалдары әр оқытушыдан оларды терең 
игеруін, іске асыруын және оған сай болатын іскерлікті талап етеді.  
 
 
 
Әдебиет: 
1.  Кенесарина Н. Өсімдіктер физиологиясы және биохимия негіздері. Алматы, 1982 
2.  Қалекенұлы Ж. Өсімдіктер физиологиясы. Алматы , «Қазақ университеті»1996 
3.  Якушкина Н.И. Физиология растений. Москва «Просвещение», 1980 
4.  Генкель П.А.Физиология растений. Москва «Просвещение», 1975 
5.  Полевой В.В. Физиология растений «Высшая школа», 1989 
 
 
 
УДК 619:578:658.512(616-07) 
 
ПОЛУЧЕНИЕ МОНОКЛОНАЛЬНЫХ АНТИТЕЛ 
К РЕКОМБИНАНТНОМУ АНТИГЕНУ VP1 ВИРУСА ЯЩУРА СЕРОТИПА 
АЗИЯ 
 
Шевченко П. В., Турпанова Р.М., Мукантаев К.Н. 
(Национальный центр биотехнологии Республики Казахстан, г.Астана) 
 
 
 
Ящур 
– 
высоко 
контагиозное, 
остропротекающее 
заболевание 
сельскохозяйственных  и  диких  парнокопытных  животных,  наносящая  огромный 
экономический ущерб. Способность вируса ящура к быстрому распространению среди 
восприимчивых  животных  определяет  важную  роль  диагностических  исследований  в 
системе  профилактических  и  карантинных  мероприятий,  применяемых  в  борьбе  с 
ящуром [1]. 
По литературным данным, вирус ящура состоит из плюс геномной однонитчатой 
РНК и 4 полипептидов: VP1, VP2, VP3 и VP4 с молекулярными массами 34, 30, 26 и 14 

 
196
кДа  соответственно.  Кроме  того,  в  составе  вирусных  препаратов  на  долю  каждой 
вирусной  частицы  обнаруживаются  по  1-2  копии полипептида  VP0,  предшественника 
VP2  и  VP4  [2].  На  долю  первых  трех  полипептидов  приходится  91%  всех  белков 
вириона. Белок VP1 с молекулярной массой 34 кДа имеет поверхностную локализацию 
и обуславливает антигенность вируса, так как вызывает синтез вируснейтрализующих 
антител  [3,  4].  Полипептид  VP1  также  ответственен  за  типовую  антигенную 
специфичность вируса ящура и участвует в процессе адсорбции вируса к клетке [5]. 
В мировой практике диагностические исследования на ящур проводятся методом 
ИФА,  выделением  вируса  на  клеточной  культуре  и  полимеразной  цепной  реакции 
(ПЦР) [6].  
Эффективность  лабораторной  диагностики  ящура  определяется  многими 
факторами,  главные  из  которых  -  чувствительность  и  специфичность  методов, 
базирующихся  на  иммунохимических  реакциях  между  антигенами  и  антителами. 
Одним из достижений современной биотехнологии является гибридомная технология, 
позволяющая получать моноклональные антитела (МКА) – иммуноглобулины, сходные 
по всем физико-химическим свойствам и тождественные по специфичности к одному 
антигену.  
В  работе  использовали  очищенный  рекомбинантный  антиген  вируса  серотипа 
Azia, 
полученный методом клонирования в составе экспрессирующих кнострукций на 
основе вектора pET32. 
Животные,  использованные  в  работе.
  При  выполнении  работы  были 
использованы  следующие  виды  животных:  8  мышей  беспородных,  которые  были 
использованы  в  качестве  источника  перитонеальных  макрофагов  при  создании 
«питающего  слоя»  клеток  на  поверхности  лунок  планшет  для  культивирования 
гибридом;  4  мыши  линии  BALB/c  6-8  недельного  возраста  для  получения  иммунных 
спленоцитов антител. 
Получение  штаммов  гибридных  клеток  продуцентов  моноклональных  антител 
(МКА)  к  VP1  Azia  антигену  вируса  ящура. 
В данной работе была выбрана длительная 
схема иммунизации.  
Слияние  клеток  миеломы  Х63-Ag8.653  и  иммунных  спленоцитов  проводили  по 
методу V. Oi, L. Herzenberg [7].  
Рост клонов гибридом в лунках планшета учитывали, начиная с 7-10 суток после 
слияния.  Клоны  гибридом,  продуцирующие  моноклональные  антитела  против 
рекомбинантного  VP1  антигена  вируса  ящура,  по  мере  роста  переносили  в  лунки  24-
луночного  планшета.  Клонирование  гибридных  культивируемых  клеток  проводили 
методом лимитирующих разведений, описанном J. Coding. [8]. 
Очистку  моноклональных антител из асцитной жидкости осуществляли методом 
высаливания сульфатом аммония до 50% насыщения. Для этого в асцитную жидкость 
добавляли  равный  объем  ЗФР  с  рН-7,2.  Затем  добавляли  равный  объем  насыщенного 
раствора сульфата аммония и оставляли при перемешивании на 12 часов при 4
о
С. 
Определение  концентрации  моноклональных  антител  в  асцитной  жидкости  
производили  по  методу  Брэдфорда.  Раствор  Брэдфорда  готовили  следующим  образом: 
100 мг Кумасси растворяли в 50 мл этанола, добавляли 100 мл 85% Н
3
РО
4,
 остужали, а 
затем доводили объем до 1 литра дистиллированной водой. 
Продуктивность  штаммов  гибридом  определяли  с  помощью  ИФА  в  течение  8 
дней. Гибридные клетки высевали в 8 лунок 24-луночного планшета в количестве 2х10 
клеток на лунку. 
Константу  связывания  моноклональных  антител  определяли  по  методу                   
J. Beatty et. al. [9].  
 

 
197
 
 
Постановка иммуноблотинга 
Постановка  иммуноблотинга  предусматривала  следующие  этапы:  1)  проведение 
электрофореза;  2)  перенос  электрофореграммы  на  нитроцеллюлозную  мембрану;                  
3) иммунохимическое проявление нитроцеллюлозной  реплики. 
Электрофорез  антигена  вируса  осуществляли  по  методу  Laemmli  V.K.,  на 
аппарате  для  вертикального  электрофореза  (BioRad,  США)  с  использованием  трис-
глицинового буфера [11]. 
Электрофоретический перенос антигенов из геля на нитроцеллюлозную мембрану 
осуществляли с помощью прибора для иммуноблотинга по H. Towbin et al.  
 
Результаты и обсуждения. 
Получены  4  штамма  гибридных  клеток  продуцирующих  моноклональные 
антитела к рекомбинантному антигену VP1 серотипа Азия вируса ящура.  
В  результате  проведенной  иммунизации  мышей  антигеном  VP1  Азия  титры 
специфических антител в сыворотке крови достигали от 1 : 12800 до 1 : 25400, указывая 
на  высокую  продукцию  клонов  В  –  лимфоцитов,  продуцирующих  антитела  заданной 
специфичности. 
В  результате  первого  слияния  (гибридизации)  в  15  из  384  засеянных  лунок 
отмечен  рост  клонов  гибридных  клеток,  что  составляет  4%  клонообразования.  Во 
втором  слиянии  процент  клонообразования  составил  5%.  Результаты  гибридизаций 
представлены в таблице 1. 
 
Таблица 1. Результаты тестирования культуральной жидкости гибридом в ИФА 
 
№ 
гибридизации 
Количество 
образовавшихся 
гибридом 
Результаты ИФА 
Количество активных клонов, 
обладающих специфической 
антительной продуктивностью 
Процентное 
соотношение (%) 
1 
19 
2 
10,5 
2 
31 
4 
12,9 
 
Исходя  из  таблицы  1  видно,  что  при  первом  слиянии  продукция  антител, 
специфичных  к  рекомбинантному  антигену  VP1  Азия,  наблюдалась  только  у  двух 
клонов  из  19  образовавшихся  гибридом.  Во  втором  слиянии  антительную  активность 
показали 4 клона из 31 полученного клона. 
Для  дальнейшего  отбора  клонов,  стабильно  продуцирующих  моноклональные 
антитела, активность полученных гибридом была проверена пять раз с помощью ИФА 
с промежутком 4-5 дней. Результаты представлены в таблице 2. 
 
Таблица 2. Результаты скрининга гибридных клеток. 
 
№ п/п 
Название Клона 
Антительная активность гибридом при скринингах 
 
1 
2 
3 
4 
5 
Первая гибридизация 
1 
2B5 
1:4 
1:2 
- 
- 
- 
2 
4G6 
1:4 
1:8 
1:4 
1:2 
- 
Вторая гибридизация 
1 
1A11 
1:8 
1:16 
1:16 
1:32 
1:64 
2 
2A4 
1:16 
1:16 
1:32 
1:64 
1:64 

 
198
3 
3C10 
1:4 
1:8 
1:16 
1:8 
1:8 
4 
4F7 
1:16 
1:32 
1:32 
1:16 
1:16 
Продукция  антител  двух  клонов,  полученная  при  первой  гибридизации 
наблюдалась в течение двух тестирований. Однако уже при третьем скрининге одна из 
гибридом потеряла способность продуцировать антитела к рекомбинантному антигену 
VP1 Азия, так же и при последней проверке антительной активности клонов, результат 
был отрицательным. 
Скрининг  четырех  клонов  гибридом,  полученных  при  второй  гибридизации, 
показал, что все клоны продуцировали антитела, специфичные к антигену VP1 Азия в 
течение всего периода наблюдения. Наиболее высокую продуктивную характеристику  
показли  клоны  1А11  и  2А4.  В  культуралной  жидкости  антитела  двух  гибридом 
тестировались  до  разведения  1:64.  Стабильную  производительность  специфических 
антител показали и два последних клона, максимальные титры которых находились в 
пределах 1:8 – 1:16. 
Исходя  из  предварительных  результатов,  можно  заключить,  что  методом 
гибридомной  технологии  получены  два  клона  гибридных  клеток,  стабильно 
продуцирующих моноклональные антитела к рекомбинантному антигену VP1 Азия. 
Гибридные клетки, стабильно продуцирующие антитела к рекомбинантному VP1 
Азия  антигену,  трижды  клонировались.  В  первом  клонировании  продукция  антител 
субклонов  гибридных  клеток  составила  16%,  при  втором  клонировании    50%.  После 
клонирования  гибридные  клетки  не  меняли  своей  активности  на  протяжении  15 
пассажей. 
Продуктивность  гибридом  определялась  в  течении  8  дней,  которая  составила  в 
культуре  клеток  50  мкг,  в  асците  от  9  до  18  мг.  Характеристика  гибридных  клеток 
активно продуцирующих МКА, представлена в таблице 3. 
 
Таблица 3. Продуктивность штаммов гибридом, 
продуцирующих моноклональные антитела 
 
Штамм 
Продуктивность штаммов 
в культуре (мг/мл) 
Продуктивность штаммов 
in vivo (мг/мл) 
1А11 
0,05 
8 
2А4 
0,05 
16 
 
Клетки  культивируются  в  среде  RPMI  1640,  содержащая  10%  сыворотки 
эмбриона коров; 20 мл/л 200 мМ L-глютамина; Hepes – 3,375г/л; 2 меркаптоэтанола 
–  3  мкл/л;  10  мл/л  пирувата  натрия;  бикарбоната  натрия  –  3,7  г/л.  Таким  образом, 
полученные гибридомы обладают сравнительно высокой продуктивностью, In vivo от 8 
до 16 мг/мл, in vitro до 0,05 мг/мл. 
Характеристика  моноклональных  антител  к  рекомбинантному  антигену  VP1 
Азия вируса ящура крупного рогатого скота. 
В  результате  проведенных  исследований  по  изучению  иммунохимических 
характеристик  полученных  моноклональных  антител,  было  определено,  что 
моноклональные  антитела  относятся  к  иммуноглобулинам  класса  G,  подкласса  G1. 
Электрофорез  полученных  моноклональных  антител  показал  наличие  двух  белковых 
полос  с  молекулярными  массами  67  кДа  (тяжелая  цепь)  и  29  кДа  (легкая  цепь). 
Результаты 
иммуноблотинга 
моноклональных 
антител 
к 
вирусу 
ящура 
продемонстрировали, что антитела реагировали с белками, молекулярный вес которых 
составлял 36 и 30 кДа. Результаты иммуноблота представлены на рисунке 1. 
 

 
199
 
 
1 – молекулярные маркеры; 2, 3 – электрофорез очищенного рекомбинантного 
антигена; 4 – результаты иммуноблота. 
 
Рисунок 1. Иммуноблот рекомбинантного антигена 
с положительной контрольной сывороткой 
 
Диагностическую  ценность  полученных  МКА  проводили  путем  определения 
специфичности  антител  в  непрямом  варианте  ИФА  с  использованием  различных 
вирусов (таблица 4). 
 
Таблица 4. Изучение специфичности моноклональных антител к вируса ящура в 
непрямом варианте ИФА 
 
Антигены 
Титры моноклональных антител, выделенных из 
асцитной жидкости 
1А11 
2А4 
Рекомбинантный антиген 
VP1 Азия вируса ящура 
1:25600 
1:25600 
Вирус ящура (серотип О) 
1:100 
1:100 
Вирус ящура (серотип А) 
1:100 
1:100 
Вирус Гамборо 
PO 
PO 
Вирус лейкоза 
PO 
PO 
Вирус везикулярного 
стоматита 
PO 
PO 
Примечание - РО - реакция отрицательная 
 
Как  следует  из  данных  таблицы  4,  моноклональные  антитела,  полученные  к 
рекомбинантному  VP1 антигену вируса ящура типа Азия, активно взаимодействуют с 
антигенами  гомологичных  вирусов  и  не  вступают  в  реакцию  с  антигенами  других 
вирусов, что свидетельствует об их специфичности. 
 
Выводы 
1.  Результаты исследований показали, двухмесячная схема иммунизации мышей 
линии Balb/c  рекомбинантным антигеном VP1 Азия в дозе 100мкг/мл оказалось вполне 
пригодной  для  стимулирования  иммунного  ответа  организма  подопытных  животных 
для  выработки  достаточного  количества  антител  против  рекомбинантного  антигена. 
Титр сывороток иммунных мышей в непрямом ИФА достигал до 1:25400. 

 
200
2.  В  результате  гибридизации  были  получены  гибридные  клетки,  стабильно 
продуцирующие моноклональные антитела к рекомбинантному  антигену VP1 Азия. 
3.  Моноклональные  антитела  против  белка  VP1  Азия  специфически  реагируют 
только  с  вирусом  ящура  крупного  рогатого  скота  и  имеют  константу  связывания  в 
пределах 2х10
8
М
-1
 – 2х10
9
М
-1
.  
 
 
 
Литература: 
1.  Хубиев  X.Л.,  Яшур  у  диких  животных  /  X.  Л.  Хубиев  //  Актуальн.  проблвет.  вирусол.  - 
Владимир, 1977. - С. 178-180. 
2.  Кузьмин  И.В.,  Рыбаков  С.С.,  Иванющенков  В.Н.  Первичная  структура  гена  РНК-полимеразы 
вируса ящура А
22
 // Биоорганическая химия. – 1989. – Т.15, №3. – С. 419-422.  
3.  Суровой  А.Ю.,  Вольпина  О.М.,  Иванов  В.Н.  Моделирование  с  помощью  синтетических 
пептидов протективных эпитопов белка VP1 вируса ящура серотипов О и А // Биоорганическая 
химия. – 1987. – Т. 13, №8. – С. 1132-1135. 
4.  Baxt  B.,  Morgan  D.O.,  Robertson  B.H.,  Timpone  C.A.  Epitopes  on  foot-and-mouth  disease  virus 
outer capsid protein vp1 involved in neutralization and cell attachment // Journal of Virology. – 1984. 
– Vol. 51, №2. – P. 298-305. 
5.  Ivarie R.D., Jones P. D. A rapid sensitive assay for specific protein synthesis in cells and in cell-free 
translations: use of staphylococcus aureus as an adsorbent for immune complexes // Anal. Biochem. – 
1979. – Vol. 97. – P. 24-35. 
6.  Scott M. R., Nigel P., Geoffrey H., Lennart A. Development of a rapid chromatographic strip test for 
the pen-side detection of foot-and-mouth disease virus antigen // Journal of Virological Methods. – 
2001. – Vol.96. – P.189-202. 
7.  Oi  V.,  Herzenberg  L.  Immunoglobulin-  producing  hybrid  cell  lines.  Selected  methods  in  cellular 
immunology / Ed. By. Mishell B and Shiigi. - San Francisco, 1980. – P. 351-352. 
8.  Coding J. Antibody production by hybridoma // J. Immunol. Meth. - 1980. - Vol. 39. - №1. - P. 285-
308. 
9.  Beatty  J.,  Beatty  P.,  Vlahos  W.  Measurement  of  monoclonal  antibodi  affinity  by  non  -  copetitive 
immunoassay // J. Immunol. Meth. – 1987. – Vol. 100, №3. – P. 173-179. 
10.  Laemmli U. K. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4 // 
Nature. – 1970. – Vol.227. – Р.680-685. 
 

 
 
201 
9 секция. АУЫЛШАРУАШЫЛЫҚ ҒЫЛЫМДАРЫ  
СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫЕ НАУКИ 
 
 
УДК 633.2.031 (574) 
 
ЖИТНЯК В ПРИУРАЛЬЕ 
 
Айтмухамбетова З.Т., Мамышева М.В. 
(ЗКГУ им. М.Утемисова) 
 
 
 
Полевое  травосеяние  имеет  богатые  исторические  корни  и  связано  с  именами  
А.Т.  Болотова,  И.М.  Комова,  А.В.  Советова,  В.Р.  Вильямса,  а  также  других 
выдающихся классиков агрономии. Разработанные ими основы оптимизации структуры 
рационального природопользования и сейчас не утратили своей актуальности. Высокая 
ценность  этих  исследований  состоит  в  том,  что  функциональная  значимость 
многолетних  трав  не  ограничивается  только  их  кормовым  значением.  Многолетние 
травы  также  являются  мощным  естественным  фактором  регулирования  гумусового 
баланса почвы. 
О  положительной  роли  многолетних  трав  в  севооборотах  свидетельствует 
исторический  опыт  стран  Западной  Европы.  Так,    до  конца  XVIII  века  урожайность 
культур здесь составляла 7-8 ц/га, а в период использования плодосмены она достигла 
16-17ц/га,  и  при  плодосмене  с  активным  использованием  многолетних  трав  уровень 
урожайности  достиг  25-30  ц/га  [1].  Таким  образом,  введение  в  севооборот  трав  стало 
являться  не  только  результатом  создания  соответствующей  кормовой  базы  для 
существующего  поголовья  скота,  но,  и  связано  с  вопросом  повышения  плодородия 
почвы, которое в дальнейшем обеспечивает повышение продуктивности пашни. 
Самым  распространенным  видом,  из  всех  произрастающих  в  Западном 
Казахстане  многолетних  трав,  является  житняк.  Благодаря  своим  уникальным 
биологическим  особенностям  житняк  наиболее  полно  использует  природно-
климатический потенциал сухостепного региона. 
Авторитет  этой  культуры  в  сельскохозяйственном  производстве  не  является 
случайным.  Обладая  сильной  жизненной  энергией,  выработанной  тысячелетним 
периодом  выживания  и  формирования  вида  в  жестких  природно-климатических 
условиях региона житняк обладает высокой зимостойкостью и засухоустойчивостью, а 
при улучшении погодных условий способен к высокой продуктивности. 
Простота  возделывания,  невысокая  требовательность  к  условиям  произрастания 
сочетается  в  житняке  с  его  высокой  урожайностью  и  ценными  кормовыми  и 
почвоулучшающими особенностями. 
Житняк  хорошо  растет  на  различных  типах  почв,  а  фитоценотическая 
оптимизация  житняковых  полей  за  счет  бобовых  культур,  позволяет  значительно  не 
только  улучшить  питательность  кормовых  угодий,  но  и  увеличить  их  продуктивное 
использование. 
Житняк обладает значительным долголетием. На одном и том же месте он может 
произрастать  от  10  до 20  и  даже  до  30  лет.  Благодаря  своему  видовому  разнообразию 
житняк  имеет  широкое  распространение  не  только  в  Западном  Казахстане,  но  и  в 
северных и южных регионах республики. 
В то же время при использовании житняка не следует рассчитывать на то, что его 
можно возделывать примитивным способом. Как и любое другое культурное растение, 

 
 
202 
житняк  положительно  реагирует  на  многие  агротехнические  приемы,  увеличивая  при 
этом  продуктивность  и  кормовую  ценность  угодий.  Выбор  системы  основной 
обработки  почвы,  оптимальных  сроков  и  способов  посева,  а  также  выполнение 
определенных  приемов  по  уходу  за  растениями  –  является  основной  зональной 
технологии возделывания житняка, которая в каждом регионе страны, должна обладать 
своими специфическими адаптационными свойствами. 
Посевы  житняка  на  выводном  поле  полевых  севооборотов  способны  не  только 
стабилизировать  содержание  гумуса  в  почве,  но  и  обеспечивать  его  расширенное 
воспроизводство. В дальнейшем после введения такого поля в севооборот урожайность 
зерновых  культур  увеличивается  на  30-40%  и  сохраняется  в  течение  длительного 
времени.[2] 
В  результате  маршрутных  исследований,  проводимых  на  территории  Западно-
Казахстанской  области  было  выявлено  произрастание  трех  видов  житняка: 
гребневидного, сибирского и пустынного. 
Житняк  гребневидный  (Agropyron  pectiniforme)  –  имеет  наибольшее 
распространение  на  севере  области  в  степной  зоне  и  в  полупустынной  местности,  в 
различного  рода  понижениях.  Он  широко  распространен  в  травостоях  луговых 
лиманов, по окраинам степных лиманов и в высоких частях пойм степных рек, занимая 
значительные площади с чистым покровом. Произрастая на глинистых и суглинистых 
темно  и  светло-каштановых  почвах,    житняк  гребневидный  хорошо  выносит 
значительное их засоление. В природе высота гребневидного житняка достигает 75 см. 
Форма  листа  узколинейная,  свернутая  или  плоская,  с  завернутыми  краями.  Ширина 
листа  обычно  составляет  1,5-3,0  мм,  но  иногда  в  благоприятные  годы  она  может 
достигать 5-10 мм. Лист снизу гладкий, сверху волосистый или шероховатый. Колосья 
густые, но с явно заметными промежутками продолговато-яйцевидные или яйцевидно-
линейные  1,5-6,5  см  длиной  и  от  1  до  2,5  см  шириной.  К  верху  они  заметно 
суживаются.  Колоски  зеленые  или  сизо-зеленые,  не  прижатые  друг  к  другу, 
совершенно голые 0,8-1,5 см длиной. 
Житняк  сибирский  (Agropyron  sibirikum)  доминирует  в  растительных 
сообществах поймы реки Урал. Он хорошо себя чувствует на рыхлых песчаных почвах 
и  распространен  в  более  аридных  условиях  степной  и  полупустынной  местности, 
нередко произрастая значительными площадями в сотни и даже тысячи гектаров. 
Образцы 
сибирского 
вида 
житняка 
превышали 
продолжительность 
вегетационного  периода  районированного  сорта  Краснокутский  305  на  3-7  дней,  что 
позволяет  отнести  их  к  позднеспелой  группе.  В  отличие  от  гребневидного, 
сортообразцы  сибирского  вида  житняка  под  влиянием  внешней  среды  имеют  более 
сильную  модификационную  изменчивость  по  высоте  растений.  В  благоприятные  по 
увлажнению  годы  высота  растений  достигает  78-97  см,  что  на  7,4  см  выше 
районированного сорта. В засушливые годы высота этих растений снижается до 62-69 
см.  Стебли  у  сибирского  вида  житняка  прямые,  у  основания  коленчатые,  голые,  под 
колосьями слабошероховатые. Листья узколинейные, свернутые или плоские от 0,4 до 
0,6  см  шириной,  голые,  снизу  гладкие,  сверху  шероховатые.  Колосья  линейные, 
многоколосковые  7-10  см  длины,  0,5-1,2  ширины,  бледно-зеленые.  Колоски  бледно-
зеленые, расположенные гребневидно, 0,7-1,0 см длиной. 
Житняк  пустынной  (Agropyron  desertorum)  предпочитает  более  уплотненные 
песчаные  и  супесчаные  почвы.  Он  неплохо  развивается  на  тяжелых  суглинистых 
почвах,  а  также  на  солонцах  и  распространен  в  тех  же  районах,  что  и  житняк 
сибирского вида. Сплошные чистые покровы этот вид житняка дает значительно реже. 
На светло и темно-каштановых почвах он произрастает совместно с типцом, ковылем, 
нередко  в  больших  количествах  встречается  на  повышенных  частях  разнотравья 
степных лиманов. 

 
 
203 
На  легких  по  механическому  составу  почвах  и  в  более  аридных  условиях 
произрастания этот вид житняка по урожайности превосходит ширококолосый житняк 
на  1,5-4,0  ц/га  сена.  Благодаря  большой  облиственности,  житняк  пустынный  хорошо 
поедается  как  на  пастбище,  так  и  в  сене.  Его  зеленая  масса  содержит  на  1,0-1,5% 
сырого протеина больше, в сравнении с ширококолосыми сортами. 
В  то  же  время  исключительная  неприхотливость    житняка  к  почвенно-
климатическим  условиям  не  означает,  что  один  и  тот  же  вид  житняка  может  иметь 
высокую  продуктивность  во  всех  природно-климатических  зонах  области  (степной, 
сухостепной  и  полупустынной).  С  этой  точки  зрения  эффективность  использования 
житняка,  как  культуры,  требует  дифференцированного  применения  определенных  его 
видов к конкретному типу агроландшафта.  
Проверенная  нами  сравнительная  оценка  различных  видов  житняка  показала 
различное  его  видовое  отношение  к  одному  и  тому  же  фактору  внешней  среды  - 
температуре  воздуха  майского  периода  вегетации.  Коэффициент  корреляционной 
взаимосвязи  урожайности  житняка  гребневидного  вида  с  вышеупомянутым 
метеопоказателем  составил    r=-0,95±0,11,  житняка  сибирского  вида    r=-0,93±0,15,  у 
житняка пустынного вида - r=0,92± 0,15. 
Графическая оценка корреляционной взаимосвязи видовой урожайности житняка 
с  температурой  воздуха  майского  периода  вегетации  наглядно  показала,  что  для 
условий  умеренного  температурного  режима  степной  зоны  преимущественной 
продуктивностью  обладает  гребневидный  вид  житняка.  В  условиях  повышенного 
температурного  режима,  который  характерен  для  полупустынной  природно-
климатической  зоны  области,  лучшие  показатели    продуктивности  обеспечивает 
житняк сибирского вида.  
Таким  образом  дифференцированное  использование  различных  видов  житняка  в 
регионе    в  зависимости  от  типа  агроландшафта  позволит  иметь  значительно  больший 
эффект  от  травосеяния  как  в  вопросе  кормопроизводства,  так  и  в  вопросе 
воспроизводства  плодородия  земель. 
 
 
 
Литература: 
1.  Браун  Э.Э.,  Чекалин  С.Г.  Земледелие  Западного  Казахстана  –  почвозащитно  –  ландшафтную 
основу. В сборнике  Адаптивно  -  ландшафтные системы земледелия для засушливых  условий 
Нижнего Поволжья, Волгоград. 2005.- С. 46-51. 
2.  Кучеров  В.С.  Чекалин  С.Г.  Повышение    продуктивности  агроэкосистем  в  сухой  степи. 
Уральск. 2000. 96 с. 
 
 
 
УДК 631.1:57.0 
 
ЗЕМЛЕДЕЛИЕ НА БИОЛОГИЧЕСКУЮ ОСНОВУ 
 
Асауова Ж.Е., Чекалин С.Г. 
(ЗКГУ им. М.Утемисова) 
 
 
 
Агроклиматические  ресурсы  Западного  Казахстана  позволяют  не  только 
полностью удовлетворять собственные потребности в высококачественном зерне, но и 

 
 
204 
осуществлять  экспорт  этой  продукции  за  пределы  своего  региона.  В  то  же  время  в 
последние  годы  стало  наблюдаться  снижение  темпов  роста  урожайности  важнейших 
зерновых  культур  под  влиянием  участившихся  засух.  Многочисленные  данные 
научных учреждений указывают на то, что основная стратегия адаптации земледелия к 
условиям  меняющегося  климата  должна  состоять  в  расширении  разнообразия 
возделываемых культур. При этом недобор урожая одних культур, в неблагоприятный 
для  их  роста  и  развития  период  года,  будет  компенсироваться  урожайностью  других, 
период вегетации которых проходил до или после определенного типа засухи. С другой 
стороны,  обращает  на  себя  внимание  факт  наличия  значительной  деградации  почв  и, 
прежде всего, пониженное содержание в них гумуса. 
В  настоящее  время  основу  сельскохозяйственного  производства  Казахстана 
составляют  почвы  со  средним  и  низким  содержанием  гумуса.  В  структуре  пахотных 
угодий  на  их  число  в  общей  сложности  приходится  71,3%.  Аналогичная  ситуация  с 
плодородием  почв  наблюдается  и  в  Западном  Казахстане,  где  преимущественное 
распространение имеют темно-каштановые тяжело и среднесуглинистые почвы. 
Низкое  содержание  гумуса  в  почве  приводит  к  ухудшению  её  агрофизических  и 
агрохимических  свойств,  ослабляет  устойчивость  культур  к  неблагоприятным 
факторам  погодных  проявлений  и,  прежде  всего,  к  засухе,  способствует  развитию 
эрозионных процессов. 
В  сложившихся  социально-экономических  условиях  текущего  времени,  когда 
применение  органических  и  минеральных  удобрений  практически  прекратилось, 
наиболее  перспективным  выходом  из  существующей  ситуации  является  переход 
системы  земледелия  на  биологическую  основу,  которая  включает  в  себя  не  только 
снижение  антропогенной  нагрузки  на  агроэкосистему,  но  и  обеспечивает  максимум 
условий для полноценного использования её собственного биопотенциала. 
Наиболее  доступным  и  широко  распространенным  приемом  биологизации  в 
земледелии  стал  переход  на  энергоресурсосберегающие  технологии  возделывания 
культур. Помимо экономии прямых затрат и топлива, специфическая особенность этих 
технологий  состоит  в  обязательном  сохранении  всех  растительных  остатков  на 
поверхности поля. 
По  существующим  оценкам  одна  тонна  соломы  эквивалента  трем  тоннам 
подстилочного 
навоза. 
Без 
всякого 
сомнения, 
солома 
является 
мощным 
дополнительным  источником  питания  и  эффективным  способом  наращивания 
почвенного плодородия. Однако при средней урожайности зерновых культур в области 
в  пределах  8,0  ц/га  небольшая  оставляемая  после  урожая  зерновых  культур  масса 
соломы не способна полностью устранить дефицит гумуса в короткие сроки и процесс 
восстановления гумуса будет очень длительным. 
Проведенные  расчеты  показывают,  что  зернопаровые  севообороты  при  полном 
освоении энергоресурсосберегающих технологий возделывания культур с оставлением 
соломы урожая не обеспечивают положительного гумусового баланса. В данном случае 
речь  может  идти  только  о  бездефицитном  его  содержании.  Дальнейший  переход 
динамики  гумуса  в  русло  расширенного  его  воспроизводства  возможен  за  счет 
вовлечения дополнительных средств биологизации. 
Биоорганическое 
наноудобрение 
является 
первым 
сельскохозяйственным 
удобрением,  в  производстве  которого  применяются  нанотехнологии  -  измельчение 
крупных  молекулярных  образований  питательных  и  биологически  активных  веществ, 
которые  легче  и  быстрее  проникают  через  клеточную  мембрану,  а  поэтому  лучше 
усваиваются  растением.  Это  удобрение  также  стимулирует  устойчивость  растения  к 
стрессу  при  неблагоприятном  воздействии  окружающей  среды,  включая  недостаток 
влаги  и  перепады  температуры.  Основное  активное  вещество  данного  удобрения 

 
 
205 
состоит  из  легко  усваиваемых  питательных  веществ,  микроэлементов  и  полезной 
почвенной микрофлоры. 
Для  почвенно-климатических  условий  Западно-Казахстанской  области  этот 
препарат  впервые  был  апробирован  нами  на  озимой  пшенице  сорта  Лютесценс  72. 
Схема опыта в исследованиях состояла из вариантов обработки семян озимой пшеницы 
препаратами Нагро и Ламадором  перед посевом. В период отрастания озимых ранней 
весной,  а  так  же  в  фазу  колошения  проводилось  опрыскивание  растений  Нагро. 
Контрольным  вариантом  служили  делянки,  в  которых  при  посеве  были  использованы 
семена озимой пшеницы без какой-либо обработки. 
Результаты исследований показали высокую эффективность применения Нагро в 
условиях  сухой  степи  Западного  Казахстана.  Так,  однократная  обработка  семенного 
материала этим препаратом обеспечила получение 20,2 ц зерна с гектара, что на 2,8 ц 
выше  ее  урожайности  полученной  на  контроле.  При  обработке  семян  только 
Ламадором  урожайность  озимой  пшеницы  составила  всего  18,2  ц/га.  При  совместной 
обработке  семян  Нагро  и  Ламадором  уровень  продуктивности  озимой  пшеницы(20,4 
ц/га)  мало  чем  отличался  от  уровня  ее  продуктивности,  достигнутой  на  варианте  с 
однократной обработкой посевного материала Нагро. 
Важным приемом в увеличении ресурсного потенциала озимой пшеницы явилась 
дополнительная обработка ее посевов Нагро весной - в период ее выхода из состояния 
перезимовки. В этом случае была получена дополнительная прибавка урожая в 2,2 ц/га, 
а  в  целом  на  этом  варианте  опыта,  где  Нагро  обрабатывались  и  семена  и  посевы  в 
ранневесенний  период  была  получена  максимальная  урожайность  озимой  пшеницы  в 
опыте -22,4 ц/га, что на 5,0 ц/га выше, чем на контроле. 
Увеличению  урожайности  озимой  пшеницы на  этом  варианте  способствовало  не 
только  лучшее  развитие  растений,  но  и  увеличение  других  показателей 
продуктивности. Так, высота растений здесь составила 79,5 см, а на контроле - только 
66,3 см. 
В  сравнении  с  контрольным  вариантом  количество  растений,  сохранившихся  к 
уборке было на 29,0% выше. Выше на 16,9% отмечено число продуктивных колосьев. 
Масса 1000 зерен увеличилась до 35,7 г или на 11,0%. 
Дальнейшая  дополнительная  обработка  Нагро  в  фазу  колошения  никак  не 
отразилась на увеличении ее продуктивности. Вполне вероятно то, что наблюдавшаяся 
в этот период весенне-летняя засуха не позволила данному препарату еще раз проявить 
себя  в  этот  год.  Тем  не  менее  цель,  достигнутая  под  действием  небольших  затрат 
позволяет в более широком спектре использовать Нагро на посевах зерновых культур. 
 
 
 
УДК 631.1 
 
«НҰРЛЫ ЖОЛ» - ПУТЬ К РАЗВИТИЮ ОБЩЕСТВА 
 
Ахметов Б.У., Савенкова Л.А., Ахметова Т.А. 
(СКГУ им. М.Козыбаева) 
 
 
 

жүктеу/скачать 8,79 Mb.

Достарыңызбен бөлісу: