Эффективность применения моюще-дезинфицирующих средств на предприятии по переработке молока

ВЕТЕРИНАРИЯ 
 
УДК 619:614 484 
 
ЭФФЕКТИВНОСТЬ ПРИМЕНЕНИЯ МОЮЩЕ-ДЕЗИНФИЦИРУЮЩИХ СРЕДСТВ НА ПРЕДПРИЯТИИ 
ПО ПЕРЕРАБОТКЕ МОЛОКА 
 
Ибрагимов  П.Ш.  -  д.вет.н.,  профессор  кафедры  ветеринарной  санитарии  Костанайского 
государственного университета им. А. Байтурсынова.  
Сбанов  Н.Б.  - к.вет.н.,  ст.преподаватель  кафедры  ветеринарной  санитарии  Костанайского 
государственного университета им. А. Байтурсынова.  
 Дельдибекова  Д.А.  -  магистрант  Костанайского  государственного  университета  им. 
А.Байтурсынова.  
 
Түйін 
Бұл  мақалада  сүт  өндіретін  кәсіпорындағы  дезинфекция  сапасының  бактериологиялық 
бақылау  жаңа  және  дәстүрлі  жуу-дезинфекциялық  заттар  бойынша  туралы  мәліметтер 
көрсетілген. 
Аннотация 
В  данной  статье  отражены  результаты  бактериологического  контроля  качества 
дезинфекции на основе нового и традиционного моюще-дезинфицирующих средств. 
Summary 
This article contains the results of bacteriological control of disinfection quality on the basis of new and 
traditional washing-disinfection means at milk factories. 
 
Современные молокоперерабатывающие предприятия все больше внимания уделяют качеству 
выпускаемых продуктов, увеличению срока их реализации и, соответственно, санитарии и гигиене на 
производстве. [1] 
Одним  из  основных  источников  микробиологического  обсеменения  молочного  продукта 
является  технологическое  оборудование.  По  окончании  процесса  производства  продукции  на 
внешних  поверхностях  технологического  оборудования  после  недостаточной  очистки  остаются 
различные  микроорганизмы  и  частицы  продукта.  Молочное  сырье  является  прекрасной  средой  для 
жизни и размножения микроорганизмов, в том числе и патогенных. Впоследствии, попадая в продукт, 
они ухудшают его вкусовые качества, а также приводят к порче. [2] 
Проблема  становится  еще  более  острой  после  коррозии  поверхностей  оборудования  – 
различные щели и неровности служат укрытием для микроорганизмов. [3] 
Поверхности, соприкасающиеся с продуктом в процессе его производства, по степени чистоты 
должны  соответствовать  требованиям  санитарно-производственных  норм.  Для  правильной 
разработки санитарно-производственных норм необходимо рассматривать мойку и дезинфекцию как 
две отдельные стадии. Убрать грязь и остатки продуктов необходимо до начала дезинфекции – ведь 
только полностью чистую поверхность можно дезинфицировать. [4, 5] 
 Даже  незначительное  количество  молока,  оставшееся  после  неэффективной  санитарной 
обработки  оборудования,  служит  благоприятной  питательной  средой  для  развития  микрофлоры. 
Таким  образом,  санитарная  обработка  технологического  оборудования  и  молочной  посуды  имеет 
решающее значение при получении высококачественного молока. [4] 
С  целью  проведения  бактериологического  контроля  качества  дезинфекции  молочного 
оборудования 
нами 
были 
сравнительно 
изучены 
эффективность 
применения 
моюще-
дезинфицирующих средств, используемых на предприятии: 1,5 % раствор Alca CIP как новое моюще-
дезинфицирующее  средство,  и  2,5  %  раствор  каустической  соды,  как  традиционное  средство.  Оба 
средства применяются в Филиале «Космис» ТОО “RG Brands Kazakhstan”. 
Процедура мойки состояла из следующих этапов: 
- предварительное ополаскивание водой до полного удаления запаха, вкуса и цвета молочных 
белков и жира; 
- мойка и дезинфекция 2,5 % раствором каустической соды (1,5 % раствор Alca CIP); 
-  ополаскивание  водой,  после  чего  проводился  контроль  индикатором  на  присутствие  моюще-
дезинфицирующего средства; 
- ополаскивание водой до полного охлаждения оборудования. 
Материалами  для  исследования  служили  смывы  с  поверхностей  ограждающих  конструкций, 
технологического  оборудования  и  других  объектов  молокоперерабатывающего  предприятия. 
Бактериологический  контроль  объектов  и  материалов  проводили  по  показателям  общей 
бактериальной  обсемененности  до  и  после  проведения  дезинфекции  в  соответствии  с  методиками, 
общепринятыми в санитарной практике. 

Таблица 1 – Эффективность использования раствора Alca CIP в 1,5 %-ной концентрации и каустической соды в 2, 5%-ной концентрации 
 
 
 
Объекты исследований 
 Количество микроорганизмов, КОЕ/см
2
  
Alca CIP 
Каустическая сода 
До дезинф. 
(М±m) 
После дезин. 
(М±m) 
% сниж. 
До дезинф. 
(М±m) 
После дезин. 
(М±m) 
% сниж 
 
 
Молоковоз 
Наружная поверхность 
цистерны 
102,6±1,3 
6,4±0,3 
93,1 
103,8±1,9 
29,47±0,6 
71,6 
Внутренняя поверхность 
цистерны 
93,8±1,6 
8,81±0,8 
90,6 
93,3±1,8 
43,5±1,3 
53,4 
Молокопровод  
90,8±1,6 
8,63±0,8 
90,5 
91,4±1,8 
41,7±1,3 
54,4 
Оборудование приемного отделения 
92,8±1,6 
9,83±0,8 
89,4 
94,3±1,8 
44,5±1,3 
52,8 
Молокопровод до пастеризационной установки  
10,9±1,7 
1,27±0,6 
88,3 
11,8±1,4 
4,8±1,1 
59,2 
 
Пастеризационная установка 
Наружная поверхность 
6,2±0,5 
0,77±0,5 
87,6 
6,4±0,5 
2,9±0,5 
54,7 
Внутренняя поверхность 
1,2±0,1 
0,0±0,0 
100 
1,3±0,1 
0,0±0,0 
100 
Оборудование розлива молока в тетрапакеты  
1,3±0,1 
0,0±0,0 
100 
1,2±0,1 
0,0±0,0 
100 
Стена, покрытая кафельной 
плиткой на высоте ниже 2м от 
пола 
Приемное отделение 
107,0±0,9 
9,4±0,2 
91,2 
106,6±1,3 
32,19±0,4 
69,8 
 Отделение пастеризации 
7,9±0,5 
0,26±0,5 
96,7 
7,8±0,5 
2,8±0,5 
64,1 
Отделение розлива молока 
2,3±0,5 
0,06±0,5 
97,4 
2,2±0,5 
0,8±0,5 
63,6 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 

Исследования  по  определению  общего  бактериального  обсеменения  смывов  с  рабочих 
поверхностей  оборудования  проводили  чашечным  методом  путем  посева  смывной  жидкости  в 
мясопептонный агар с последующим подсчетом числа выросших колоний микроорганизмов. 
Результаты исследований приведены в таблице 1. 
В  результате  исследования  наибольшее  количество  микроорганизмов  до  дезинфекции 
обнаружено  в  наружной  цистерне  молоковоза  и  на  стене,  покрытой  кафельной  плиткой  на  высоте 
ниже  2м  от  пола  в  приемном  отделении,  что  составило  102,6±1,3  КОЕ/см
2 
и  107,0±0,9  КОЕ/см
2 
соответственно. Наименьшее количество микроорганизмов до дезинфекции обнаружено на наружной 
поверхности  пастеризационной  установки  6,2±0,5  КОЕ  /см
2
;  стене,  покрытой  кафельной  плиткой  на 
высоте  ниже  2м  от  пола  в  отделениях  пастеризации  и  розлива  молока  -  7,9±0,5  КОЕ  /см
2
  и  2,3±0,5 
КОЕ/см
2
,  а  также  на  внутренней  поверхности  пастеризационной  установки  1,2±0,1  КОЕ  /см
2
,  и  в 
оборудовании для розлива молока в тетрапакеты 1,3±0,1 КОЕ /см
2
.  
После  дезинфекции  1,5%-ным  раствором  «Alca  CIP»  микробная  обсемененность  снизилась:  в 
наружной  цистерне  молоковоза  на  93,1%,  на  стене  в  приемном  отделении  -  на  91,2%,  на  наружной 
поверхности  пастеризационной  установки  -  87,6%,  на  стене  в  отделениях  пастеризации  и  розлива 
молока - 96,7% и 97,4% соответственно. В то время как при такой же микробной обсемененности до 
дезинфекции обработка оборудования 2,5%-ным раствором каустической соды показала уменьшение 
количества  микроорганизмов:  в  наружной  цистерне  молоковоза  на  71,6%,  стене  в  приемном 
отделении  -  на  69,8%,  на  наружной  поверхности  пастеризационной  установке  -  54,7%,  стене  в 
отделениях пастеризации и розлива молока - 64,1% и 63,6% соответственно. Обработка внутренней 
поверхности пастеризационной установки и оборудования розлива молока в тетрапакеты 2,5 %-ным 
раствором каустической соды и 1,5%-ным раствором «Alca CIP» показала 100% результат. 
Полученные  данные  позволили  заключить,  что  использование  каустической  соды  в  качестве 
санитарно-гигиенических  средств  является  малоэффективным.  Об  этом  свидетельствует  средний 
показатель  снижения  микробной  обсемененности  поверхностей  после  обработки  2,5  %-ным 
раствором  этого  препарата,  который  составляет  67,6%,  а  для  препарата  1,5%-ного  «Alca  CIP»  этот 
показатель составил более 93 %. 
Таким образом, на сегодняшний день современные предприятия по переработке молока отдают 
предпочтение 
новым 
моюще-дезинфицирующим 
средствам, 
так 
как 
они 
являются 
высокоэффективными для удаления загрязнений и обладают высокой бактерицидностью, что делает 
их  универсальными  на  всех  участках  производства,  улучшая  качество  продукта,  также  помогают 
предотвратить образование коррозии и продлевают срок службы оборудования.  
Литература: 
1 Барабанщиков Н.В. Санитарная обработка молочной посуды и оборудования // Молочное и мясное 
скотоводство. – 1993. - № 1. - С. 36-38.  
2 Буш А. Переработка молока – 2010, № 8  
3 Дудницкий И.А., Шуваева О.И. Оценка дезинфекционных средств // Сельское хозяйство за рубежом, 
Москва. – 1977. - С. 40-45.  
4 Канунникова Е. Переработка молока. – 2010, №10 
5 Карташова В.М. Получение молока высокого санитарного качества // Ветеринария. – 1985. - № 6. - 
С. 22. 
 
 
УДК 616:616:9:579.873.21:636.2 
 
АССОЦИРОВАННЫЕ БОЛЕЗНИ ЖИВОТНЫХ, ВЫЗЫВАЕМЫЕ ГЕЛЬМИНТАМИ, ПАРАЗИТАМИ, И 
ИХ ВЛИЯНИЕ НА ПРОЯЛЕНИЕ НЕСПЕЦИФИЧЕСКОЙ РЕАКТИВНОСТИ НА ТУБЕРКУЛИН У 
КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА  
 
Сапа  В.А.  –  к.вет.н.,  ст.преподаватель  кафедры  ветеринарной  медицины  Костанайского 
государственного университета им. А.Байтурсынова 
 
Түйін 
Ірі-қара малдың тәнсіз тітіркеніс көрінісін ассоциативті аурулар мен паразиттерді өткізуге 
жаңа  шешім  қолдануы  арқылы  аллергиялық,  токсикалық  және  иммуннодепресивтік  эндо-  және 
экзопаразиттердің 
әсерін 
құрту 
немесе 
әлсірету 
нәтижесіне 
жеткізеді 
содан 
кейін 
диагностикалық  (серологиялық  және  аллергиялық)  зерттеулер  және  қортынды  сатысында  – 
жануарларды вакциналау керек.  
Аннотация 
Новая  система  ветеринарно-профилактических  мероприятий  позволяет  последовательно 
вначале  исключить  или  уменьшить  аллергизирующее,  токсическое  и  иммунодепрессивное 
действие  эндо-  и  эктопаразитозов,  затем  провести  серологические  и  аллергические 

диагностические  исследования  на  инфекционные  болезни,  а  на  заключительном  этапе  – 
иммунопрофилактику в соответствии с эпизоотической ситуацией.  
Summary 
With  an  aim  of  decreasing  of  occuring  unspecific  reaction  towarls  cattle  tuberculine  because  of 
associative  desease  and  parasite  was  a  new  approach  of  holding  veterinary  preventive  measures  worked 
out.  This  helps  to  take  down  or  decrease  allergable,  toxic  and  immunedepressing  effect  of  endo-and-
exoparasite, and then to take diagnostic (allergic) searching and the necessary vaccination of animals. 
 
В  процессе  эволюции  в  тканях  и  органах  животных  приспособились  к  жизни  разнообразные 
организмы – бактерии, риккетсии, хламидии, вирусы, грибы, простейшие, гельминты, членистоногие. 
Общепризнанно также, что в тканях и органах одного животного одновременно могут паразитировать 
десятки  видов  гельминтов,  бактерий,  грибов,  простейших,  членистоногих,  создавая  сообщества  – 
паразитоценозы. Каждый сочлен паразитоценоза действует на организм хозяина патогенно, вызывая 
ассоциированные  болезни.  В  процессе  формирования  паразитоценоза  в  организме  хозяина  между 
сочленами 
возникают 
антагонистические 
или 
синергические 
взаимоотношения. 
При 
антагонистических  взаимоотношениях  развитие  одних  видов  паразитов  сдерживается,  они 
вытесняются из биологической ниши  или остаются в единичных экземплярах, тогда как другие виды 
интенсивно  развиваются  и  становятся  доминирующими.  При  синергических  взаимоотношениях  все 
сочлены  паразитоценоза  создают  друг  для  друга  оптимальные  условия  и  интенсивно  развиваются. 
Болезнь  при  этом  есть  результат  взаимодействия  сочленов  паразитоценоза  друг  с  другом,  с  одной 
стороны,  и  с  организмом  хозяина  –  с  другой.  В  зависимости  от  характера  этого  взаимодействия  и 
окружающей  среды,  которая  может  быть  благоприятной  для  организма  хозяина,  болезнь  может  не 
развиться  или  протекать  в  лёгкой  степени.  При  неблагоприятном  характере  взаимодействия  для 
организма  хозяина  болезнь  протекает  тяжело,  нередко  с  летальным  исходом.  Патогенное  действие 
на организм животного оказывают не только гельминты и их метаболиты, но и паразиты, создающие 
оптимальные  условия  для  интенсивного  развития  в  организме  животного  патогенных  и  условно 
патогенных  бактерий  и  грибов.  В  частности,  личинки  и  молодые  гельминты  в  процессе  миграции 
инокулируют  в  органы  и  ткани  животного  большое  число  бактерий,  которые  в  повреждённых 
гельминтами  тканях  интенсивно  размножаются,  а  их  продукты  жизнедеятельности  наряду  с 
метаболитами  гельминтов,  включая  гибель  и  распад  погибших  гельминтов,  вызывают  сильную 
интоксикацию  и  сенсибилизацию  макроорганизма,  создают  условия  для  интенсивного  развития 
других  сочленов  паразитоценоза,  а  именно  бактерий,  вирусов  и  грибов.  В  связи  с  изложенным, 
гельминтозы 
следует 
рассматривать 
как 
ассоциированные 
заболевания, 
вызываемые 
паразитированием  гельминтов  на  различных  стадиях  развития  бактерий,  вирусов  и  грибов.  Глубина 
нарушения  функций  органов  и  систем  макроорганизма,  механизм,  стадийность  и  характер 
клинического  проявления  заболевания,  методы  и  способы  диагностики  и  лечения  животных  зависят 
от состава членов паразитоценоза [1]. 
Другой  не  менее  важный  фактор  –  это  микроорганизмы,  вирусы  и  грибы,  попадающие  в 
организм  естественными  путями,  а  также  с  вакцинами,  изготовленными  на  основе  живых,  но 
ослабленных  возбудителей  многих  инфекций.  Вакцинные  штаммы  бактерий,  вирусов  и  грибов, 
используемых  для  иммунизации  и  защиты  от  многих  инфекций,  следует  рассматривать  ещё  и  как 
один  из  элементов  экологического  загрязнения  организма  животных,  а  отсюда  и  как  элемент 
дополнительного  ингибирования  их  иммунной  системы.  Массивная  годовая  антигенная  нагрузка  на 
организм животных нередко приводит к блокаде или ослаблению иммунного ответа [2,3]. 
 

 
Схема 1 - Обеспечение ветеринарного благополучия по инфекционным болезням крупного 
рогатого скота 
 
Изучая  причины  проявления  неспецифических  туберкулиновых  реакций  в  благополучных  по 
туберкулёзу крупного рогатого скота сельхозформированиях, установлено, что часть животных была 
инвазирована гельминтами и паразитами.  
Гельминто-копрологические 
исследования. Диагностика 
паразитозов, в т.ч. саркоптоидозов, 
подкожного овода и др. 
1 
При наличии эндо- и эктопаразитов 
проводят обработку животных 
наиболее эффективными 
экономическими препаратами  
2 
Через месяц после обработок 
осуществляют плановые 
клинические, лабораторные 
серологические исследования 
3 
Серологические исследования КРС 
на бруцеллёз, лейкоз, лептоспироз, 
листериоз, хламидиоз, 
гематологические исследования на 
лейкоз  
4 
Реагирующих на аллерген животных 
изолируют и устанавливают 
объективные причины проявления 
реакций в благополучных стадах  
7 
Не реагирующих животных 
подвергают иммунизации с 
интервалом в две недели в 
соответствии с эпизоотической 
обстановкой 
8 
Общий ветеринарный контроль за состоянием стада 
9 
Реагирующих изолируют, уточняют 
причины проявления реакции и 
поступают с ними в соответствии 
существующим правилам 
Не реагирующих животных 
исследуют аллергически на 
туберкулёз  
6 
5 

Нами  была  предложена  схема,  позволяющая  на  первом  этапе  снять  аллергизирующее, 
токсическое и иммунодепрессивное действие маршалагий и других круглых гельминтов из семейства 
трихостронгилиде  (остертагии,  остертагиеллы,  телодорсагии,  скрябинадия  др.)  и  паразитов 
(псороптоз,  сифункулятоз,  гиподерматоз,  и  др.),  на  втором  этапе  –  провести  серологические  и 
аллергические  диагностические  исследования,  а  на  заключительном,  третьем  –  необходимые 
вакцинации (схема). 
Приведенная 
схема 
последовательности 
проведения 
ветеринарно-профилактических 
исследований, в том числе и иммунопрофилактики, освобождает животных от эндо- и эктопаразитов 
и тем самым создаёт оптимальные условия для нормализации иммунного статуса животных. 
Нами было исследовано аллергически около 49.0 тыс. голов крупного рогатого скота, выделено 
300 голов. Для дифференциации неспецифических реакций на ППД-туберкулин для млекопитающих, 
прореагировавших  на  стандартную  дозу  аллергена  на  3-5мм  и  более,  112  животных  подвергли 
контрольно-диагностическому убою. Туши, внутренние органы и лимфоузлы тщательно осматривали, 
биоматериал  от  них  исследовали  лабораторными  методами  –  микроскопия,  выделение  чистой 
культуры  микобактерий  и  биопроба  на  кроликах  и  морских  свинках.  Кроме  того,  при  отрицательных 
результатах  патологоанатомических  исследований  оставшихся  реагирующих  животных  через  месяц 
переисследовали  стандартной  и  половинной  дозами  ППД-туберкулина  для  млекопитающих,  ППД- 
туберкулин для птиц, L-туберкулином для диагностики скрытых форм туберкулёза, а сыворотки крови 
- дополнительно исследовали методом ИФА и ПЦР [4]. 
Во  всех  случаях  туберкулёз  у  исследуемых  животных  исключён  комплексом  примененных 
методов  –  эпизоотологических,  клинических,  патологоанатомических,  лабораторных,  включая 
бактериологические и биопробу на кроликах и морских свинках, а также методами ИФА и ПЦР [5].  
Выявлены  разнообразные  факторы,  способные  влиять  на  проявление  неспецифических 
туберкулиновых  реакций.  При  патологоанатомическом  исследовании  112  убитых  с  диагностической 
целью  коров  и  тщательной  ветсанэкспертизе  туш  органов  и  лимфатических  узлов,  видимых, 
характерных  для  туберкулёза  изменений  не  зарегистрировано.  Из  них  у  18  (16,07%)  установлен 
эхинококкоз  в  лёгких  и  печени;  у  5-ти  (4,46%)  –  абсцессы  в печени;  у  5-ти  (4,46%)  –  травматический 
ретикулит  и  ретикулоперикардит;  у  4-х  (3,57%)  –  абсцессы  в  легких;  у  4-х  (3,57%)  –  актиномикоз  в 
подчелюстном пространстве; у 4-х (3,57%) – сильные поражения скота гиподерматозом; у 2-х (1,78%) 
–  установлены  обширные  кожные  поражения  саркоптоидозами  и  у  70  (62,52%)  –  видимые  причины 
проявления аллергических реакций не установлены [5,6,7]. 
Таким образом, результаты проведенных исследований позволяют заключить, что применение 
дифференциальных  мероприятий  в  благополучных  хозяйствах  при  проявлении  неспецифической 
реактивности  на  туберкулины  помогло  исключить  туберкулёз,  в  62,67%  случаев  предотвратить 
необоснованный  убой  продуктивных  животных  и  осуществлять  постоянный  и  надёжный  контроль  за 
благополучием стада [5,6,7]. 
Сложившаяся 
система 
ветеринарно-профилактических 
мероприятий 
внедрена 
в 
противоэпизоотические  мероприятия  Костанайской  области  и  вошла  составной  частью  в 
«Комплексную программу противоэпизоотических мероприятий при лейкозе, туберкулёзе, бруцеллёзе 
и  хламидиозе  крупного  рогатого  скота  в  племенных,  фермерских  и  личных  подсобных  хозяйствах 
граждан Костанайской области до 2015 года» [8].  
Данная  схема  позволяет  установить  надёжный  контроль  за  благополучием  стад  по 
инфекционным 
и 
инвазионным 
заболеваниям 
в 
оздоровленных 
сельхозформированиях, 
своевременно  поставить  диагноз  и  оперативно  применить  комплекс  вынужденных  мер  в  случае 
возникновения болезни. 
 
Литература: 
1  Петров  Ю.  Ф.,  Большакова  А.  Ю.  Ассоциированные  болезни  животных,  вызываемые 
паразитированием гельминтов, бактерий и грибов // Актуальные проблемы ветеринарной медицины в 
России. - Новосибирск, 1998. – С. 139-148 
2  Апалькин  В.А.,  Смирнов  П.Н.,  Волков  Ф.А.  Новая  научно-обоснованная  схема  ветеринарно-
профилактических мероприятий // Ветеринария Сибири, 1999. - №2. – С. 37-41. 
3  Смирнов  П.Н.,  Храмцов  В.В.,  Джупина  С.И.,  Донченко  А.С.,  Магер  С.Н.  Проблемы  адаптации 
сельскохозяйственных животных в Сибири. – Новосибирск, 1995 – 57 с. 
4  Сапа  В.А.  Экономическое  обоснование  к  совершенствованию  системы  иммунопрофилактики 
крупного рогатого скота // Вестник науки Казахского государственного агротехнического университета 
им. С. Сейфуллина. – Астана, 2009. – №3 – С. 96-101. 
5 Сапа В.А. Совершенствование системы ветеринарно-профилактических мероприятий и её влияние 
на  проявление  неспецифической  реактивности  на  туберкулин  у  крупного  рогатого  скота  // 
Автореферат дисс… кандидата ветеринарных наук. – Астана, 2010. - 29с. 
6  Сапа  В.А.,  Пионтковский  В.И.  Современные  методы  дифференциации  неспецифических 
туберкулиновых  реакций  у  крупного  рогатого  скота  //  Научно-практический  журнал  "Наука  и 

образование"  Западно-Казахстанского  аграрно-технического  университета  им.  Жангир-хана  –  Орал, 
2009. №3 (16) – С. 93-96. 
7  Сапа  В.А.,  Пионтковский  В.И.  Совершенствование  системы  ветеринарно-профилактических 
мероприятий  и  её  влияние  на  проявление  неспецифической  реактивности  на  туберкулин  у  крупного 
рогатого скота // Журнал 3-i (интеллект идея инновация) КГУ им. А. Бацйтурсынова, 2010. - №1 (5). – 
С. 3-5. 
8 Пионтковский В.И., Мустафин М.К., и др. Сапа В.А. Комплексная программа противоэпизоотических 
мероприятий  при  лейкозе,  туберкулёзе,  бруцеллёзе  и  хламидиозе  крупного  рогатого  скота  в 
племенных, фермерских и личных подсобных хозяйствах граждан Костанайской области до 2015 года 
// Методические рекомендации. – Костанай, 2009. - 80с.