Заключение Воздействие НИЛИ в голубом (488 нм) и зеленом
(543 нм) диапазоне не оказывает видимого воздействия
на морфофункциональные свойства тромбоцитов чело-
века. Воздействие НИЛИ в ультрафиолетовом (408 нм)
и красном (637 нм) диапазоне вызывает активацию
и дегрануляцию тромбоцитов, при этом не происходит
нарушения их общей структуры. Применение в клини-
ческой практике технологий фотомодификации крови
с помощью НИЛИ требует параллельного анализа мор-
фофункциональных свойств тромбоцитов для оценки
качества тромбоцитарной популяции, для выявления
возможной активации тромбоцитов.
Литература 1.
Горбатенкова Е.А., Азизова О.А., Владимиров Ю.А. Реакти-
вация супероксиддисмутазы излучением гелий-неонового
лазера // Биофизика. – 1988. – № 33. – С. 717–718.
2.
Козлов В.И. Механизмы фотобиостимуляции // Лазерная ме-
дицина. – 2010. – Т. 14. – Вып. 4. – С. 4–13.
3.
Козлов В.И., Литвин Ф.Б., Рыжакин С.М. Влияние излучения
гелий-неонового лазера на сосуды микроциркуляторного
русла мягкой оболочки головного мозга // Лазерная медици-
на. – 2002. – Т. 6. – Вып. 2. – С. 22–24.
4.
Лойко Е.Н., Самаль А.Б., Шуляковская С.М. Н
2
О
2
-индуциро-
ванная агрегация тромбоцитов и увеличение внутриклеточ-
ной концентрации ионов Са2+ блокируются ингибиторами
внутриклеточной сигнализации // Биохимия. – 2003. – Т. 68. –
№ 11. – С. 1506–1510.
5.
Макаров М.С., Хватов В.Б., Кобзева Е.Н. и др. Морфофункци-
ональный анализ тромбоцитов человека с помощью виталь-
ного окрашивания // Бюллетень экспериментальной биологии
и медицины. – 2013. – № 9. – С. 388–391.
6.
Макаров М.С. Мониторинг морфофункционального статуса
тромбоцитов человека в условиях окислительного стресса, ин-
дуцированного перекисью водорода // Медицинский Алфавит.
Современная лаборатория. – 2017. – Т. 3. – № 26. – С. 38–39.
7.
Марченко А.В., Дуткевич И.Г., Мусалов М.А. Применение
фотогемотерапии в комплексном лечении язвенной болезни //
Эфферентная терапия. – 1995. – Т. 1. – № 2. – С. 65–67.
8.
Москвин С.В., Фёдорова Т.А., Фотеева Т.С. Плазмаферез и ла-
зерное освечивание крови. М.–Тверь: Триада, 2018. – 416 с.
9. Оптическая биомедицинская диагностика. В 2 т. Т. 1 / Пер.
с англ. под ред. В.В. Тучина. – М.: ФИЗМАТЛИТ, 2017. – 560 с.
10.
Петрищев Н.Н., Зубов Б.В., Дементьева И.Н. Сравнительное
изучение влияния модулированного светодиодного облучения
крови (630 нм, 450 нм) на агрегационную активность тромбо-
цитов // Лазерная медицина. – 2011. – Т. 15. – Вып. 3. – С. 49–52.
11.
Улащик В.С. Фотодинамическая терапия – технология
XXI века // Физиотерапия, бальнеология и реабилита-
ция. – 2013. – № 1. – С. 36–43.
12. Эфферентная терапия / Под ред. А.Л. Костюченко. – СПб.:
Фолиант, 2003. – 432 с.
13.
Breitbart H., Levinshal T., Cohen N. et al. Changes in calcium
transport in mammalian sperm mitochondria and plasma membrane
irradiated at 633 nm (HeNe laser).
J. of Photochemistry and Photobiology B. 1996; 34 (2–3): 117–121.
14.
Freitag J., Barnard A., Rotstein A. Photoactivated platelet-rich
plasma therapy for a traumatic knee chondral lesion.
BMJ Case Rep . 2012; Р. bcr2012006858.
15.
Løvschall H., Arenholt-Bindslev D. Effect of low level diode laser
irradiation of human oral mucosa fibroblasts
in vitro .
Lasers in Surgery and Medicine . 1994; 14 (4): 347–354.
16.
Lubart R., Friedmann H., Sinyakov M. et al. The effect of HeNe
laser (633 nm) radiation on intracellular Cа2+ concentration in
fibroblasts.
Laser Therapy . 1997 (1); 9 (3): 115–120.
17.
Paterson K.L., Nicholls M., Bennell K.L. et al. Intra-articular
injection of photo-activated platelet-rich plasma in patients with
knee osteoarthritis: a double-blind, randomized controlled pilot
study.
BMC Musculoskelet Disord . 2016; 17: 67.
18.
Zhevago N.A., Samoilova K.A. Pro- and anti-inflammatory cytokine
content in human peripheral blood after its transcutaneous (
in vivo )
and direct (
in vitro ) irradiation with polychromatic visible and
infrared light.
Photomed Laser Ther . 2006; 24 (2): 129–139.