РЕЗуЛЬТАТы И Их ОбСуЖДЕНИЕ

ТРАВМАТОЛОГИЯ ЖӘНЕ ОРТОПЕДИЯ 3-4 (33-34)/2015
37 
международного форума «Человек и трав-
ма». - Нижний Новгород, - 2001, - С.16-18.
18. Корж  А.А.  Некоторые  замечания  о 
принципах  лечения  переломов  //  Травма-
тол. ортопед. - 1989. - № 1. - С.1-3.
19. Ключевский  В.В.  Хирургия  повреж-
дений:  Руководство  для  фельдшеров,  хи-
рургов  и  травматологов  районных  боль-
ниц.  -  Изд.2-е.  –  Рыбинск:  Рыбинский  дом 
печати, 2004. – 784 с.
20. Корж А.А. Остеосинтез - достиже-
ния и проблемы // Ортопед. травматол. - 
1992. - №1. - С.1-4.
ҚОЛ-АЯҚТыҢ ұЗыН СҮЙЕКТЕРДІҢ СыНуЛАРыН ЕМДЕуДЕ ИЛИЗАРОВТыҢ 
әДІСІН ЖЕТІЛДІРу ТәСІЛДЕРІ
а.Г. ГУсеЙНов  
Түсініктеме.  
автор ошақтан тыс остеосинтез операцияда, сондай - ақ, операциядан 
кейінгі емдеуде оңтайландыру құралдарын және тәсілдерін ұсынды. олар 205 науқастарды 
емдеуде  сәтті  қолданды:  92  пациент  остеосинтез  операция  кезінде  және  103  пациент 
операциядан кейінгі кезеңде. Біріншіде оң нәтиже 88 (95,6%), ал екіншіде 98 (95,1%) па-
циенттерде болды, бұл бақылау топтағы науқастардан да жоғары екенін көрсетті. соны-
мен, Изизаровтың әдісіне өте берілгеніне қарамастан, оның барлық өзіндік оң қасиеттері 
таусылмаған, сондықтан оны жетілдіру бойынша жаңа әзірлемелерді одан әрі іздеуге орын-
ды.
Негізгі сөздер: қол - аяқтың ұзын сүйектері, сынулардың баяу бітісуі, жалған буын, Или-
заров әдісі, Илизаров аппараты, ошақтан тыс остеосинтез.
ways of improvinG tHe ilizarov in tHe treatment of fractures of 
lonG bonts
а.Н. HUSeyNoV  
abstract. Diaphyseal fractures of the long bones of the limbs are among the most severe 
damage  of  the  musculoskeletal  system  with  a  high  incidence  of  false  joints  and  disability  of 
patients.  osteosynthesis  by  Ilizarov  method  refers  to  the  most  optimal  treatment  of  complex 
fractures and false joints of long bones. However, not always possible to take full advantage of 
the Ilizarov method. therefore, the author provides an apparatus and methods for optimization 
of both extrafocal osteosynthesis operation and post-operative treatment. they are successfully 
used  in  the  treatment  of  205  patients:  92  with  the  osteosynthesis  operation  and  103  -  in  the 
postoperative period. In this case 65 of the first (92) patients were used any one of the devices, 
and 27 - their various combinations (total time they are applied 112); 46 patients from the second 
(103 patients) is applied by one of the methods or devices, and at 57 - combine two or more 
process or device simultaneously (a total of 259 times). In the first positive result was achieved 
in 88 (95.6%) patients, and the second - in 98 (95.1%), significantly higher than the control group 
(72.6%).  thus,  despite  the  extreme  methods  or  return  Saarow,  he  has  not  exhausted  all  its 
positive qualities, which makes the relevant further search of new developments in its perfection.
Key words: fractures of long bones of the extremities, delayed consolidation of fractures, 
false joints, method of Ilizarov, the Ilizarov apparatus, extrafocal osteosynthesis.
Қол-аЯҚтЫҢ ҰЗЫН сҮйектерІ сЫНуларЫН еМДеуДе илиЗаровтЫҢ ӘДІсІН 
ЖетІлДІру тӘсІлДерІ
А.Г. ГУСЕЙНОВ  
түсініктеме.  
Автор ошақтан тыс остеосинтез операцияда, сондай - ақ, операциядан 
кейінгі емдеуде оңтайландыру құралдарын және тәсілдерін ұсынды. Олар 205 науқасты ем-
деуде сәтті қолданды: 92 пациентке остеосинтез операциясы кезінде және 103 пациентке 
операциядан кейінгі кезеңде. Біріншіде оң нәтиже 88 (95,6%), ал екіншісінде 98 (95,1%) па-
циенттерде  болды,  бұл  бақылау  топтағы  науқастардан  да  жоғары  екенін  көрсетті.  Соны-
мен,  Изизаровтың  әдісіне  өте  берілгеніне  қарамастан,  оның  барлық  өзіндік  оң  қасиеттері 
таусылмаған, сондықтан оны жетілдіру бойынша жаңа әзірлемелерді одан әрі іздеу орынды.
Негізгі сөздер: қол - аяқтың ұзын сүйектері, сынулардың баяу бітісуі, жалған буын, Или-
заров әдісі, Илизаров аппараты, ошақтан тыс остеосинтез.

ТРАВМАТОЛОГИЯ ЖӘНЕ ОРТОПЕДИЯ 3-4 (33-34)/2015
38          
УДК 615.468.21+616-001.17
ЭфЕКТИВНОСТЬ ПРИМЕНЕНИЯ бИОЛОГИЧЕСКОЙ ПОВЯЗКИ С ЖИВыМИ 
АЛЛОГЕННыМИ фИбРОбЛАСТАМИ ДЛЯ ЛЕЧЕНИЯ ОЖОГОВ И ДЛИТЕЛЬНО 
НЕЗАЖИВАЮЩИх РАН
Г.а. ДаНЛыБаева, Н.Д. БатпеНов, ж.т. аХМаДеева,
 
а.а. жыЛКИБаев, ж.К. РаМаЗаНов, e.а. БеЛаН,  с.с.
 
БаЛГаЗаРов 
Научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии, астана 
Национальный центр биотехнологий, астана 
ВВЕДЕНИЕ
Благодаря  прогрессу  в  области    био-
медицины  и  фармакологии  арсенал  лекар-
ственных  препаратов    для  местного  консер-
вативного  лечения  ожоговых  и  длительно 
незаживающих ран, неуклонно расширяется. 
Лечение ран и ожогов проводят в зависимо-
сти от фазы течения раневого процесса, при 
этом последовательно используются разноо-
бразные  лекарственные  средства  с  различ-
ным механизмом действия. 
перспективным 
подходом 
для 
улучшения  результатов  лечения  длительно 
незаживающих  ран  является  использование 
биотехнологических методов восстановления 
раневой  поверхности,  в  частности    приме-
нение  клеточной  технологии  с  использова-
нием    биосовместимых  материалов.  один 
из      биосовместимых,      биодеградируемых 
полисахаридов  –  хитозан.  его  особенности 
обусловлены  наличием  у  него  защитных,  
гидросорбционных, 
 
антикоагулянтных, 
антибактериальных  свойств  в  отношении 
ряда бактерий и грибов и  его способностью 
активизировать 
заживление 
раневой 
поверхности.
Целью  данного  исследования  было 
применение    биологической  повязки    с  
культивированными  клетками  кожи  для 
улучшения  результатов  лечения  глубоких 
ожогов и длительно незаживающих ран.
МАТЕРИАЛ И МЕТОДы 
объектами исследования стали больные 
с глубокими ожоговыми ранами и длительно 
незаживающими  ранами.  Больные  были 
разделены  на  2  группы.  основную  группу 
составили  18  больных,  которым  на  рану 
накладывали  хитозановую  подложку  с 
клетками  либо  хитозановую  подложку 
с 
антиоксидантом 
дигидрокверцетином 
(ДГК)  и  клетками.  Группу  сравнения 
составили  14  больных,  которым  применяли 
аллофибробласты в виде фиброспрея. 
в 
качестве 
матрикса 
применяли 
хитозан-пектиновую  подложку
  (патент  РФ 
№2458077) и хитозан-пектиновую подложку с 
добавлением ДГК. подложки готовили путем 
растворения 0,3% хитозана в 0,2 Н уксусной 
кислоте,  которую  затем  смешивали  с  0,3% 
раствором  пектина,  растворенного  в  дис-
тиллированной  воде.  Хитозановую  пленку 
формировали  в  чашке  петри  в  течение  20-
24  часов  при  температуре  20-25°с.  после 
высыхания,  на  поверхность  поверхности
 
ма
трикса  наносили  культивированные    и 
охарактеризованные 
ранее 
аллогенные 
фибробласты  (патент  РК  №25091)  и 
адгезировали
 центрифугированием при 200G 
(1500 об/мин) в течение 5-8 минут.
 
Больным  с  ожогами  IIIаБ-IV  степени 
во  время  операции  аутодермопластики  на 
гранулирующие  раны  наносили    культуру 
аллофибробластов  в  виде  взвеси  методом 
раскапывания с помощью стерильного шприца 
в концентрации 30-50 тыс. клеток на 1 кв.см 
и  производили  пересадку  расщепленных 
кожных аутолоскутов, перфорированных 1:4. 
Затем  поверх  сетчатых  аутотрансплантатов 
накладывали  хитозановую  подложку  с 
клетками (15 пациентам)  либо хитозановую 
подложку с ДГК и клетками (3 больным).
РЕЗуЛЬТАТы И Их ОбСуЖДЕНИЕ 
Наши  исследования  показали,  что 
применение  биологической  повязки    с 
аллофибробластами    обеспечивает  более 
высокий  уровень  эпителизации    ячеек 
перфорации  сетчатых  трансплантатов  (на  5 
день) и облегчает проведение перевязок, по 
сравнению  с контрольной группой, в которой 
срок  эпителизации    ячеек  перфорации 
сетчатых трансплантатов составил 7 дней. Это  
позволило улучшить результаты приживления 
Научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии, 
Национальный центр биотехнологий, Астана

ТРАВМАТОЛОГИЯ ЖӘНЕ ОРТОПЕДИЯ 3-4 (33-34)/2015
39 
аутодермотрансплантатов на гранулирующих 
ранах  и  восстановления  утраченных  кожных 
покровов, что привело к сокращению  сроков  
лечения  больного  в  стационаре  в  среднем 
на 2-3 дня за счет уменьшения длительности 
послеоперационного  периода  по  сравнению 
с 
больными, 
которым 
применяли 
аллофибробласты в виде фиброспрея.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ 
таким образом, полученные данные  сви-
детельствуют  об  эффективности  и  целесоо-
бразности применения биологической повяз-
ки из хитозана и культивируемых клеток кожи 
при лечении ожогов и длительно незаживаю-
щих ран.
УДК 616-018.4-003.9
ИСПОЛЬЗОВАНИЕ КСЕНОГЕНых МЕЗЕНхИМАЛЬНых СТВОЛОВых КЛЕТОК 
С ЦЕЛЬЮ АКТИВИЗАЦИИ РЕПАРАТИВНых ПРОЦЕССОВ КОСТНОЙ ТКАНИ В 
ЭКСПЕРИМЕНТЕ
в.с. ДеРКаЧев 
1
, с.а.
 
аЛеКсеев 
1
, с.М. КосМаЧева 
2
,
 Н.Н. ДаНИЛКовИЧ 
2
1
Белорусский государственный медицинский университет, 
2
Республиканский научно-практический центр трансфузиологии и  
медицинских биотехнологий, Минск
Цель исследования - изучить регенерацию костной ткани в эксперименте на животных 
с  применением  ксеногенных  стволовых  клеток.  в  эксперименте  на  25  кроликах  породы 
Шиншилла изучалась динамика репаративной регенерации в сроки 1, 2, 3 месяца. Кост-
ный  дефект  лучевой  кости  кролика    заполняли    биотрансплантатом,  который  включал  в 
себя МсК человека, лизаты тромбоцитов, фибриовый клей «Фибриностат». Для сравнения 
были  взяты  остеопластические  материалы  Коллапан  и  Кафам.  Лучший  результат  
(плотность кости, гистология) получен при использовании  материала Коллапан в составе 
биотрансплантата.
Ключевые слова: стромальные клетки, тканевая инженерия, костная ткань.
ВВЕДЕНИЕ
восстановление 
целостности 
кости  является  актуальной  проблемой 
современной  травматологии  и  ортопедии, 
а 
также 
фундаментальных 
медико-
биологических  дисциплин.  в  настоящее 
время  активно  ведется  поиск  новых 
клеточных  технологий,  которые  позволили 
бы оказывать стимулирующе воздействие на 
образование костной ткани как на периферии 
костного  дефекта,  так  и  внутри  имплантата 
[8,5].  вызывает  определенный  интерес  
совместное использование стволовых клеток 
и  биосовместимых  носителей,  в  качестве 
которых  находят  применение  материалы 
на  основе  фосфатов  кальция,  а  также 
материалы  на  основе  гидроксиапатита  (Га) 
[2,3].  Материалы на основе Га исследованы 
на  биосовместимость  при  подкожной 
имплантации  животным  и  эффективность 
при  замещении  костных  дефектов  у 
животных.  Испытания  in  vivo  материалов 
на  основе  Га  показали,  что  эти  материалы 
не  вызывали  реакции  отторжения,  активно 
участвовали  в  образовании  новой  костной 
ткани  при  замещении  дефектов.  Для 
стимулирующего  воздействия  на  остеогенез 
в последнее время предлагают использовать 
искусственные  материалы  в  совокупности 
с  мезенхимальными  стволовыми  клетками 
(МсК) потому, что эти клетки довольно легко 
можно  выделить  из  небольших  аспиратов 
КМ  пациента  и  трансплантировать  ему  же 
без  риска  отторжения  и  необходимости 
иммуносупрессии  [4].  в  настоящее  время  в 
клинической  практике  с  целью  стимуляции 
остеогенеза  находит  применение  метод 
использования  обогащенной  тромбоцитами 
аутоплазмы  или  лизатов  тромбоцитов  [6,7].   

ТРАВМАТОЛОГИЯ ЖӘНЕ ОРТОПЕДИЯ 3-4 (33-34)/2015
40          
в  тромбоцитах  содержатся  многочисленные 
факторы роста и цитокины, способствующие 
свертыванию  крови,  регенерации  ткани  и 
процессам минерализации кости. 
Цель  исследования  -  в  эксперименте 
на  кроликах  изучить  регенерацию  кости 
при 
трансплантации 
культивированных 
стромальных клеток костного мозга в дефект 
лучевой кости кролика.
МАТЕРИАЛ И МЕТОДы 
  в  работе  использовали  ксеногенные 
МсК,  которые  получали  из  костного  мозга 
человека  и  культивировали  in  vitro  [1]. 
остеогенную 
дифференцировку 
МсК 
осуществляли  после  двух  пассажей  путем 
добавления  10  мМ  β-глицерофосфата, 
50  мкг  аскорбиновой  кислоты  и  0,1  мкМ 
дексаметазона.  Клетки  культивировали  в 
течение 3-5 дней до трансплантации кроликам 
с краевым дефектом лучевой кости передних 
лап.  Релизаты  тромбоцитов  (Рт)  получали 
путем активации тромбином in vitro отмытых 
тромбоцитов человека.
Экспериментальное 
исследование 
выполнено  на  базе  НИЧ  БГМУ  в  полном 
соответствии  с  «европейской  конвенции  о 
защите  животных,  которые  используются 
для  экспериментальных  и  научных  целей» 
(страсбург,  1986).  в  эксперимент  взяты  
кролики  обоих  полов  породы  Шиншилла 
массой до 3,5 кг. под тиопенталовым наркозом 
у  кроликов  удаляли  шерсть  по  передней 
поверхности  предплечий  обеих  лапок.  с 
соблюдением  правил  ассептики  делали 
разрез  кожи,    создавали    краевой  дефект 
лучевой  кости  кролика  в  средней  трети 
(рисунок 1 а). Дефект закрывали предоженным 
трансплантатом  (рисунок  1  б),  содержащим 
Рт, 
остеогенно-дифференцированные 
МсК  (около  1  млн.  клеток).  в  качестве 
остеопластического 
материала-носителя 
использовали 
Коллапан 
(пр-во 
ооо 
«Интермедапатит»,  РФ)  и  Кафам  (пр-во 
ИоНХ  НаН  РБ).  сверху  биотрансплантат 
фиксировали  препаратом  фибринового  геля 
«Фибриностат» (пр-во РНпЦ трансфузиологии 
и  медицинских  биотехнологий,  РБ).  Мягкие 
ткани  укладывали  на  место,  кожу  зашивали 
рассасывающимися  швами  (рисунок  1  в). 
Для 
профилактики 
послеоперационных 
осложнений  кроликам  вводили  антибиотики 
внутривенно однократно.
                                    а                                       б                                      в
Рисунок 1 – Создание краевого дефекта лучевой кости кролика (а), имплантация материала 
(б), внешний вид раны после ушивания (в)
ежедневно выполняли осмотр животных, 
при  котором  наблюдали  за  изменением 
отека конечности, наличием или отсутствием 
признаков  воспаления,  отделяемого  из 
раны,  а  также  оценивали  общее  состояние 
животного.
Контролем  служил  дефект  кости, 
заполненный остеопластическим материалом 
без  МсК  и  Рт,  и  дефект,  зживающий  под 
кровяны сгустком после выведения животных 
из  эксперимента  (передозировка  типентала) 
соответственно 
срокам 
наблюдения 
фрагменты  передних  лапок  вместе  с 
прилижащими  мышцами  фиксировали  в 
10%  растворе  нейтрального  формалина, 
проводили  рентгеновское  компьютерное 
томографическое (РКт), с оценкой плотности 
материала  в  зоне  дефекта  (ед.  HU)    и 
гистологическое  (окраска  гематоксилин-
эозином)  исследования.
после  томографического  исследования 
осуществляли 
препаровку 
фрагментов 
лапок  кролика  (удаляли  мышечную  часть)  и 
осматривали зону дефекта.
выделенные 
тканевые 
фраменты 
декальцинировали  и  заливали  в  парафин. 
Рисунок 1 – Создание краевого дефекта лучевой кости кролика (а),  
имплантация материала (б), внешний вид раны после ушивания (в)
б
б
в

ТРАВМАТОЛОГИЯ ЖӘНЕ ОРТОПЕДИЯ 3-4 (33-34)/2015
41 
проходящие  через  дефекты  и  костные 
края  срезы  окрашивали  гематоксилином  и 
эозином.
РЕЗуЛЬТАТы И Их ОбСуЖДЕНИЕ
проведенный  через  1  месяц  анализ 
данных  Кт  остеогенного  восстановления  в 
месте  костного  дефекта  выявил  снижение 
плотности кости с Коллапаном и  повышение 
плотности 
кости 
при 
использовании 
материала Кафам по сравнению с контролем 
(р=0,0012 и р=0,0042 соответственно). 
Кт исследование  показало  увеличение 
плотности    костных  дефектов  с  материалом 
Кафам  в  составе  биотрансплантатов  по 
сравнению  с    контролями  через  2  мес. 
наблюдения  (p=0.08).  К  3-му  мес.  плотность  
данных 
биотрансплантатов 
снижалась 
и  не  отличалась  от  контроля.  плотность 
биотрансплантата, 
в 
состав 
которого 
входил Коллапан,  нарастала к 3-му месяцу 
наблюдений (p=0.0004) (рисунок 2). 
Рисунок 2 -  плотность биоматериала в области костного дефекта  (ед. HU): контроль – дефект 
кости, материал, материал + -  биоматериал в составе трансплантата 
 
 
                                        а                                             б                                             в
Рисунок 3 - Применение материала «Коллапан»+ МСК+РТ+Фибриностат:
а - сроки репаративногоостеогенеза 30 дней  после операции; б - сроки репаративного 
остеогенеза 60 дней после операции; в - сроки репаративногоостеогенеза 90 дней после 
операции
Морфологический 
анализ 
показал, 
что  при  применении  Коллапана  в  составе 
биотрансплантата 
наблюдается 
полная 
регенерация  костного  дефекта  (первичное 
заживление),  активация  остеогенеза  с 
избыточным  формированием  пластинчатой 
костной ткани в зоне дефекта ко 2-му месяцу 
наблюдений (рисунок 3).
при  использовании  «Кафам»  отмечено  
сегментарное  замещение  костного  дефекта 
вновь  сформированной  незрелой  и  зрелой 
пластинчатой  костной  тканью  (первичное 
заживлние, но с сохранением костных кист, со-
держащих  материал)  (рисунок  4).  В  срок  к 
90  дню  полость  дефекта  практически  заполне-
на  сформированной  остеогенной  тканью,  но 
сохраняются  единичные  участки  незрелого 
гиалинового хряща. 
Морфологический анализ показал, что при 
применении  Коллапана  в  составе  биотран-
сплантата  наблюдается  полная  регенерация 
костного  дефекта  (первичное  заживление), 
активация остеогенеза с избыточным форми-
рованием пластинчатой костной ткани в зоне 
дефекта ко 2-му месяцу наблюдений (рисунок 
3).  При  использовании  «Кафам»  отмечено  
сегментарное  замещение  костного  дефекта 
вновь  сформированной  незрелой  и  зрелой 
пластинчатой  костной  тканью  (первичное  за-
живлние, но с сохранением костных кист, со-
держащих материал) (рисунок 4). В срок к 90 
дню полость дефекта практически заполнена 
сформированной  остеогенной  тканью,  но  со-
храняются единичные участки незрелого гиа-
линового хряща.
Рисунок 3 - Применение материала «Коллапан»+ МСК+РТ+Фибриностат:
а - сроки репаративногоостеогенеза 30 дней  после операции;  
б - сроки репаративного остеогенеза 60 дней после операции; 
в - сроки репаративногоостеогенеза 90 дней после операции

ТРАВМАТОЛОГИЯ ЖӘНЕ ОРТОПЕДИЯ 3-4 (33-34)/2015
42          
 
 
                         а                                        б                                                в
Рисунок 4 - Результаты применения материала «КаФаМ»+ МсК+Рт+Фибриностат:
а - сроки репаративного остеогенеза   30 дней после операции; б - сроки 
репаративного остеогенеза  60 дней после операции; в - сроки репаративного 
остеогенеза  90 дней после операции
в  контрольной    серии,  где  дефект 
заживал  под  кровяным  сгустком  в  срок    до 
30  дней  дефект  остался  незаполненным. 
Наблюдалось  формирование  небольшого 
количества  ретикулофиброзной  костной 
ткани. в той же группе наблюдения признаки 
репаративной регенерации, осуществляемой 
путем  десмогенеза  и  без    остеогенеза 
начинают  отмечаться  только  в  сроки  60-90 
дней  наблюления,  что  в  целом  затягивает 
заживление  костной  раны  и  приводит  к 
формированию  в  ней  неполноценного 
регенерата.
Более 
медленный 
темп 
посттравматического 
десмогенеза 
и 
остеогенеза  с  использованием    КФК 
«Кафам»  возможно  объясняется  наличием 
в  дефекте    более  жесткого    керамического 
материала  (хотя  и  пористого),  который 
не 
создает 
благоприятных 
условий 
для  гистогенеза,  чем  это  происходит 
при 
применении 
биотрансплантата 
Коллапан+МсК+Рт+Фибриностат, 
чья 
поверхность  и  коллаген  обладают    более 
высокими  адгезивными  свойствами  для 
мигрирующих и пролиферирующих клеточных 
элементов, что и способствует росту тканевого 
регенерата. 

жүктеу/скачать 11,95 Mb.

Достарыңызбен бөлісу: