149
оценивать наличие незрелых гранулоцитов, анализировать ретикулоциты и
их субпопуляции, проводить оценку стволовых гемопоэтических клеток и
субпопуляций лимфоцитов. Многочисленные
функции гематологических
анализаторов стали возможны, благодаря развитию новых технологий. В
каждом случае в
этой группе анализаторов применяется не менее 3 разных
технологий, комбинированный результат которых дает возможность
дифференцировать лейкоциты.
Технология VCS включает одновременный компьютерный анализ
клеток по объему, электропроводности и дисперсии лазерного света.
Полученные по трем каналам данные с помощью электроники
комбинируются и анализируются, в
результате происходит распределение
клеток по дифференцировочным кластерам и, таким образом, лейкоциты
разделяются на пять основных популяций: лимфоциты, моноциты,
нейтрофилы, эозинофилы и базофилы (рис. 2.18). Результатом отображения
объемного графика на плоскости является лейкоцитарная скатерограмма, на
которой каждый тип клеток имеет свою зону расположения.
Рис.2.18. VCS-куб, определяющий лейкоцитарную скатерограмму. Клеточные
кластеры размещаются на цветной объемной диаграмме, где по оси Х – нормированная
рассеивающая способность, по оси Y – объем клеток, по оси Z – структурная
электропроводимость
150
Технология MAPSS – Multi Angle Polarized Scatter Separation –
мультипараметрическая система лазерного светорассеивания – регистрация
интенсивности рассеивания клетками поляризованного лазерного луча под
разными углами. Этот метод заключается в компьютерном анализе
дисперсии лазерного счета клетками крови. Рассеивание клеткой
поляризованного лазерного луча под разными углами дает сведения о таких
ее свойствах, как:
размер клеток – для чего оценивается прохождение поляризованного
лазерного луча под малым углом рассеивания,
структура и степень сложности клеток – оценивается по анализу
рассеивания поляризованных лазерных лучей, направленных под углом до
7
о
,
ядерно-цитоплазматическое соотношение - оценивается по анализу
рассеивания поляризованных лазерных лучей, направленных под углом до
10
о
,
оценка формы клеточного ядра – осуществляется благодаря анализу
светорассеивания поляризованных лазерных лучей под углом 90
о
,
для оценки клеточной зернистости и дифференцировки эозинофилов
используется оценка светорассеивания деполяризованного луча под углом в
90
о
.
Принцип жидкостной цитохимии (измерение активности пероксидазы
в лейкоцитах), в сочетании с
методами кондуктометрии, гидродинамического
фокусирования,
оптической
абсорбции,
позволяет
проводить
дифференцировку лейкоцитов. Использование пероксидазной реакции
основано на различной ее активности в лейкоцитах. Так, эозинофилы и
нейтрофилы имеют интенсивную пероксидазную активность, моноциты –
слабую, в лимфоцитах она не выявляется.
Проточная
цитохимическая
техника
включает
регистрацию
рассеянного и поглощенного светового луча. В лейкоцитарном канале после
лизиса эритроцитов и стабилизации лейкоцитов происходит цитохимическая
151
реакция, далее лейкоциты дифференцируются по двум признакам: размеру
клеток, определяемому
методом рассеивания лазерного луча, и
пероксидазной активности – по поглощению клеткой светового потока.
Дифференцировка базофилов от других гранулоцитов проводится в базо-
канале. Цитоплазма всех лейкоцитов за исключением базофилов
подвергается лизису после обработки пробы специфическим лизатом.
Проточная цитофлюориметрия с использованием флуоресцентного
красителя полиметина, который связывается с ДНК и РНК клеток, позволяет
использовать его для дифференцировки лейкоцитов и для подсчета
ретикулоцитов.
Анализ клеток происходит в проточной кювете при
пересечении луча лазера. После контакта лазерного луча с окрашенной
клеткой происходит рассеивание последнего под большим и малым углами и
возбуждение флуоресцентного красителя.
Гематологические
анализаторы с полным дифференцированным
подсчетом лейкоцитов позволяют с высокой точностью дифференцировать
лейкоциты, провести скрининг нормы и патологии, динамический контроль
за лейкоцитарной формулой и резко сократить ручной подсчет
лейкоцитарной формулы.
Достарыңызбен бөлісу: