Слизень В.В., Гудкова Е.И., Скороход Г.А. Разработка
метода пцр для экспресс-
идентификации
Salmonella spp. И среди них
Salmonella enteritidis// Сборник научных тру-
дов «Инновации в медицине», Минск, БГМУ, 2012 – 6 С.
РАЗРАБОТКА МЕТОДА ПЦР ДЛЯ ЭКСПРЕСС- ИДЕНТИФИКАЦИИ
SALMONELLA SPP. И СРЕДИ НИХ SALMONELLA ENTERITIDIS
Слизень В.В., Гудкова Е.И., Скороход Г.А.
Белорусский государственный медицинский университет
Актуальность
проблемы сальмонеллезов связана с высокими уровнями заболевае-
мости и сохраняющейся тенденцией к ее росту, трудностями в эпидемиологическом рас-
следовании причин сальмонеллезов, формированием резистентности к противомикроб-
ным препаратам, отсутствием эффективной специфической профилактики. Разработка ме-
тодов экспресс-диагностики сальмонеллезов и
методов типирования сальмонелл является
одним из важных моментов сдерживания распространения возбудителей [1].
Цель исследования – разработать
метод генетической экспресс-идентификации
сальмонелл.
Материалы и методы.
Разработка праймеров и TaqMan зондов. Из GenBank,
NCBI (
http://www.ncbi.nlm.nih.gov/gene/
или
http://www.xbase.ac.uk
) были получены сиквенсы
гена
invA для разных серовариантов сальмонелл (код доступа NC_011294.1, GenBalnk, NCBI
Salmonella typhimurium (рис.1)).
Рисунок 1 − Структура локуса в 20000 п.о.
Salmonella typhimurium, несущего
invA ген
С помощью программы Mega 5 проводили выравнивание сиквенсов
invA гена, выби-
рали
идентичные у всех серовариантов сальмонелл фрагменты, локализующиеся в первой
половине гена. В процесс разработки олигонуклеотидов их последовательности генериро-
вали
in silico с
помощью программы http://www.ncbi.nlm.nih.gov/tools/primer-blast/ или
http://frodo.wi.mit.edu/primer3/input.htm, проверку специфичности праймеров и зондов
проводили с
использованием web-ресурса
http://www.ncbi.nlm.nih.gov/tools/primer-blast/
.
Оценку конформации шпилечных структур, образуемых праймерами и зондами, силу их
связей и температуру плавления осуществляли с
использованием web-ресурсов
http://mfold.rna.albany.edu/?q=DINAMelt/Quickfold,
http://www.atdbio.com/tools/oligo-
calculator.
Расчет образования гетеро- и аутодимеров и энергию их связи проводили с ис-
пользованием
программы
«OligoAnalyzer»
(http://eu.idtdna.com/analyzer/Applications/OligoAnalyzer/). Место отжига праймеров и зон-
дов проверяли с помощью программы http://bioinformatics.org/seqext/.
ПЦР. Экстракцию бактериальной ДНК проводили кипячением (10 минут) одной
бактериальной петли 16 – 20 часовой чистой культуры сальмонелл в 100 мкл 5% Chelex-
100 в 1хТАЕ буфере, после чего центрифугировали при 14000 об./мин в течение 10 минут.
Экстракт ДНК в количестве 10 мкл вносили в 40 мкл мультипраймерной ПЦР-смеси,
содержащей из
расчета на одну реакцию: а)10хПЦР буфера − 7 мкл; б) 3 мМ MgCl
2
; в) рас-
твор нуклеотидов (2 мМ) – 7 мкл; г) Taq-полимеразу - 2 ед; д) праймеры прямые и обрат-
ные для генов
invA и
sefA − по 20 пкмоль каждого; е) зонды, специфичные для
invA и
sefA гена, − по 10 пкмоль; ж) присадки, улучшающие ход реакции; з) деионизованную во-
ду − add 40 мкл.
Амплификацию осуществляли c использованием следующего режима: 94
С – 4
мин, 45 циклов (95
С – 30 с, 60
С – 70 с). Детекцию флюоресценции проводили после
каждой стадии отжига на каналах FAM и JOE. Верификацию образования ПЦР продуктов
осуществляли электрофорезом 14 мкл образцов в 2% агарозном геле с бромидом этидия
(0.5 мкг/мл); параметры электрофореза − 200 В, 100 мА, 1 час.
Для проведения ПЦР, позволяющей выявлять сальмонеллы и среди них
S. enter-
itidis, были использованы праймеры и зонды, приведенные в таблице 1.
Таблица 1 − Использованные праймеры и зонды для идентификации сальмонелл и
среди них
S. enteritidis
Ген
Праймеры и зонды
Размер, п.о.
Признак
SEFA-1
GGCTTCGGTATCTGGTGGTGTG
97
Выявление
S. enteritidis
по специфическим для
них маркеру
SEFA-2
GTCATTAATATTGGCTCCCTGAATA
Флюоресцирую-
щий зонд SEFA
CCACTGTCCCGTTCGTTGATGGACA
Inv-1
TGTCGTCATTCCATTACCTACC
288 п.о. Выявление специфиче-
ского маркера для рода
сальмонелл
Inv-2
ACGGTGACAATAGAGAAGACAAC
Флюоресцирую-
щий зонд INVA
TCTGGTTGATTTCCTGATCGCA