Теллуритовая среда Клауберга (питательныйагар с теллуритом натрия, глицерином и дефибринированной
кровью). На ней задерживается рост кокков и другой микрофлоры зева, что
способствует размножению
бактерий дифтерии.
Идентификация
• Способность бактерий дифтерии продуцировать токсин устанавливают в реакции преципитации в агаре.
Для этого в чашку Петри с питательным агаром, содержащим 15—20%.лошадиной сыворотки, 0,3%
мальтозы и 0,03% цистина, кладут полоску фильтровальной бумаги (1,5 X 6 см), пропитанную
антитоксической противодифтерийной сывороткой, содержащей 5000 АЕ/мл. Чашку подсушивают при 37°С
в течение 30 мин и засевают исследуемые культуры в
виде перпендикулярных к бумаге штрихов на
расстоянии 0,6—0,8 см от края бумаги. В качестве контроля используют заведомо токсигенную культуру.
Посевы инкубируют при 37°С
до следующего дня. При размножении токсигенной культуры в месте
соединения токсина с антитоксином в плотной питательной среде образуется преципитат в виде белых
линий — «усов»
Проба ПИЗУ
• Для определения цистиназы в столбик питательного агара с циститом уколом засевают исследуемую
культуру. Посевы инкубируют при 37° С до следующего дня. Истинные дифтерийные палочки вызывают
почернение среды по ходу посева (в результате образования сульфида свинца),
вокруг которого
появляется зона
коричневого цвета, а на глубине 1 см от поверхности в среде образуется коричневое
«облачко».
Проба Закса
• Для определения уреазы готовят спиртовый раствор мочевины и раствор индикатора — фенолового
красного, которые смешивают перед употреблением в
соотношении 1 • 9 и разливают по 1—2 мл в
агглютинационные пробирки. Затем одну петлю исследуемых бактерий вносят и растирают по стенке
пробирки. После 20—30-минутной инкубации при 37°С наблюдают расщепление мочевины уреазой, в
результате чего среда приобретает красный цвет.