СОХРАНЕНИЕ ИСЧЕЗАЮЩИХ ВИДОВ ПТИЦ АЛАКОЛЬ-

редких   исчезающих   птиц,   занесенных   в   красную   книгу.   Более   трех   лет   на 
территории Республики Казахстан работает проект ГЭФ\ПРООН «Комплексное 
сохранение   приоритетных   водно-болотных  угодий   международного   значения 
преимущественно   как   мест   обитания   перелетных   птиц»   на   примере   трех 
проектных   территорий.   На   казахстанской   части   водно-болотных   угодий 
Евразийского   континента   сходятся   два   мировых   пролетных   пути   –   это 
Центрально-Азиатско-Индийский   и   Сибирско-Восточно-Африканский. 
Казахстан  является международной гаванью на путях пролета мигрирующих 
птиц.   Водно-болотные   угодья   Казахстана   являются   местом   гнездования   и 
кормления птиц   из стран Западной Европы, Юго-Восточной Азии,   Африки, 
Арктического   побережья.   Каждые   полгода   более   50   миллионов   птиц 
мигрируют через Казахстан. Из них 20% гнездится на территории Казахстана. 
По своему положению в ландшафте и особенностям использования человеком 
водно-болотные   угодья   —   особенно   уязвимые   экосистемы   нашей   планеты, 
которые в настоящее время находятся  под наибольшей угрозой разрушения. 
Среди водно-болотных угодий особое место занимает Алаколь-Сасыккольская 
система   озер,   которая   расположена   в   межгорье   Джунгарского   Алатау   и   гор 
Тарбагатай, на территории Алматинской и Восточно-Казахстанской областях. 
Алаколь-Сасыккольская   система   озер   является   крупнейшим   в   республике 
резерватом   водно-болотных   птиц,   и   именно   здесь   проходит   Центрально-
Азиатско-Индийский   миграционный   путь.   Из   общего   количества   315   видов 
птиц отмеченных для Алаколь-Сасыккольской системы озер на современных 
границах заповедника отмечено 272 вида птиц, в том числе в дельте Тентека - 
263 вида (119 гнездящихся) и на островах Алаколя - 87 (49 гнездящихся). Из 
редких   и   исчезающих   птиц,   включенных   в   Красную   книгу   Казахстана,   в 
Алакольской   котловине   зарегистрировано   38   видов,   в   том   числе   27 
гнездящихся.   В   пределах   заповедника   в   настоящее   время   гнездится   15 
«краснокнижных»   видов:   кудрявый   пеликан,   колпица,   черный   аист,   лебедь-
кликун,   белоглазая   чернеть,   савка,   орлан-белохвост,   змееяд,   серый   журавль, 
журавль-красавка,   дрофа,   джек,   стрепет,   черноголовый   хохотун,   реликтовая 
чайка, филин. Еще 7 видов (розовый пеликан, степной орел, беркут, могильник, 
сокол-балобан, чернобрюхий рябок, саджа) гнездятся в котловине за пределами 
заповедника. В период сезонных миграций изредка встречаются 4 вида: малый 
лебедь, скопа, сокол-сапсан и орлан-долгохвост. Еще 9 видов исключительно 
редко залетает на оз. Алаколь и могут быть встречены в отдельные годы на 
территории   заповедника.     Это   малая   белая   цапля,   каравайка,   фламинго, 
горбоносый турпан, белый журавль, тонкоклювый кроншнеп, малый кроншнеп 
и азиатский бекасовидный веретенник. Здесь также представлены гнездящиеся 
популяции   кудрявого   и   розового   пеликанов   и   белоглазого   нырка.   Самым 
редким видом, встречающимся на озере, является реликтовая чайка - одна из 
редких   птиц   мира.   Считается,   что   в   мире   существует   всего   600—   800   пар 
реликтовых чаек. 
Научный руководитель – к.б.н., доцент Дауренбекова Ш.Ж. 
ЖҰМСАҚ БИДАЙ МУТАНТЫНЫҢ ҚОҢЫР ТАТ АУРУЫНА 

ТӨЗІМДІЛІГІНЕ ГЕНЕТИКАЛЫҚ ТАЛДАУ
Токубаева А.А. 
әл-Фараби атындағы Қазақ Ұлттық университеті, Алматы қ. Қазақстан
Мақалада   ұсынылатын   негізгі   мәселе,   селекциялық   жолмен   сұрыптап 
алынған химиялық мутагенез тәсілі арқылы шығарылған мутантты формаларға 
цитогенетикалық   талдау   жүргізу   және   бидайдың   ауылшаруашылығы   үшін 
құнды   белгілеріне   жауапты   ген   немесе   гендердің   белгілі   хромосомдардағы 
орналасқан орнын анықтау. 
Қазахстанская 3 сортының негізінде алынған мутантты форманың қоңыр 
тат   ауруына   (Lr   -   Leaf   rust   )     төзімділігін   бақылайтын   қасиетіне 
цитогенетикалық   талдау   жүргізу   үшін   Казахстанская   126   сортының   21   жұп 
хромосомадан   моносомды   линиялары   қолданылды.   A1   мутантты   формасы 
Егіншілік   және   өсімдік   шаруашылығы   ғылыми   –   зерттеу   орталығының 
иммунитет   лабораториясының,   инфекциялық   егістігінде   сынақтан   өткізу 
нәтижесінде, оның қоңыр тат ауруына төзімділігінің 56 расасына берік екендігі 
анықталды.  А1 мутанттың қоңыр татпен зақымдану типі – «0». Казахстанская 3 
сорты қоңыр тат ауруына өте жоғары сезімталдығын - «4» байқатты. Бақылау 
сорты   мен   мутантты   форманың   және   F1   будандарына   моносомды   талдау 
нәтижесінде   Казахстанская   3   сортының   123   өсімдігінің   барлығы   әртүрлі 
дәрежеде зақымданғаны байқалды. Өсімдітердің зақымдануы   « 3 » және « 4 » 
балдардың   төңірегінде   болғандықтан,   олар   қоңыр   тат   ауруына   төзімсіздер 
қатарына   жатқызылды.     Мутантты   формадан   себілген   60   дәнндерден   өніп, 
жетілген 57 өсімдіктердің барлығы қоңыр тат ауруына жоғары төзімділігімен 
сипатталды. А1 мутантымен 21 моносомды линияларды будандастырудан алған 
F1 ұрпағының 108 өсімдіктері қарастырып отырған ауру түріне тұрақты болды. 
Осыдан,   мутантты   форманың   қатысуымен   алынған   барлық   дисомды   және 
моносомды   комбинациялардың   F1   будандарын   талдау   нәтижелері,   ересек 
ағзалардың   тат   ауруына   төзімділік   қасиетінің   доминантты 
тұқымқуалайтындығын  көрсетті.
  Цитологиялық   талдау   арқылы   F1   ұрпағынан   бөлініп   алған   моносомды 
өсімдіктер өздігінен тозаңдандырылып, F2 ұрпағы алынды.  F2   ұрпағындағы 
моносомды   популяциялардың   бақылау   буданымен   салыстырмалы   талдауы, 
қарастырып отырған белгіге әсер ететін негізгі геннің хромосомадағы локусын 
табуға   мүмкіншілігін   береді.  Екінші   ұрпақтағы   популяциялардың   қоңыр   тат 
саңырауқұлақтарына төзімділігі бойынша ажырау, ересек өсімдіктердің жалау 
жапырақтарынан талданды. 
Бақылау  буданының  F2  ұрпақтағы  159  төзімді (R)  және  45  сезімтал (S) 
өсімдіктердің   ажырау   қатынасы   3:1   гипотезасына   сәйкес   келіп,   моногенді 
(χ
2
=0,34) тұқымқуалайтындығы дәлелденді. Моносомды  1В (χ
2
=21,78)  және 4А 
(χ
2
=4,53)   хромосомаларынан   бақылау   буданымен   салыстырғанда     ауытқу 
байқалды. Мутантты форманың төзімділік қасиетіне жауапты ген В геномының 
1В хромосомасында, ал негізгі геннің қызметін жоғарлататын модитфикаторлы 
ген А геномының 4А хромосомасында орналасқандығы анықталды. 
Ғылыми жетекшісі: б.ғ.д., профессоры Шулембаева К.К. 

ВЛИЯНИЕ N-НИТРОЗОДИМЕТИЛАМИНА НА СОСТАВ КЛЕТОЧНОЙ 
ПОПУЛЯЦИИ ГЕПАТОЦИТОВ ССL
4 
 СТИМУЛИРОВАННЫХ КРЫС 
Умбаев Б.А., Медеуова А.
Казахский Национальный университет им.аль-Фараби, Алматы, Казахстан, 
е-mail:baumbhir@gmail.com
N-нитрозодиметиламин   (НДМА)   является   сильным   гепатотоксином   и 
канцерогеном   требующим   предварительной   метаболической   активации   в 
которой ключевую роль играет цитохром Р-450IIE1. Многие авторы связывают 
повреждение   и   гибель   гепатоцитов   интоксицированных   N-
нитрозодиметиламином   с   активацией   свободнорадикальных   реакций 
вызванных именно деятельностью   цитохрома Р-450IIE1.   Ранее нами   было 
показано, что наряду с повреждением и гибелью гепатоцитов НДМА приводит 
к   образованию   многоядерных   клеток   в     печени   лабораторных   грызунов. 
Известно,   что   данная   изоформа   цитохрома   Р450   локализуется   в 
центролобулярных   участках   печеночной   дольки,   где   происходит   метаболизм 
НДМА.   В   результате   метаболизма   часть   центролобулярных   клеток   дольки 
погибает,   а другая  ее  менее  поврежденная   часть  пролиферирует и  замещает 
участки   погибшей   ткани.   Возможность   остальных   зон   печеночной   дольки   к 
образованию   многоядерных   гепатоцитов   при   действии   НДМА   не   изучена. 
Поэтому   целью   данного   исследования   являлось   исследование   оценка 
возможности образования многоядерных клеток под воздействием НДМА при 
регенерации печени вызванной интоксикацией ССl
4
. В опыте животные были 
разбиты   на   4   группы:  I    –   интактные   животные   (контроль),  II  -  животные 
получали перорально 8 мг/кг НДМА в течении недели; III - животные получали 
5 мл/кг  ССl
4
  (40% раствор на оливковом масле) однократно, перорально;  IV  - 
животные получали ССl
4
 
 
в тех же условиях, далее они получали перорально 8 
мг/кг   НДМА   в   течении   недели.   Животные   всех   групп   были   забиты   через 
неделю   после   начала   экспериментов.  ДНК   в   ядрах   изолированных  клеток 
печени   крыс   определяли,   используя   флуоресцентный   вариант     реакции 
Фельгена, в которой обычный реактив Шиффа заменялся на флуоресцентный 
реактив   типа   Шиффа   –   аурамин   SO
2
.  Цитофлуориметрию   ДНК     в   ядрах 
гепатоцитов   производили с помощью люминесцентного микроскопа Люмам-
И3,   снабженного   фотометрической   установкой   ФМЭЛ-2.   При   измерении 
использовали объектив 40х, источник света - ртутная лампа ДРШ-250-2. Свет 
возбуждения   был   равен  
λ
=365,   404,   и   436   нм,   а   свет   люминесценции 
λ
max
=526-528 нм. 
В результате проведенных исследований  было показано, что у животных, 
получавших  НДМА, наблюдались изменения в распределение гепатоцитов по 
классам плоидности в сторону увеличения количества высокоплодных клеток, 
кроме   того   выявлялись   трехядерные   с   тремя   диплоидные   ядрами   (2х3) 
гепатоциты  (около 1 процента). У  животных получавших однократную дозу 
ССl
4
  также   отмечались   схожие   изменение   состава   клеточной   популяции   по 
классам   плоидности,   однако   многоядерные   клеток   не   были   обнаружены.   У 

животных IV группы подверженных действию как ССl
4, 
так и НДМА, тоже был 
изменен   состав   клеточной   популяции,   но   по   сравнению   с  III  группой 
получавшей только ССl
4  
в паренхиме печени этих животных обнаруживались 
одиночные   многоядерные   клетки.   Эти   данные   свидетельствуют     о   том,   что 
клеточным   источником   возникновения   многоядерных   клеток   являются 
гепатоциты   центролобулярной   зоны,   способные   синтезировать   цитохром 
Р-450IIE1,   ведь     именно   они   погибали   при   действии   большей   дозы   ССl
4    
и 
поэтому у животных IV группы выявлялись одиночные многоядерные клетки.
Научный руководитель – д.б.н, профессор Шалахметова Т.М.
ДЕЙСТВИЕ ТИРОКСИНА НА МЕТАБОЛИЗМ СФИНГОЛИПИДОВ
Умеров О.И., Амирова Л.К.
Институт биохимии АН РУз.,Ташкент, Узбекистан. 
 е-
   mail
 
 
:
     saatov
 
 @
   uzsci
 
 .  net
   
На сегодняшний день одной из центральных проблем биологической науки 
является изучение мембран и их структурных компонентов, в свете реализации 
клеточного   взаимодействия   и   эффектов   гормонов.   Мембранная   организация 
клеточных   структур   является   важной   основой   для   осуществления   действия 
гормонов в том числе и  гормонов щитовидной железы. Поскольку в настоящее 
время   невозможно   отделить   функцию   ферментативных   систем,   на   которые 
могут   влиять   гормоны   от   мембранных   структур   клеток,   то   воздействие 
гормонов на мембраны клеток расцениваются как один из важнейших аспектов 
молекулярного механизма из действия. В своих предположениях мы исходим 
из     представления   о   регуляции   гормонами   щитовидной   железы   функции 
организма   посредством   оказания   воздействия   на   активность   генетического 
аппарата     и     целостности     мембранных   структур   клеток.   Опубликованные 
данные указывают на то, что в функциональной активности этих структур не 
последнюю роль играют липидные компоненты, в том числе и сфинголипиды. 
Как известно сфинголипиды – один из наиболее разнообразных по химической 
структуре и биологической функции классов липидов. Этот класс включает в 
себя   сотни   соединений,   общим   фрагментом   которых   является   сфингоидное 
основание. В настоящее время сфинголипидам отводят особое внимание, как 
соединениям,   имеющим   огомное   значение   в   регуляции   клеточных   функций, 
таких как регуляция клеточного роста, пролиферации и апоптоза  клеток. 
Исходя  из вышесказанного,    целью наших исследований было изучение 
содержания сфингомиелина в различных органах экспериментальном гипер- и 
гипотиреозе. 
Методы.  Исследование   проводилось   на   30   самцах   лабораторных   крыс. 
Животные были разделены на группы, по десять голов в каждой. Животных 
содержали на обычном рационе вивария. Гипотиреоз вызывали хирургическим 
путем,   гипертиреоз   введением  L-тироксина.   Животных   забивали   путем 
декапитации.     Органы   животных   (сердце,   печень,   мозг)   перфузировали 
охлажденным   Трис буфером и немедленно использовали для экспериментов. 
Экстракцию липидов производили по методу Folch J. et al (1957 г.), полярные 

липиды   разделяли   методами   ТСХ.   Количественный   анализ   сфингомиелина 
проводили по фосфору методом предложенным Vaskovsky V.E. и др.(1975 г.).
Результаты   и   их   обсуждение.  В   результате   наших   исследований   было 
выявлено   значительное   изменение   содержания   сфингомиелина   при   гипо-   и 
гипертиреозах   вне   зависимости   от   типа   ткани.   В   норме   клетки   сердца 
содержала около 21,9 мг сфингомиелина на 1 гр ткани, что составляло 5,7% 
относительно общего количества фосфолипидов. Но эта цифра снижалась на 
17,8   %   при   гипертиреозе   и   увеличивалась   на   37%     при   гипотиреозе   по 
сравнению   с   содержанием   сфингомиелина   в   норме.     Схожая   картина 
отмечалась   и   в   клетках   печени.   Так,   в   норме     печень   содержала   2,17   мг 
сфингомиелина   в   1   гр   ткани.   При   гипотиреозе   содержание   сфингомиелина 
увеличивалось   на   22%   и   уменьшилась   30%   при   гипертиреозе.   Обратная 
ситуация   возникла   в   условиях   экспериментального   гипер-   и   гипотиреозов   в 
клетках   мозга.   Вследствие   воздействия   больших   доз   экзогенного   тироксина 
уровень сфингомиелина в этом органе вырос на 37 % и снизился  на 30% в 
условиях экспериментального гипотиреоза.   Интересно отметить и тот факт, 
что наблюдалась определенная схожость в изменениях суммарного содержания 
фосфолипидов   в   клетках   печени   и   сердца.   Установлено,   что   содержание 
фосфолипидов   увеличивалось   при   гипотиреозе   и   оставалась   фактически 
неизменной   при   гипертиреозе.   Таким   образом,   полученные   нами   данные 
убедительно   указывают   на   то,   что   тироксин   заметно   влияет   на   содержание 
сфингомиелина в тканях изученных органов. Неоднородность его эффектов на 
разные   органы   являются   предсказуемыми   явлениями   и   объясняются   разной 
чувствительностью этих органов к действую тиреоидных гормонов. 
ВЛИЯНИЕ АРБУСКУЛЯРНОЙ МИКОРИЗЫ НА МОРФОЛОГИЮ 
КОРНЕВОЙ СИСТЕМЫ PHASEOLUS VULGARIS L.
ПРИ ПОЧВЕННОМ ЗАГРЯЗНЕНИИ МЕДЬЮ И ЦИНКОМ
Фалеев Д.Г.
Казахский Национальный университет им. аль-Фараби, г. Алматы, Казахстан 
e-mail: 
antares
 
 _  fd
   @
   kgc
   .  kz
   
Возникновение   симбиотических   взаимоотношений   между   грибом   и 
корневой   системой   растения-хозяина   –   весьма   распространенное   в   природе 
явление.   Микоризация   растений   эндогоновыми   грибами   повышает 
устойчивость   растений   к   недостатку   влаги,   засолению   почв,   а   так   же   к 
отравлению   различными   веществами   антропогенного   происхождения,   в   том 
числе тяжелыми металлами.
В   связи   с   этим   было   проведено   исследование   влияния   почвенного 
загрязнения   медью   и   цинком   на   морфологию   корневых   систем   фасоли 
обыкновенной - Phaseolus vulgaris L. (сем. Fabaceae) в лабораторных условиях. 
Семена   фасоли   поверхностно   стерилизовали   в   растворе   перманганата 
калия (КMnO
4
) и проращивали в стерильных чашках Петри на фильтровальной 
бумаге. Пророщенную фасоль высаживали в одинаковые емкости. Медь была 
внесена в концентрации 150 мг/кг сухой почвы, цинк - 300 мг/кг сухой почвы. 

При   проведении   эксперимента   были   использованы   дигидрат   ацетата   меди   и 
дигидрат   ацетата   цинка   являющиеся   веществами   с   высоким   показателем 
растворимости в воде. На шестидесятый день выращивания корневые системы 
растений   извлекали   из   горшков,   тщательно   отмывали   и   исследовали   их 
морфологию. 
Проведенные   нами   исследования   показали,   что   система   главного   коня 
микоризных  растений была  развита   хуже, чем   у безмикоризных.  Так, длина 
главного   корня   безмиоризных   растений   составила   в   среднем   5,46   см, 
микоризных - 4,0 см, Количество придаточных корней соответственно 16,3 и 
11,5 штук, Максимальная длина придаточных корней 1-го порядка 5,5 и 2,9 см. 
При этом длина придаточных корней 2 и 3 порядка микоризных растений была 
больше, чем у безмикоризных: соответственно 3,6 и 2,6; 1,5 и 1,0 см. Система 
придаточных   корней   микоризных   растений   была   развита   лучше,   чем   у 
безмикоризных:   количество   придаточных   корней   достигало   соответственно 
35,0 и 24,6 шт., максимальная длина придаточных корней 1, 2 и 3 порядков - 
18,5 и 6,9; 3,5 и 3,1; 6,0 и 2,2см. 
При внесении цинка и меди корневые системы микоризной фасоли в целом 
были развиты лучше, чем у безмикоризной. Длина главного корня микоризных 
растений заметно уступала аналогичному показателю безмикоризных составив 
при   почвенном   загрязнении   цинком   соответственно   3,9   и   4,3   см,   при 
загрязнении медью 8,7 и 14,6 см. Вместе с тем количество придаточных корней 
главного корня  микоризных растений как при загрязнении цинком, так и при 
загрязнениии   медью   было   выше   чем   у   безмикоризных   (соответственно   при 
загрязнении цином -17,0 и 14,0 штук, медью - 25,0 и 15,3 штук. Показатели 
длины придаточных корней 1-го, 2-го и 3-го порядков системы главного корня 
микоризных растений как правило были выше, чем у безмикоризных.  
Количество придаточных корней у микотрофных экземпляров фасоли при 
внесении цинка было выше, чем у немикотрофных (18,5 и 28,0 шт.), в то время 
как   при   внесении   меди   данный   параметр   у   микоризных   не   различался   от 
безмикоризных (в среднем 28,6 шт.). При этом показатели длины придаточных 
корней 1-го, 2-го и 3-го порядков системы придаточных корней микоризных 
растений как правило были выше, чем у безмикоризных.
Таким образом, проведенные нами лабораторные исследования показали, 
что   загрязнение   почвы   медью   и   цинком   приводит   к   снижению   линейных   и 
количественных параметров корневых систем  Phaseolus  vulgaris  L. при этом 
корневые   системы   микоризных   растений   были   разветы   лучше,   чем 
безмикоризные, что говорит о протекторной роли арбускулярной микоризы при 
почвенных загрязнениях металлами антропогенного происхождения (в данном 
случае к загрязнению медью и цинком). 
СРАВНИТЕЛЬНОЕ ГИСТОЛОГИЧЕСКОЕ ИЗУЧЕНИЕ ЖЕЛУДКА 
ЛЯГУШКИ ОЗЕРНОЙ (RANA RIDIBUNDA) И ЯЩУРКИ БЫСТРОЙ 
(EREMIAS VELOX)
Хегай Ж..С.
Казахский Национальный университет имени аль-Фараби, Алматы, Казахстан

В   связи   с   нарастающей   проблемой   загрязнения   окружающей   среды, 
особый   интерес   представляет   изучение   амфибий   и   рептилий,   которые   по 
данным   многих   авторов   являются   ранними   индикаторами   состояния 
экологической   обстановки.   На   основании   гистологических   исследований 
патологических   изменений   в   органах   этих   животных,   которые   обитают   в 
неблагополучных   районах,   можно   дополнять   и   корректировать   данные   по 
экологии   и   биологии   животных.     Кроме   того,   следует   отметить,   что   в 
доступной литературе плохо освещена нормальная гистоструктура внутренних 
органов амфибий, что приводит к трудностям при изучении патологии. Особый 
интерес представляет  изучение органов пищеварительной системы, одной из 
первых вступающей в контакт с токсикантами, которые попадают в организм с 
пищей и водой.
Целью   данной   работы   явилось   сравнительно-гистологическое   изучение 
строения желудка амфибий и рептилий. 
Известно, что желудок амфибий располагается на левой стороне брюшной 
полости и представляет  собой расширенную часть пищеварительной трубки. 
Передний, более широкий отдел желудка носит название кардиального, задний, 
изогнутый и более суженный отдел, называется пилорическим. Пилорический 
отдел   желудка   переходит   в   12-перстную   кишку   от   которой   отграничивается 
ясно   выраженным   мускульным   клапаном.   Гистологическое   изучение   на 
внутренней   поверхности   желудка   показало,   что   имеются   большие   высокие 
складки слизистой оболочки. Там же в слизистой оболочке находятся железы. 
Стенка   желудка   лягушки   озерной   состоит   из   слизистой   оболочки, 
подслизистой,   мышечной   и   серозной   оболочек.   Поверхность   слизистой 
оболочки   одета   плоским   однослойным   эпителием.   Ряд   авторов   находили 
внутри   желудка   отдельные   группы   эпителиальных   клеток,   несущие 
мерцательные реснички. Однако нами они не были обнаружены. 
Желудок рептилий имеет форму С  образной изогнутой трубки. Внешняя 
сторона носит название большой кривизны, внутренняя - малой кривизны, а 
место   перегиба   -   дном   желудка.   Задний   конец   желудка   переходит   в   12-
перстную   кишку,   от   которой   он   отделен   сфинктером.   Внутренняя   стенка 
желудка   покрыта   складками.   В   желудке   рептилий   имеются   двоякого   рода 
железы: фундальные и пилорические. Железы эти состоят из темных и светлых 
клеток.   Причем   соотношение   темных   и   светлых   клеток   в   железах   желудка 
меняется: количество темных клеток, максимальное в железах переднего отдела 
желудка, убывает в направлении пилоруса и сводится на нет в пилорической 
части.   Светлые   клетки,   напротив,   увеличиваются   числом   в   каудальном 
направлении   и   пилорические   железы   целиком   состоят   из   них.   Слизистая 
оболочка покрыта однослойными цилиндрическими клетками, однотипными по 
строению, которые секретируют слизь. В толще ее располагаются собственно 
пищеварительные   железы   –   5-8   секреторных   клеток   окружают   просвет, 
формируя   железу.   Подслизистая,   образованная   соединительнотканными 
волокнами. Мышечный слой желудка состоит из двух слоев, циркулярного и 
продольного. Снаружи желудок покрыт серозной оболочкой. 

Таким   образом,   гистологическое   изучение   желудка   представителей 
амфибий и рептилий показало, что в целом желудок у Rana ridibunda и Eremias 
velox имеет сходное строение. У ящурки по сравнению с лягушкой наблюдается 
усложнение желез желудка и появления двух типов железистых клеток. Однако 
по   сравнению   с   млекопитающими   желудок   амфибий   и   рептилий   имеет 
примитивное строение.
Научный руководитель: к.б.н., доцент  Базарбаева Ж.М.

жүктеу/скачать 2,39 Mb.

Достарыңызбен бөлісу: