ИННОВАЦИОННОЕ РАЗВИТИЕ АПК КАЗАХСТАНА: ТЕНДЕНЦИИ РАЗВИТИЯ

ҚАЗАҚСТАННЫҢ АӨК ИННОВАЦИЯЛЫҚ ДАМУЫ: АУЫЛШАРУАШЫЛЫҚ, ВЕТЕРИНАРЛЫҚ ЖӘНЕ 
ТЕХНИКАЛЫҚ ҒЫЛЫМДАРДЫҢ ДАМУ ТЕНДЕНЦИЯЛАРЫ 
 
34
12. Ozman S.K. and Hattat G.1999. Biological control of Phytoptus avellanae Nal. And Cecidophyopsis 
vermiformis Nal. (Acarina:Eriophyoidea) by Verticillium lecanii (Zimm.) Viegas. Proc. 4th Turk. Nat. Con.Biol. 
Control. Turkey. 189-200p 
13. Ozman  S.K.,  2002.  Kampimodromus  aberrans  (Oud.)  (Mesostigmata:Phytoseiidae)  as  a  predator 
of  Phytoptus  avellanae  Nal.  (Prositgmata:Phytoptidae).  XI.  International  Congress  of  Acarology.  Merida, 
Yucatan, Mexico, 8-13 Sept. 2002. 249-250p. 
14. Tuncer C. and Ecevit, O., 1996a. Fındık zararlıları ile mücadelede entegre model tasarımı. Fındık 
ve Diğer Sert Kabuklu Meyveler Sempozyumu, Samsun, 40-54. 
15. Tuncer C. and  Ecevit O., 1996b. Amerikan beyaz kelebeğinin Samsun ili fındık üretim alanlarındaki 
kısa  biyolojisi  ve  doğal  düşmanları  üzerinde  araştırmalar.  Fındık  ve  Diğer  Sert  Kabuklu  Meyveler 
Sempozyumu, Samsun, 134-145. 
16. Tuncer C.and Ecevit O.,1997. Current status of hazelnut pests in Turkey. Acta Hort. 445: 545-552. 
17. Tuncer C. Akça  I. and Saruhan I. 2001. Integrated pest management in Turkish hazelnut orchards. 
Acta Hort. 556: 419-429. 
18. Tuncer,  C.,    2009.    Arthropod  Pest  Management  in  Organic  Hazelnut  Growing.  Proc.  VII
th 
Intern. 
Congress on Hazelnut . Eds.: L. Varvaro and S. Franco. Acta Hort. 845, 571-576. 
19. Tuncer, C.,2015.Hazelnut pests. 
www.findikci.net
 Accessed:11.02.2015. 
 
 
EFFECTS OF BEAUVERİA BASSİANA ON HAZELNUT FILBERT APHID 
[MYZOCALLIS CORYLI (GOETZE) HOMOPTERA:APHIDIDAE]
* 
 
M.Micik - Dept. of Plant Protection,  Faculty of Agriculture, Ondokuz Mayis University,  Samsun 55139, 
Turkey 
I.Akca - Dept. of Plant Protection,  Faculty of Agriculture, Ondokuz Mayis University,  Samsun 55139, 
Turkey 
 
The filbert aphid, [Myzocallis coryli (Goetze)] is one of the pests of hazelnut growing area of Turkey. In 
this  investigation,  influences  of  different  consentrations  of    Beauveria  bassiana  (  Bals.)  Viull.  (Naturalis  % 
7,16  B.bassiana  strain  ATCC  74040)  ]  were  studied  on  filbert  aphid  nymphs  on  laboratory  conditions.  In 
laboratory  study  results  indicated  Beauveria  bassiana  caused  heavy  mortality  of  the  nymphal  stage  of  M. 
coryli.  In  contrast,  100%  nymphal  mortality  with    400,  200  and  150  mL  doses  of  Beauveria  bassiana  was 
reached 7-8 days after application.  
Key words: Myzocallis coryli, Beauveria bassiana, Biopesticide, Hazenut. 
 
INTRODUCTION 
Hazelnut  is  the  most  important  nut  crop  of  Turkey.  Hazelnut  cultivation  in  Turkey  covers  almost 
640.000 ha of land, and Turkey is the world’s primary producer of hazelnut, representing nearly 75% of world 
hazelnut production (Anonymous 2015a,b). Insect pests are the major concern of many hazelnut growers in 
Turkey. The typies of pests and their severity vary from area to area and from year to year. Myzocallis coryli 
is  a  pest  causes  damage  to  hazelnut  some  regions  and  years  in  Turkey.  Damage  is  caused  by  large 
numbers  of  aphids  feeding  on  the  foliage  and  removing  plant  sap  with  their  sucking  mouthparts.  Feeding 
damage  reduces  tree  vigor  and  quality  of  the  nuts  produced.  Aphids  also  secrete  large  quantities  of 
honeydew which may cause severe leaf burn, scorch, or staining of the nuts (Tuncer 2015). 
Using  biological  formulations  to  keep  the  pest  level  below  the  economic  damage  threshold  without 
affecting the beneficial populations is one of the most important elements of an integrated pest management. 
Interest  in  the  use  of  biopesticides  with  selectivity  towards  phytophagous  insects  has  increased  in  recent 
years,  particularly  in  the  cropping  systems  that  rely  on  natural  enemies  as  major  component  of  integrated 
pest  management  (Tengerdy  and  Szakacs,  1998;  Rausell  et  al.,  2000;  Gupta  and  Dikshit,  2010;   Marrone, 
2013).  Use  of  biopesticides  as  replacement  or  alternative  to  the  conventional  insecticides  can  reduce 
environmental pollution and preserve non-target organisms. 
Naturalis  formulation  is  a  bioinsecticide  based  on  living  conidiospores  of  the  naturally  occuring 
Beauveria  bassiana  strain  ATCC  74040.   Beauveria  bassiana  (Balsamo)  Vuillemin  (Deuteromycetes, 
Moniliales) is an entomopathogenic fungus, recognized in 1835 by Agostino Bassi as the causal agent of the 
white  muscardine  disease  of  the  silk  worm.  It  can  affect  a  wide  range  of  arthropod  pests,  such  as 
coleopterans, mites,  and  hemipterans,  and  all their  developmental  stages,  but  different  B.  bassiana  strains 
differ  in  their  host  range  (Knauf,  1992;  Lacey  et  al.,  1999;  Mayoral  et  al.,  2006;  Talaei-Hassanloui  et  al., 
2007; Ladurner et. al. 2015). 
The  objective  of  this  study  was  to  determine  the  toxicity  of  Naturalist  (Beauveria  bassiana)  against 
Myzocallis coryli under laboratory conditions. 

ИННОВАЦИОННОЕ РАЗВИТИЕ АПК КАЗАХСТАНА: ТЕНДЕНЦИИ РАЗВИТИЯ 
СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ, ВЕТЕРИНАРНЫХ И ТЕХНИЧЕСКИХ НАУК 
 
35
 
MATERIAL AND METOD 
The  nymphs  (second  stage)  of  Myzocallis  coryli  were  collected    from  hazelnut  orchards  in  Samsun, 
Turkey.  The  experiment  was  designed  as  an  (3x4x3)  factorial  treatment  arrangement  in  a  randomized 
complete block design with four replications.  
The doses were prepared as formulation doses with 100 liter water.
 
Test solutions were prepared from 
the formulations by further dilution in water to produce seven different doses(400, 200, 150, 100, 50, 25 and 
5 mL/100 L water). Hazelnut leaf was dipped in the each dose solution of Naturalis for 60 seconds. Control 
leaf disks were dipped in water for the same period of time.  All leaves were left at room temperature for 30 
min to evaporate the solvent. Then, the nymphs were  placed on the leaves in 9-cm Petri dishes containing 
sterile  water-soaked  blotters  (10  nymphs  per  plate).  Petri  dishes  were  loosely  capped  to  prevent  escape. 
Control leaves  were  treated  with  sterile  distilled  water  (2-mL).  Dishes  were  incubated  at  25±1°C  at  65±5% 
and a 16:8h light:dark photoperiod for 8 days. All dishes  were inspected daily. Dead nymphs were counted 
under a Leica EZ4 stereo dissecting scope at 40-70X magnification, and percent mortality was calculated per 
Petri dish. 
The mortality data was corrected by Schneider Orelli’s Formula (Puntener 1981). Additionally, all 
data were analyzed using SPSS 11.0 (Statistical package for social science) statistical software.
 
 
RESULTS AND DISCUSSION 
Toxicity  of  Naturalis  formulation  to  M.coryli  was  presented  in  Table  1.  Naturalis  formulation  were 
evaluated in  toxicity  tests.  This formulaton  was  effective  against  M.coryli  under  laboratory  condition.  It  was 
observed  that  mortality  rate  of  M.coryli  increased  depending  on  doses. 
At  the  three  highest  dose  reached 
100%  mortality  after  7  days.
  The  mortality  ratio  of  M.coryli  increased  associated  with  time  while  the 
percentage  of  mortality  decreased  with  the  dose  reduction.  There  were  also  significant  interaction  among 
time and dose of Naturalis. The efficacy of biopesticides was the highest 7 days after application. There was 
no mortality in untreated controls after 8 days. Very low mortality occurred during the first day after treatment 
for  all  doses.  However,  after  3  days,  enough  mortality  had  occurred  that  comparisons  could  be  made.  In 
general mortality rates increased from 3 day to day 8 (Table 1). The recommended doses of Naturalis is 100-
300 mL for  many pests. So, the recommended doses of Naturalis for other pests is effective dose to control 
M.coryli. 
 
Table 1. Efficiancy of Naturalis (
Beauveria bassiana ) 
against 
M.coryli
. 
 
Dose
s 
(ml) 
Mortality (%)after application  
 1 day 
  
2 day 
 
3 day 
4 day 
5 day 
6 day 
7 day 
8 day 
 
0 
0,0±0,0 
0,0±0,0 
0,0±0,0 
0,0±0,0 
0,0±0,0 
0,0±0,0 
0,00±0,00 
0,0±0,0 
5 
2,0±2,0 
ba 
2,0±2,0 b  6,0±4,0 d 
18,0±3,7 e  30,0±4,4 d  32,0±3,7 d  36,0±4,0 d  36,0±4,0 d 
25 
0,0±0,0 b  0,0±0,0 b  12,0±2,0 dc 
28,0±3,7 
ed 
56,0±5,0 c  58,0±3,7 c 
60,0±4,47 
c 
62,0±3,7 c 
50 
0,0±0,0 b  0,0±0,0 b  24,0±5,0 cb 
56,0±7,4 
cb 
70,0±7,0 
cb 
76,0±5,0 b  76,0±5,0 b  76,0±5,0 b 
100 
0,0±0,0 b  0,0±0,0 b 
18,0±5,8 
dcb 
44,0±5,0 
dc 
72,0±5,8 
cb 
78,0±3,7 b  82,0±3,7 b  94,0±4,0 a 
150 
0,0±0,0 b  0,0±0,0 b  26,0±5,0 cb 
58,0±8,6 
cb 
82,0±7,3 
ba 
98,0±2,0 a 
100,0±0,0 
a 
100,0±0,0 
a 
200 
6,0±2,4 a  8,0±2,0 a  48,0±3,7 a 
78,0±2,0 a  94,0±2,4 a  94,0±2,4 a 
100,0±0,0 
a 
100,0±0,0 
a 
400 
4,0±2,4ba 
4,0±2,4b
a 
32,0±5,8 b 
68,0±5,8 
ba 
96,0±4,0 a 
100,0±0,0 
a 
100,0±0,0 
a 
100,0±0,0 
a 
 
Similarly, Beauveria bassiana  is determined that it has toxic effect other aphids;  Rhopalosiphum padi 
(Sedighi et. al. 2012), Aphis gossypii (Lapez et.al. 2014), Russian wheat aphid (Hatting et.al. 2015),  
In  the  present  study  Beauveria  bassiana    also  effectively  caused  mortality  of  M.coryli  at  the 
larboratory.  It  is  also  predict  that    Beauveria  bassiana    is likely to  be  an  effective  biopesticide to  control  of 
M.coryli in hazelnut orchards. 
In  a  hazelnut    Integreted  Pest  Management  (IPM)    program,  the  emphasis  is  on  preventative 
biological, cultural and physical control, with minimal chemical use. When chemicals are the only option, they 
must  be  used  in  a  way  to  sustain  their  effectiveness  as  long  as  possible. Thus,  it is important  to  apply  the 
chemical only after an established economic threshold level of the pest has been reached. According to our 

ҚАЗАҚСТАННЫҢ АӨК ИННОВАЦИЯЛЫҚ ДАМУЫ: АУЫЛШАРУАШЫЛЫҚ, ВЕТЕРИНАРЛЫҚ ЖӘНЕ 
ТЕХНИКАЛЫҚ ҒЫЛЫМДАРДЫҢ ДАМУ ТЕНДЕНЦИЯЛАРЫ 
 
36
results, Naturalis was most effect to control of M.coryli with the values of  150 mL. Because of that Naturalis 
can use to control M.coryli and reliable biopesticides for hazelnut IPM.  
 
References: 
1.  Anonymous 2015a. 
http://www.faostat.fao.org
 Accessed:11.02.2015 
2.  Anonymous 2015b. 
http://www.ordutb.org.tr
 Accessed:11.02.2015 
3.  Gupta, S. and A.K.Dikshit. 2010. Biopesticides: An ecofriendly approach for pest control. Journal of 
Biopesticides. 3(1): 186 – 188. 
4.  Hatting J. L., Wraight S. P. and Miller R.M., 2015. Efficacy of Beauveria bassiana (Hyphomycetes) 
for  Control  of  Russian  Wheat  Aphid  (Homoptera:  Aphididae)  on  Resistant  Wheat  Under  Field  Conditions. 
Biocontrol Science and Technology (August 2004), Vol. 14, No. 5, 459-473 
5.  Knauf  T.A.,1992.  Naturalis-L:  a  biorational  insecticide  for  boll  weevil  and  whitefly  control.  Proc. 
Beltwide Cotton Conference 1: 21-32.  
6.  Lacey  L.A.,  Horton  D.R.,  Chauvin  R.L.  and  Stocker  J.M.,1999.  Comparative  efficacy  of  Beauveria 
bassiana,  Bacillus  thuringiensis,  and  aldicarb  for  control  of  Colorado  potato  beetle  in  an  irrigated  desert 
agroecosystem and their effects on biodiversity. Entomologia Experimentalis et Applicata 93: 189-200. 
7.  Ladurner E., Benuzzi M., Fiorentini F. and Franceschini S., 2015  Beauveria bassiana strain ATCC 
74040  (Naturalis®),  a  valuable  tool  for  the  control  of  the  cherry  fruit  fly  (Rhagoletis  cerasi).  Archived  at 
http://orgprints.org/13651
  
8.  Lopez D.C., Zhu-Salzman K., Ek-Ramos M.J. and Sword G.A., 2014. The Entomopathogenic Fun-
gal  Endophytes Purpureocillium  lilacinum (Formerly Paecilomyces  lilacinus)  and Beauveria  bassiana  Nega-
tively Affect Cotton Aphid Reproduction under Both Greenhouse and Field Conditions. PLOS ONE 9 (8), 1-8. 
9.  Mayoral  F.,  Benuzzi  M.  and  Ladurner  E.,2006.  Efficacy  of  the  Beauveria  bassiana  strain  ATCC 
74040  (Naturalis®)  against  whiteflies  on  protected  crops.  Integrated  Control  in  Protected  Crops, 
Mediterranean Climate, IOBC/wprs Bulletin 29: 83-88.  
10. Rausell  C.,  Martínez-Ramírez  A.C.,  García-Robles  I,  Real  M.D.  2000.  A  binding  site  for  Bacillus 
thuringiensis Cry1Ab toxin is lost during larval development in two forest pests. Appl. Environ. Microbiol. 66: 
1553-1538. 
11. Sedighi A., Ghazavi M., Allahverdipour H.H. and Ahadiyat A., 2012. Study On The Effects Of Some 
Iranıan Isolates Of The Fungus Beauveria Bassiana (Balsomo) Vuıll. (Deuteromycotina: Hyphomycetes) On 
The  Bird  Cherry-Oat  Aphıd,  Rhopalosıphum  Padi  (Linnaeus)  (Hemiptera:  Aphididae),  Under  Laboratory 
Conditions. Mun. Ent. Zool. Vol. 7, No. 1, January 2012. 267-273. 
12. Talaei-Hassanloui  R.,  Kharazi-Pakdel  A.,  Goettel  M.S.,  Little  S.  and  Mozaffari  J.,  2007. 
Germination  polarity  of  Beauveria  bassiana  conidia  and  its  possible  correlation  with  virulence.  Journal  of 
Invertebrate Pathology 94: 102-107. 
13. Tengerdy R.P. and  Szakács G., 1998. Prospectives in agrobiotechnology. J. Biotechnol. 66: 91-99. 
14. Tuncer C., 2015. Hazelnut pests. 
www.findikci.net
 Accessed:11.02.2015. 
 
 
УДК: 633.913 
 
КӨК-САҒЫЗ ӨСІМДІГІНҢ ҚҰРАМЫНДАҒЫ АМИН ҚЫШҚЫЛДАРЫН ЗЕРТТЕУ 
 
Азимбаева Г.Е. - х.ғ.к., доцент, Қазақ мемлекеттік қыздар педагогикалық университеті 
Диярова  Б.М.  –  магистрант,  Алматы  қаласы,  Қазақ  мемлекеттік  қыздар  педагогикалық 
университеті 
 
Көк-сағыз  өсімдігінің  құрамындағы  амин  қышқылдары  зерттелінді.  Бұл  өсімдік  құрамында  13 
амин  қышқылы  бар.  Олардың  мөлшері  гүлінде,  сабағында  және  тамырында  әр  түрлі    кездесетіні 
анықталды. 
Негізгі ұғымдар: Көк-сағыз, амин қышқылдары, фенилаланин, лизин, цистеин. 
 
Амин  қышқылдарының  организмдегі  маңыздылығы  ақуыздардың  барлық  өмірлік  процестердегі 
үлкен  рөлімен  анықталады.  Ең  ірі  жануардан,  ең  кіші  микробқа  дейінгі  ағзалар  ақуыздардан  тұрады. 
Ақуыздардың неше түрлі формалары тірі ағзадағы болып жатқан барлық процестерге қатысады. Адам 
денесінде ақуыздардан бұлшық еттер, сіңірлер, барлық мүшелер және шаш, тырнақтар қалыптасады; 
ақуыздар  сұйықтықтар  мен  сүйектің  құрамына  кіреді.  Ағзадағы  барлық  процестерді  тездететін  және 
реттейтін  ферменттер  мен  гормондар  да  ақуыздар  болып  табылады.  Ағзада  ақуыздың  аздығы  ісікке 
шалдықтыратын  су  балансының  бұзылуына  әкеліп  соқтырады.  Ағзадағы  әрбір  ақуыз  қайталанбас 
және арнайы мақсаттар үшін өмір сүреді. Ақуыздар өзара алмастырылмайды[1, 144 б.].  
Зерттеудің мақсаты: Көк-сағыз өсімдігінің құрамындағы аминқышқылдарын зерттеу. 

ИННОВАЦИОННОЕ РАЗВИТИЕ АПК КАЗАХСТАНА: ТЕНДЕНЦИИ РАЗВИТИЯ 
СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ, ВЕТЕРИНАРНЫХ И ТЕХНИЧЕСКИХ НАУК 
 
37
Зерттеу  обьектісі  ретінде  2013  жылдың    қыркүйек-қазан    айларында  Кіші  Алматы  шатқалынан 
жинап алынған көк-сағыз өсімдігі. 
ТӘЖІРИБЕЛІК БӨЛІМ 
Көк-сағыз өсімдігінің  құрамындағы амин қышқылдарының мөлшерін анықтау 
Аминқышқылдарының  мөлшерін  Shimadzu  LC-20AD  (Жапония)  сұйық  хроматографында  SPD-
20A детекторымен (254 нм) анықталды. Хроматографиялық колонкасы 250х4,6 мм Supelko C 18.5 мкм 
(АҚШ).  Хромтографиялық  анализді  градиентті  режимде  элюенттің шығыны  1,2 мл/мин  болатын  және 
колонка термостатының температурасы 40°С да жүргізілді. Қозғалмалы фаза ретінде рН 5,5 болатын 
6,0  мм  натрий  ацетатының  ерітіндісі  (А  компоненті),  ацетонитрилдағы  изопропил  спиртінің  1% 
ерітіндісі (В компоненті) және рН 4,05 болатын 6,0 мм натрий ацетатының ерітіндісі (С компоненті).  
Градуирленген  тәуелділікті  құру  үшін  1  М  тұз  қышқылының  ерітіндісіндегі  концентрленген 
аминқышқылдарының  ерітіндісі пайдаланылды. Бұл  үшін  5  сынауыққа  бастапқы  ерітіндіден  150,  100, 
50, 25 және 15 мкл құйып 65°С капилляр арқылы түсетін ауа тоғында кептіреді. Кептірілген аликвотқа 
0,10мл  0,15М  NaOH  ерітіндісін  құйып  араластырады.  Содан  соң  изопропил  спиртіндегі 
фенилизотиоционат ерітіндісінен 0,35 мл және 0,05 мл дистилденген су құйып араластырады. Ерітінді 
тұнық болмаған жағдайда сынауықты су моншасында 60 С температурада 10-15 минут қыздырады. 20 
минут  бөлме  температурасына  қойып,  содан  соң  су  моншасында  60°С  температурада  10-15  минут 
кептіреді.  Кепкен  қалдықты  1  мл  дистилденген  суда  ерітіп  диаметрі  0,45  мкм  болатын  мемраналық 
фильтрде сүзеді.  
Сынамаларды  дайындау  кезінде  сынамалар  қышқылдық  гидролиз  бен  аминқышқылдары 
фенилизотиоцианат  ерітіндісімен  модификацияланды.  Содан  соң  10  мл  6  М  тұз  қышқылын  қосады. 
Қоспаны жақсылап араластырып аргон тоғымен 2 минут үрлейді. Қақпақпен тығыз жауып термостатқа 
орналастырады.  Гидролизді  110°С  температурада  3  сағатта  жүргізеді.  Гидролизаттарды  суытып, 
содан соң сүзіп 0,5 мл аликвот алынады. Аликвоттарды 65°С ауа тоғында кептіреді.  
Кептірілген  аликвоттарға  0,15  М  NaOH  ерітіндісінің  0,10  мл  қосып  жақсылап  араластырады. 
Содан соң изопропил спиртіндегі фенилизотиоционат ерітіндісінің 0,35 мл қосып араластырып 0,05 мл 
дистилденген  су  қосады.  Ерітінділерді  20  мин.  бөлме  температурасында  тыныштыққа  қойып,  содан 
соң  су  моншасында  60°С  температурада  10-15  минут  кептіреді.  Тұнбаны  1  мл  дистильденген  суда 
ерітіп  диаметрі  0,45  мкм  болатын  мембраналық  фильтрмен  сүзіп  алады.  Алынған  ерітінділерді 
хроматографиялық анализден өткізеді [2, 99 б.]. 
Аминқышқылдарының  мөлшерін  Shimadzu  LC-20AD  (Жапония)  сұйық  хроматографында  SPD-
20A детекторымен (254 нм) анықталды.  
 

жүктеу/скачать 11,62 Mb.

Достарыңызбен бөлісу: