Эффективность применения моюще-дезинфицирующих средств на предприятии по переработке молока



жүктеу 5.01 Kb.

бет1/22
Дата06.02.2017
өлшемі5.01 Kb.
  1   2   3   4   5   6   7   8   9   ...   22

ВЕТЕРИНАРИЯ 
 
УДК 619:614 484 
 
ЭФФЕКТИВНОСТЬ ПРИМЕНЕНИЯ МОЮЩЕ-ДЕЗИНФИЦИРУЮЩИХ СРЕДСТВ НА ПРЕДПРИЯТИИ 
ПО ПЕРЕРАБОТКЕ МОЛОКА 
 
Ибрагимов  П.Ш.  -  д.вет.н.,  профессор  кафедры  ветеринарной  санитарии  Костанайского 
государственного университета им. А. Байтурсынова.  
Сбанов  Н.Б.  - к.вет.н.,  ст.преподаватель  кафедры  ветеринарной  санитарии  Костанайского 
государственного университета им. А. Байтурсынова.  
 Дельдибекова  Д.А.  -  магистрант  Костанайского  государственного  университета  им. 
А.Байтурсынова.  
 
Түйін 
Бұл  мақалада  сүт  өндіретін  кәсіпорындағы  дезинфекция  сапасының  бактериологиялық 
бақылау  жаңа  және  дәстүрлі  жуу-дезинфекциялық  заттар  бойынша  туралы  мәліметтер 
көрсетілген. 
Аннотация 
В  данной  статье  отражены  результаты  бактериологического  контроля  качества 
дезинфекции на основе нового и традиционного моюще-дезинфицирующих средств. 
Summary 
This article contains the results of bacteriological control of disinfection quality on the basis of new and 
traditional washing-disinfection means at milk factories. 
 
Современные молокоперерабатывающие предприятия все больше внимания уделяют качеству 
выпускаемых продуктов, увеличению срока их реализации и, соответственно, санитарии и гигиене на 
производстве. [1] 
Одним  из  основных  источников  микробиологического  обсеменения  молочного  продукта 
является  технологическое  оборудование.  По  окончании  процесса  производства  продукции  на 
внешних  поверхностях  технологического  оборудования  после  недостаточной  очистки  остаются 
различные  микроорганизмы  и  частицы  продукта.  Молочное  сырье  является  прекрасной  средой  для 
жизни и размножения микроорганизмов, в том числе и патогенных. Впоследствии, попадая в продукт, 
они ухудшают его вкусовые качества, а также приводят к порче. [2] 
Проблема  становится  еще  более  острой  после  коррозии  поверхностей  оборудования  – 
различные щели и неровности служат укрытием для микроорганизмов. [3] 
Поверхности, соприкасающиеся с продуктом в процессе его производства, по степени чистоты 
должны  соответствовать  требованиям  санитарно-производственных  норм.  Для  правильной 
разработки санитарно-производственных норм необходимо рассматривать мойку и дезинфекцию как 
две отдельные стадии. Убрать грязь и остатки продуктов необходимо до начала дезинфекции – ведь 
только полностью чистую поверхность можно дезинфицировать. [4, 5] 
 Даже  незначительное  количество  молока,  оставшееся  после  неэффективной  санитарной 
обработки  оборудования,  служит  благоприятной  питательной  средой  для  развития  микрофлоры. 
Таким  образом,  санитарная  обработка  технологического  оборудования  и  молочной  посуды  имеет 
решающее значение при получении высококачественного молока. [4] 
С  целью  проведения  бактериологического  контроля  качества  дезинфекции  молочного 
оборудования 
нами 
были 
сравнительно 
изучены 
эффективность 
применения 
моюще-
дезинфицирующих средств, используемых на предприятии: 1,5 % раствор Alca CIP как новое моюще-
дезинфицирующее  средство,  и  2,5  %  раствор  каустической  соды,  как  традиционное  средство.  Оба 
средства применяются в Филиале «Космис» ТОО “RG Brands Kazakhstan”. 
Процедура мойки состояла из следующих этапов: 
- предварительное ополаскивание водой до полного удаления запаха, вкуса и цвета молочных 
белков и жира; 
- мойка и дезинфекция 2,5 % раствором каустической соды (1,5 % раствор Alca CIP); 
-  ополаскивание  водой,  после  чего  проводился  контроль  индикатором  на  присутствие  моюще-
дезинфицирующего средства; 
- ополаскивание водой до полного охлаждения оборудования. 
Материалами  для  исследования  служили  смывы  с  поверхностей  ограждающих  конструкций, 
технологического  оборудования  и  других  объектов  молокоперерабатывающего  предприятия. 
Бактериологический  контроль  объектов  и  материалов  проводили  по  показателям  общей 
бактериальной  обсемененности  до  и  после  проведения  дезинфекции  в  соответствии  с  методиками, 
общепринятыми в санитарной практике. 

Таблица 1 – Эффективность использования раствора Alca CIP в 1,5 %-ной концентрации и каустической соды в 2, 5%-ной концентрации 
 
 
 
Объекты исследований 
 Количество микроорганизмов, КОЕ/см
2
  
Alca CIP 
Каустическая сода 
До дезинф. 
(М±m) 
После дезин. 
(М±m) 
% сниж. 
До дезинф. 
(М±m) 
После дезин. 
(М±m) 
% сниж 
 
 
Молоковоз 
Наружная поверхность 
цистерны 
102,6±1,3 
6,4±0,3 
93,1 
103,8±1,9 
29,47±0,6 
71,6 
Внутренняя поверхность 
цистерны 
93,8±1,6 
8,81±0,8 
90,6 
93,3±1,8 
43,5±1,3 
53,4 
Молокопровод  
90,8±1,6 
8,63±0,8 
90,5 
91,4±1,8 
41,7±1,3 
54,4 
Оборудование приемного отделения 
92,8±1,6 
9,83±0,8 
89,4 
94,3±1,8 
44,5±1,3 
52,8 
Молокопровод до пастеризационной установки  
10,9±1,7 
1,27±0,6 
88,3 
11,8±1,4 
4,8±1,1 
59,2 
 
Пастеризационная установка 
Наружная поверхность 
6,2±0,5 
0,77±0,5 
87,6 
6,4±0,5 
2,9±0,5 
54,7 
Внутренняя поверхность 
1,2±0,1 
0,0±0,0 
100 
1,3±0,1 
0,0±0,0 
100 
Оборудование розлива молока в тетрапакеты  
1,3±0,1 
0,0±0,0 
100 
1,2±0,1 
0,0±0,0 
100 
Стена, покрытая кафельной 
плиткой на высоте ниже 2м от 
пола 
Приемное отделение 
107,0±0,9 
9,4±0,2 
91,2 
106,6±1,3 
32,19±0,4 
69,8 
 Отделение пастеризации 
7,9±0,5 
0,26±0,5 
96,7 
7,8±0,5 
2,8±0,5 
64,1 
Отделение розлива молока 
2,3±0,5 
0,06±0,5 
97,4 
2,2±0,5 
0,8±0,5 
63,6 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 

Исследования  по  определению  общего  бактериального  обсеменения  смывов  с  рабочих 
поверхностей  оборудования  проводили  чашечным  методом  путем  посева  смывной  жидкости  в 
мясопептонный агар с последующим подсчетом числа выросших колоний микроорганизмов. 
Результаты исследований приведены в таблице 1. 
В  результате  исследования  наибольшее  количество  микроорганизмов  до  дезинфекции 
обнаружено  в  наружной  цистерне  молоковоза  и  на  стене,  покрытой  кафельной  плиткой  на  высоте 
ниже  2м  от  пола  в  приемном  отделении,  что  составило  102,6±1,3  КОЕ/см

и  107,0±0,9  КОЕ/см

соответственно. Наименьшее количество микроорганизмов до дезинфекции обнаружено на наружной 
поверхности  пастеризационной  установки  6,2±0,5  КОЕ  /см
2
;  стене,  покрытой  кафельной  плиткой  на 
высоте  ниже  2м  от  пола  в  отделениях  пастеризации  и  розлива  молока  -  7,9±0,5  КОЕ  /см
2
  и  2,3±0,5 
КОЕ/см
2
,  а  также  на  внутренней  поверхности  пастеризационной  установки  1,2±0,1  КОЕ  /см
2
,  и  в 
оборудовании для розлива молока в тетрапакеты 1,3±0,1 КОЕ /см
2
.  
После  дезинфекции  1,5%-ным  раствором  «Alca  CIP»  микробная  обсемененность  снизилась:  в 
наружной  цистерне  молоковоза  на  93,1%,  на  стене  в  приемном  отделении  -  на  91,2%,  на  наружной 
поверхности  пастеризационной  установки  -  87,6%,  на  стене  в  отделениях  пастеризации  и  розлива 
молока - 96,7% и 97,4% соответственно. В то время как при такой же микробной обсемененности до 
дезинфекции обработка оборудования 2,5%-ным раствором каустической соды показала уменьшение 
количества  микроорганизмов:  в  наружной  цистерне  молоковоза  на  71,6%,  стене  в  приемном 
отделении  -  на  69,8%,  на  наружной  поверхности  пастеризационной  установке  -  54,7%,  стене  в 
отделениях пастеризации и розлива молока - 64,1% и 63,6% соответственно. Обработка внутренней 
поверхности пастеризационной установки и оборудования розлива молока в тетрапакеты 2,5 %-ным 
раствором каустической соды и 1,5%-ным раствором «Alca CIP» показала 100% результат. 
Полученные  данные  позволили  заключить,  что  использование  каустической  соды  в  качестве 
санитарно-гигиенических  средств  является  малоэффективным.  Об  этом  свидетельствует  средний 
показатель  снижения  микробной  обсемененности  поверхностей  после  обработки  2,5  %-ным 
раствором  этого  препарата,  который  составляет  67,6%,  а  для  препарата  1,5%-ного  «Alca  CIP»  этот 
показатель составил более 93 %. 
Таким образом, на сегодняшний день современные предприятия по переработке молока отдают 
предпочтение 
новым 
моюще-дезинфицирующим 
средствам, 
так 
как 
они 
являются 
высокоэффективными для удаления загрязнений и обладают высокой бактерицидностью, что делает 
их  универсальными  на  всех  участках  производства,  улучшая  качество  продукта,  также  помогают 
предотвратить образование коррозии и продлевают срок службы оборудования.  
Литература: 
1 Барабанщиков Н.В. Санитарная обработка молочной посуды и оборудования // Молочное и мясное 
скотоводство. – 1993. - № 1. - С. 36-38.  
2 Буш А. Переработка молока – 2010, № 8  
3 Дудницкий И.А., Шуваева О.И. Оценка дезинфекционных средств // Сельское хозяйство за рубежом, 
Москва. – 1977. - С. 40-45.  
4 Канунникова Е. Переработка молока. – 2010, №10 
5 Карташова В.М. Получение молока высокого санитарного качества // Ветеринария. – 1985. - № 6. - 
С. 22. 
 
 
УДК 616:616:9:579.873.21:636.2 
 
АССОЦИРОВАННЫЕ БОЛЕЗНИ ЖИВОТНЫХ, ВЫЗЫВАЕМЫЕ ГЕЛЬМИНТАМИ, ПАРАЗИТАМИ, И 
ИХ ВЛИЯНИЕ НА ПРОЯЛЕНИЕ НЕСПЕЦИФИЧЕСКОЙ РЕАКТИВНОСТИ НА ТУБЕРКУЛИН У 
КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА  
 
Сапа  В.А.  –  к.вет.н.,  ст.преподаватель  кафедры  ветеринарной  медицины  Костанайского 
государственного университета им. А.Байтурсынова 
 
Түйін 
Ірі-қара малдың тәнсіз тітіркеніс көрінісін ассоциативті аурулар мен паразиттерді өткізуге 
жаңа  шешім  қолдануы  арқылы  аллергиялық,  токсикалық  және  иммуннодепресивтік  эндо-  және 
экзопаразиттердің 
әсерін 
құрту 
немесе 
әлсірету 
нәтижесіне 
жеткізеді 
содан 
кейін 
диагностикалық  (серологиялық  және  аллергиялық)  зерттеулер  және  қортынды  сатысында  – 
жануарларды вакциналау керек.  
Аннотация 
Новая  система  ветеринарно-профилактических  мероприятий  позволяет  последовательно 
вначале  исключить  или  уменьшить  аллергизирующее,  токсическое  и  иммунодепрессивное 
действие  эндо-  и  эктопаразитозов,  затем  провести  серологические  и  аллергические 

диагностические  исследования  на  инфекционные  болезни,  а  на  заключительном  этапе  – 
иммунопрофилактику в соответствии с эпизоотической ситуацией.  
Summary 
With  an  aim  of  decreasing  of  occuring  unspecific  reaction  towarls  cattle  tuberculine  because  of 
associative  desease  and  parasite  was  a  new  approach  of  holding  veterinary  preventive  measures  worked 
out.  This  helps  to  take  down  or  decrease  allergable,  toxic  and  immunedepressing  effect  of  endo-and-
exoparasite, and then to take diagnostic (allergic) searching and the necessary vaccination of animals. 
 
В  процессе  эволюции  в  тканях  и  органах  животных  приспособились  к  жизни  разнообразные 
организмы – бактерии, риккетсии, хламидии, вирусы, грибы, простейшие, гельминты, членистоногие. 
Общепризнанно также, что в тканях и органах одного животного одновременно могут паразитировать 
десятки  видов  гельминтов,  бактерий,  грибов,  простейших,  членистоногих,  создавая  сообщества  – 
паразитоценозы. Каждый сочлен паразитоценоза действует на организм хозяина патогенно, вызывая 
ассоциированные  болезни.  В  процессе  формирования  паразитоценоза  в  организме  хозяина  между 
сочленами 
возникают 
антагонистические 
или 
синергические 
взаимоотношения. 
При 
антагонистических  взаимоотношениях  развитие  одних  видов  паразитов  сдерживается,  они 
вытесняются из биологической ниши  или остаются в единичных экземплярах, тогда как другие виды 
интенсивно  развиваются  и  становятся  доминирующими.  При  синергических  взаимоотношениях  все 
сочлены  паразитоценоза  создают  друг  для  друга  оптимальные  условия  и  интенсивно  развиваются. 
Болезнь  при  этом  есть  результат  взаимодействия  сочленов  паразитоценоза  друг  с  другом,  с  одной 
стороны,  и  с  организмом  хозяина  –  с  другой.  В  зависимости  от  характера  этого  взаимодействия  и 
окружающей  среды,  которая  может  быть  благоприятной  для  организма  хозяина,  болезнь  может  не 
развиться  или  протекать  в  лёгкой  степени.  При  неблагоприятном  характере  взаимодействия  для 
организма  хозяина  болезнь  протекает  тяжело,  нередко  с  летальным  исходом.  Патогенное  действие 
на организм животного оказывают не только гельминты и их метаболиты, но и паразиты, создающие 
оптимальные  условия  для  интенсивного  развития  в  организме  животного  патогенных  и  условно 
патогенных  бактерий  и  грибов.  В  частности,  личинки  и  молодые  гельминты  в  процессе  миграции 
инокулируют  в  органы  и  ткани  животного  большое  число  бактерий,  которые  в  повреждённых 
гельминтами  тканях  интенсивно  размножаются,  а  их  продукты  жизнедеятельности  наряду  с 
метаболитами  гельминтов,  включая  гибель  и  распад  погибших  гельминтов,  вызывают  сильную 
интоксикацию  и  сенсибилизацию  макроорганизма,  создают  условия  для  интенсивного  развития 
других  сочленов  паразитоценоза,  а  именно  бактерий,  вирусов  и  грибов.  В  связи  с  изложенным, 
гельминтозы 
следует 
рассматривать 
как 
ассоциированные 
заболевания, 
вызываемые 
паразитированием  гельминтов  на  различных  стадиях  развития  бактерий,  вирусов  и  грибов.  Глубина 
нарушения  функций  органов  и  систем  макроорганизма,  механизм,  стадийность  и  характер 
клинического  проявления  заболевания,  методы  и  способы  диагностики  и  лечения  животных  зависят 
от состава членов паразитоценоза [1]. 
Другой  не  менее  важный  фактор  –  это  микроорганизмы,  вирусы  и  грибы,  попадающие  в 
организм  естественными  путями,  а  также  с  вакцинами,  изготовленными  на  основе  живых,  но 
ослабленных  возбудителей  многих  инфекций.  Вакцинные  штаммы  бактерий,  вирусов  и  грибов, 
используемых  для  иммунизации  и  защиты  от  многих  инфекций,  следует  рассматривать  ещё  и  как 
один  из  элементов  экологического  загрязнения  организма  животных,  а  отсюда  и  как  элемент 
дополнительного  ингибирования  их  иммунной  системы.  Массивная  годовая  антигенная  нагрузка  на 
организм животных нередко приводит к блокаде или ослаблению иммунного ответа [2,3]. 
 

 
Схема 1 - Обеспечение ветеринарного благополучия по инфекционным болезням крупного 
рогатого скота 
 
Изучая  причины  проявления  неспецифических  туберкулиновых  реакций  в  благополучных  по 
туберкулёзу крупного рогатого скота сельхозформированиях, установлено, что часть животных была 
инвазирована гельминтами и паразитами.  
Гельминто-копрологические 
исследования. Диагностика 
паразитозов, в т.ч. саркоптоидозов, 
подкожного овода и др. 

При наличии эндо- и эктопаразитов 
проводят обработку животных 
наиболее эффективными 
экономическими препаратами  

Через месяц после обработок 
осуществляют плановые 
клинические, лабораторные 
серологические исследования 

Серологические исследования КРС 
на бруцеллёз, лейкоз, лептоспироз, 
листериоз, хламидиоз, 
гематологические исследования на 
лейкоз  

Реагирующих на аллерген животных 
изолируют и устанавливают 
объективные причины проявления 
реакций в благополучных стадах  

Не реагирующих животных 
подвергают иммунизации с 
интервалом в две недели в 
соответствии с эпизоотической 
обстановкой 

Общий ветеринарный контроль за состоянием стада 

Реагирующих изолируют, уточняют 
причины проявления реакции и 
поступают с ними в соответствии 
существующим правилам 
Не реагирующих животных 
исследуют аллергически на 
туберкулёз  



Нами  была  предложена  схема,  позволяющая  на  первом  этапе  снять  аллергизирующее, 
токсическое и иммунодепрессивное действие маршалагий и других круглых гельминтов из семейства 
трихостронгилиде  (остертагии,  остертагиеллы,  телодорсагии,  скрябинадия  др.)  и  паразитов 
(псороптоз,  сифункулятоз,  гиподерматоз,  и  др.),  на  втором  этапе  –  провести  серологические  и 
аллергические  диагностические  исследования,  а  на  заключительном,  третьем  –  необходимые 
вакцинации (схема). 
Приведенная 
схема 
последовательности 
проведения 
ветеринарно-профилактических 
исследований, в том числе и иммунопрофилактики, освобождает животных от эндо- и эктопаразитов 
и тем самым создаёт оптимальные условия для нормализации иммунного статуса животных. 
Нами было исследовано аллергически около 49.0 тыс. голов крупного рогатого скота, выделено 
300 голов. Для дифференциации неспецифических реакций на ППД-туберкулин для млекопитающих, 
прореагировавших  на  стандартную  дозу  аллергена  на  3-5мм  и  более,  112  животных  подвергли 
контрольно-диагностическому убою. Туши, внутренние органы и лимфоузлы тщательно осматривали, 
биоматериал  от  них  исследовали  лабораторными  методами  –  микроскопия,  выделение  чистой 
культуры  микобактерий  и  биопроба  на  кроликах  и  морских  свинках.  Кроме  того,  при  отрицательных 
результатах  патологоанатомических  исследований  оставшихся  реагирующих  животных  через  месяц 
переисследовали  стандартной  и  половинной  дозами  ППД-туберкулина  для  млекопитающих,  ППД- 
туберкулин для птиц, L-туберкулином для диагностики скрытых форм туберкулёза, а сыворотки крови 
- дополнительно исследовали методом ИФА и ПЦР [4]. 
Во  всех  случаях  туберкулёз  у  исследуемых  животных  исключён  комплексом  примененных 
методов  –  эпизоотологических,  клинических,  патологоанатомических,  лабораторных,  включая 
бактериологические и биопробу на кроликах и морских свинках, а также методами ИФА и ПЦР [5].  
Выявлены  разнообразные  факторы,  способные  влиять  на  проявление  неспецифических 
туберкулиновых  реакций.  При  патологоанатомическом  исследовании  112  убитых  с  диагностической 
целью  коров  и  тщательной  ветсанэкспертизе  туш  органов  и  лимфатических  узлов,  видимых, 
характерных  для  туберкулёза  изменений  не  зарегистрировано.  Из  них  у  18  (16,07%)  установлен 
эхинококкоз  в  лёгких  и  печени;  у  5-ти  (4,46%)  –  абсцессы  в печени;  у  5-ти  (4,46%)  –  травматический 
ретикулит  и  ретикулоперикардит;  у  4-х  (3,57%)  –  абсцессы  в  легких;  у  4-х  (3,57%)  –  актиномикоз  в 
подчелюстном пространстве; у 4-х (3,57%) – сильные поражения скота гиподерматозом; у 2-х (1,78%) 
–  установлены  обширные  кожные  поражения  саркоптоидозами  и  у  70  (62,52%)  –  видимые  причины 
проявления аллергических реакций не установлены [5,6,7]. 
Таким образом, результаты проведенных исследований позволяют заключить, что применение 
дифференциальных  мероприятий  в  благополучных  хозяйствах  при  проявлении  неспецифической 
реактивности  на  туберкулины  помогло  исключить  туберкулёз,  в  62,67%  случаев  предотвратить 
необоснованный  убой  продуктивных  животных  и  осуществлять  постоянный  и  надёжный  контроль  за 
благополучием стада [5,6,7]. 
Сложившаяся 
система 
ветеринарно-профилактических 
мероприятий 
внедрена 
в 
противоэпизоотические  мероприятия  Костанайской  области  и  вошла  составной  частью  в 
«Комплексную программу противоэпизоотических мероприятий при лейкозе, туберкулёзе, бруцеллёзе 
и  хламидиозе  крупного  рогатого  скота  в  племенных,  фермерских  и  личных  подсобных  хозяйствах 
граждан Костанайской области до 2015 года» [8].  
Данная  схема  позволяет  установить  надёжный  контроль  за  благополучием  стад  по 
инфекционным 
и 
инвазионным 
заболеваниям 
в 
оздоровленных 
сельхозформированиях, 
своевременно  поставить  диагноз  и  оперативно  применить  комплекс  вынужденных  мер  в  случае 
возникновения болезни. 
 
Литература: 
1  Петров  Ю.  Ф.,  Большакова  А.  Ю.  Ассоциированные  болезни  животных,  вызываемые 
паразитированием гельминтов, бактерий и грибов // Актуальные проблемы ветеринарной медицины в 
России. - Новосибирск, 1998. – С. 139-148 
2  Апалькин  В.А.,  Смирнов  П.Н.,  Волков  Ф.А.  Новая  научно-обоснованная  схема  ветеринарно-
профилактических мероприятий // Ветеринария Сибири, 1999. - №2. – С. 37-41. 
3  Смирнов  П.Н.,  Храмцов  В.В.,  Джупина  С.И.,  Донченко  А.С.,  Магер  С.Н.  Проблемы  адаптации 
сельскохозяйственных животных в Сибири. – Новосибирск, 1995 – 57 с. 
4  Сапа  В.А.  Экономическое  обоснование  к  совершенствованию  системы  иммунопрофилактики 
крупного рогатого скота // Вестник науки Казахского государственного агротехнического университета 
им. С. Сейфуллина. – Астана, 2009. – №3 – С. 96-101. 
5 Сапа В.А. Совершенствование системы ветеринарно-профилактических мероприятий и её влияние 
на  проявление  неспецифической  реактивности  на  туберкулин  у  крупного  рогатого  скота  // 
Автореферат дисс… кандидата ветеринарных наук. – Астана, 2010. - 29с. 
6  Сапа  В.А.,  Пионтковский  В.И.  Современные  методы  дифференциации  неспецифических 
туберкулиновых  реакций  у  крупного  рогатого  скота  //  Научно-практический  журнал  "Наука  и 

образование"  Западно-Казахстанского  аграрно-технического  университета  им.  Жангир-хана  –  Орал, 
2009. №3 (16) – С. 93-96. 
7  Сапа  В.А.,  Пионтковский  В.И.  Совершенствование  системы  ветеринарно-профилактических 
мероприятий  и  её  влияние  на  проявление  неспецифической  реактивности  на  туберкулин  у  крупного 
рогатого скота // Журнал 3-i (интеллект идея инновация) КГУ им. А. Бацйтурсынова, 2010. - №1 (5). – 
С. 3-5. 
8 Пионтковский В.И., Мустафин М.К., и др. Сапа В.А. Комплексная программа противоэпизоотических 
мероприятий  при  лейкозе,  туберкулёзе,  бруцеллёзе  и  хламидиозе  крупного  рогатого  скота  в 
племенных, фермерских и личных подсобных хозяйствах граждан Костанайской области до 2015 года 
// Методические рекомендации. – Костанай, 2009. - 80с. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 


  1   2   3   4   5   6   7   8   9   ...   22


©emirsaba.org 2017
әкімшілігінің қараңыз

войти | регистрация
    Басты бет


загрузить материал