5.4. Обеспечение условий асептики в процессе фермен‐
тации
Стерильность оборудования и коммуникаций имеет первосте-
пенное значение при проведении ферментации в асептических
условиях.
47
Борьба с посторонними микроорганизмами ведется путем меха-
нической чистки, мойки, дезинфекции и стерилизации оборудования
и трубопроводов. В качестве дезинфицирующего агента чаще всего
используют в производственных условиях 0,1–0,2%-ный раствор кау-
стической соды. Аппаратуру и коммуникации стерилизуют острым
паром при температуре 120–140°С.
При массовом развитии инфекции в дополнение к стерилизации
оборудования предварительно проводят следующие операции:
– механическую чистку загрязненных мест и мойку холодной водой;
– дезинфекцию 0,1–0,2%-ным раствором каустической соды
при полном заполнении аппарата и перемешивании при температу-
ре 50–70°С;
– ополаскивание холодной водой (при перемешивании).
При мойке аппаратов особое внимание обращают на гнезда для
контрольно-измерительных приборов, фланцевые соединения, пробо-
отборные краны, тупики. Стерилизации острым паром подвергают как
сам ферментатор, так и систему трубопроводов.
Для автоматического контроля и регулирования параметров тех-
нологического процесса ферментаторы оборудованы датчиками.
Наиболее важное требование к датчикам – способность выдерживать
многократную стерилизацию острым паром. Наиболее чувствительны
к температурным изменениям датчики рН среды.
Необходимо учитывать, что различные патрубки и люки плохо
поддаются стерилизации из-за образования в них воздушных пробок,
которые резко нарушают условия прогрева стенок. При конструиро-
вании аппаратов стремятся к сокращению числа отводящих и подво-
дящих штуцеров, увеличению их диаметра и уменьшению высоты.
Для обеспечения асептических условий ферментации, помимо
операций по стерилизации воздуха, питательных сред и оборудования,
должны быть выполнены следующие требования:
– наличие термических (паровых) затворов на коммуникациях;
– ввод добавок в ферментатор и отбор проб без нарушения усло-
вий асептики;
– использование сильфонной арматуры и многофункционального
сильфон-коллектора;
– герметичность оборудования и коммуникаций.
Термические затворы предусматривают на всех не задействован-
ных в период ферментации коммуникациях. Затворы (рис. 5.5) могут
быть тупиковыми (более экономичны по затратам тепловой энергии)
или с пролетным паром (более эффективны, но энергозатратны).
48
пар
пар
пар
пар
конденсат
а
б
Рис. 5.5. Схема термического затвора:
а – тупиковый; б – с пролетным паром
Для эффективной стерилизации арматуры целесообразна врезка
паровой трубки непосредственно в корпус вентиля (или задвижки).
На шлемовой части ферментатора (рис. 5.6) располагается боль-
шое число штуцеров для входных и выходных коммуникаций, что не
способствует поддержанию высокого уровня асептики.
4
к
п
п
фильтр
п
1
2
п
3
к
п
8
9
п
п
к
7
п
6
к
п
5
Рис. 5.6. Схема обвязки ферментатора:
1 – посевной материал; 2 – воздух; 3 – питательная среда; 4 – пеногаситель;
5 – отработанный воздух; 6 – подпитка; 7 – выдача КЖ; 8 – моющий раствор;
9 – пробоотборник
Число штуцеров на верхней части ферментатора сокращается при
использовании сильфон-коллектора (рис. 5.7).
49
Рис. 5.7. Сильфон-коллектор
Сильфонная арматура отличается тем, что в задвижках сальнико-
вое уплотнение штока заменено на двойной стальной сильфон
(рис. 5.8).
Двойная стальная гофра, сжимаясь и растягиваясь, не препятству-
ет движению штока и исключает проникновение инфекции в комму-
никацию через арматуру.
Сильфон
Рис. 5.8. Схема сильфонной арматуры
Дополнительные элементы и узлы во внутренних полостях фер-
ментаторов затрудняют достижение требуемой температуры при сте-
рилизации, особенно в тупиковых полостях. Такими элементами яв-
ляются змеевики для охлаждения КЖ, барботеры для воздуха, трубы
передавливания, термометры сопротивления, датчики различных
КИП и т. д.
В производственных условиях для обеспечения высокого уровня
асептики частота ввода добавок в ферментатор и отбора проб культу-
ральной жидкости должна быть сведена к минимуму.
Засев посевного аппарата или производственного ферментатора
(объемом до 10 м
3
) чистой культурой производят из качалочных колб
50
через посевной штуцер, закрытый колпачком и оснащенный кольце-
вым каналом для размещения смоченного спиртом фитиля. Перед за-
севом шлемовую часть аппарата обрабатывают раствором антисепти-
ка (формалина, хлорной извести, хлорамина), выключают вентиля-
цию в помещении, уменьшают подачу стерильного воздуха в фермен-
татор. Кольцевой фитиль поджигают, специальным ключом отвинчи-
вают колпачок и через пламя вводят микробную суспензию из кача-
лочной колбы. Колпачок обжигают в пламени, закрывают им штуцер
и гасят пламя.
Ввод добавок или отбор проб КЖ можно осуществлять с помо-
щью аппарата Боброва (рис. 5.9), который подсоединяется к фермен-
татору. Приемный сосуд с добавкой (или для пробы КЖ) отсоединяет-
ся от промежуточной камеры и стерилизуется в лабораторном авто-
клаве. После подсоединения сосуда промежуточная камера стерили-
зуется острым паром с контролем температуры по давлению. Содер-
жимое сосуда пережимается стерильным воздухом в ферментатор
(при отборе проб в сосуде создают разрежение).
Рис. 5.9. Устройство для отбора проб и введения добавок
в асептических условиях (аппарат Боброва):
1 – приемный сосуд; 2 – бактериальный фильтр; 3 – сильфонный вентиль;
4 – промежуточная камера; 5 – манометр; 6 – стальная диафрагма;
7 – конденсатоотборник; 8 – ферментатор
51
Для стерильного отбора проб и передачи культуральной жидкости
из биореактора фирмой NBS (США) разработана конструкция эффек-
тивных затворов (рис. 5.10, 5.11).
Рис. 5.10. Затвор для стерильного отбора проб:
1 – сварной входной штуцер; 2 – накидная гайка; 3 – шаровой кран;
4 – сменный наконечник для присоединения шланга; 5 – паровый колпак
Вход пара
Колпачок
Выход пара
Отверстие
для выхода
пара
Биореактор
Рис. 5.11. Затвор для стерильной передачи культуральной жидкости
|