Министерство сельского хозяйства республики казахстан

365 
3. Быков  Л.Т.,  Гордиенко  О.Я.,  Кукин  В.М.  О  восприимчивости  и  иммунитете
больших  песчанок  к  пастереллезу  в  эксперименте.  Материалы V научной  конференции 
противочумных учреждений средней Азии и Казахстана. - Алма-Ата,1967.-с.348-350. 
4. Гордиенко  О.Я.,  Ковтун  И.П.  Пастеррелез  больших  песчанок  в  Муюнкумах.
Материалы V научной  конференции  противочумных  учреждений  средней  Азии  и 
Казахстана. - Алма-Ата,1967.-с.353-354. 
5. Звери Казахстана. - Алма-Ата: изд. АНКазССР, 1953. - 502 с.
6. Кок Р., Грачев Ю., Жакипбаев А. и др. Ретроспективная оценка падежа антилопы
сайга  Saiga tatаrica tatarica  в  Западном  Казахстане  в 2010-2011 годы.  Зологические 
исследования в Казахстане и сопредельных странах.- Алматы, 2012. - с.130-132. 
7. Мека-Меченко Т.В., Некрасова Л.Е., Лухнова Л.Ю. и др. Биологические свойства
штаммов  пастерелл,  выделенных  в 2010-2013г.г  в  Кызылординской  и  Западно-
Казахстанской  областях  Казахстана.  Материалы  юбилейной  международной  научно-
практической конференции Уральской ПЧС. -Уральск, 2014. - с. 169-171. 
8. Новиков  Г.А.  Полевые  исследования  экологии  наземных  позвоночных. - М.:
Советская наука, 1953. - 502 с. 
9. Руководство  по  ландшафтно-эпизотологическому  районированию  природных
очагов чумы Средней Азии и Казахстана. - Алма-Ата, 1990.-23с. 
10. Сапанов  М.К.  Причины  гибели  сайгаков  в  Казахстане.  Степной  бюллетень.-
Новосибирск,2011, №31.- с42-44. 
11. Степанов В.М., Аубакиров С.А., Бурделов Л.А и др. Руководство по профилактике
чумы в Среднеазиатском пустынном очаге. Алма-Ата, 1992. -144с. 
12. Цутер  Ш.  Массовый  падеж  сайгаков  бетпакдалинской  популяции.  Степной
бюллетень. -Новосибирск, 2012, №36.-с45. 
13. Шарапкова Н.Я., Сержанов О.С., Максименко Н.П. и др. К вопросу о природной
очаговости  пастереллеза  на  территории  Каракалпакии.  Материалы  ІV  научной 
конференции по природной очаговости и профилактике чумы. -Алма-Ата, 1965. - с. 292-
293. 
14. Li C.C. Population genetics. - Chicago: University of Chicago Press, 1955.-281p.
15. http:// www.ztb.kz/post/804/
16. http:// www.inform.kz/rus/article/2829971/
17. http:// www.dixinews.kz/article/14311/
18. http:// www.plus.google.com/wm/
19. http:// www.kaztag.kz/news/detail/264035/
УДК 619.24/.29:616.5-002.828 
ШТАММ ГРИБА TRICHOPHYTONSARKISOVIIF-0080, ПОДВИД SARKISOVII, 
IVANOVAETPOLYAKOVASP.NOV., ИСПОЛЬЗУЕМЫЙ  ДЛЯ    ИЗГОТОВЛЕНИЯ    
ВАКЦИНЫ  ПРОТИВ  ТРИХОФИТИИ     ВЕРБЛЮДОВ 
Токеев Ш.О. 
Товарищество с ограниченной ответственностью «Казахский научно-
исследовательский ветеринарный институт», г. Алматы 
          Аңдатпа 
          Мақалада  жергілікті  айналымда  жүрген Tr. sarkisovii F-0080 вакциналық 
штаммына  сипаттама  берілген  жəне  одан  түйе  трихофитиясына  қарсы  жеке  вакцина 
дайындауға болатыны жайлы деректер жарияланған. 

366 
Annotation 
In given article are brought results local vaccine stream Tr. sarkisovii F-0080, against 
trichophyton camel and about possibility of the fabrication моnovaccines against trichophyton 
camel. 
Ключевые  слова:  изолят,  штамм,  идентификация,  трихофития,  селекция, 
патогенность, иммуногенность, безвредность, верблюд. 
В настоящее время поголовья верблюдов в Республике Казахстан насчитывается 
более 160 000 голов.  Против указанной  инфекции используется местный штамм гриба 
Tr. sarkisoviiF-0080, используемый  для  изготовления  отечественной  вакцины  против 
трихофитии  верблюдов.  Отечественная  вакцина  против  трихофитии  верблюдов 
разрабатывается в Республике Казахстан впервые. 
В    настоящее      время    изучены  основные  биологические  свойства  выделенного 
возбудителя  дерматомикоза  верблюдов.  Возбудитель  дерматомикоза  верблюдов 
идентифицировано  с  помощью  определителя  патогенных,  токсигенных  и  вредных  для 
человека грибов по П.Н.Кашкину и др.[1, 2, 3]. 
Указанный  штамм  гриба  Tr.  sarkisoviiF-0080, депонирован  в  Лаборатории  по 
изучению генофонда микроорганизмов ТОО «КазНИВИ». 
Селекция штамма 
Штамм  гриба Tr. sarkisoviiF-0080,выделен  из  поверхности  кожного  покрова 
больной трихофитией верблюда принадлежавшего верблюдоводческому хозяйству «K/X 
Agro Mercur» Енбекши-Казахского  района  Алматинской  области.  Методом  разведения 
выделяли клоны названного гриба выросших в чашки Петри на суслоагаре, которые при 
дальнейшем посеве давали наибольший рост. Таким образом, в результате проведенных 
исследований  был  выделен  полевой  изолят  гриба  из  родаTrichophyton,  который  был 
более  предпочтителен  для  дальнейшей  работы.  Вакцинный  штамм Tr. sarkisoviiF-
0080,получен путем направленного ступенчатого отбора по признаку спорообразования 
быстрорастущих колоний с активным накоплением микроконидий. Полученный штамм 
отличается  от  эпизоотиических  штаммов  слабой  вирулентностью,  высокой 
спорогенностью и активностью при внутримышечном введении. 
Штамм Tr. sarkisoviiF-0080,характеризуется следующими признаками. 
Культуральные свойства 
Культуры гриба медленно растущие, рост колоний заметен в течение 24 ч после 
посева,  на 4-5-й  день  начиналось  образование  типичных  «канделябров»  и  рогов 
северного  оленя,  через 7 дней  гриб  разрастается  по  всему  объему  среды.  Первичные 
культуры  развивается  очень  медленно,  к 30-му  дню  формируется  сероватые,  плоские, 
плотно-сросшиеся с субстратом и глубокими отпрысками в питательную среду колонии 
диаметром  от 7 до 10 мм.  Форма  колонии  ровная,  бархатистая  концентрическими 
кругами.  Размер  колонии  достигает  от 25 до 40 мм.  Цвет  колонии  бежевый, 
возвышенный,  бугристый,  складчатый.  Обратная  сторона  колонии  окрашена  в 
коричневый  цвет.  Обладает  полиморфизмом.  В  питательную  среду  выделяет 
коричневый  пигмент.  Гифы  разной  ширины  (от 1,6 до 9 мм),  которая  пре-обладают 
широкий  неравномерно  утолщенной  ветвящийся  мицелий.  Часто  можно  обнаружит 
ветвление  конечных  гиф  в  виде  рогов  северного  оленя.  При  созревании  культур 
образуются цепочки артроспор (6-18 мкм), а затем обильные хламидоспоры (6-17 мкм). 
Очищенные  культуры  гриба  на  питательных  средах  увеличивают  энергию  роста  и 
способствуют спорообразованию. Степень развития мицелия приходится на 18-21 день.  
Биохимические свойства 
Штамм  гриба Tr. sarkisoviiF-0080, не  испытывают  потребности  в  витаминах  для 
роста и спорообразования. Сероводород и индол не образуют. 

367 
Антигенные свойства 
На  введения  культуры  штамма  в  организме  верблюжат,  кроликов  и  морских 
свинок образуются специфические  агглютинины  в  титрах  1:40-1:1280. 
Маркерные признаки 
Биохимические    - на   сусло   агаре    при    рН  7,2-7,4  до    концентрации  200-250 
млн/см
3
.  Макроконидии  отсутствуют  или  единичные,  удлиненно-овальные.  В 
очищенных  культурах  с  увеличением  микроконидии  образуются  в  небольшом 
количестве  макроконидии  (размером  от 16 до 50 мкм).  Микроконидии  единичные, 
значительно варьируют в размерах 2,5-5,0 х 3,0-10,0 мкм. 
Физиологические – хемогетеротроф.  По  отношению  к  кислороду  аэроб.  Не 
обладает метаболическими свойствами. 
Патогенные свойства 
Штамм  гриба Tr. sarkisoviiF-0080,  патогенен  для  верблюдов,  человека  и 
лабораторных животных, обладают цитопатогенным действием на культуры клеток. 
Иммуногенность 
При двукратном внутримышечном введении штамма с интервалом 14 дней в дозе 
20  х 10
6
микроконидий  создают  напряженный  иммунитет  у  привитых  верблюжат, 
кроликов  и  морских  свинок  к  последующему  заражению  трихофитией  с 
продолжительностью не менее 12 месяцев. 
Безвредность 
Штамм  гриба  Tr.  sarkisoviiF-0080, безвреден в указанных выше дозах. 
Реактогенность 
Штамм    гриба  Tr. sarkisoviiF-0080,слабореактогенен  для  верблюдов  при 
внутримышечном введении.  
Спророобразование 
Максимальный уровень споро-образования на суслоагаре 200-250 млн/см
3
. 
Реверсабельность и реактогенность 
Штамм гриба Tr. sarkisoviiF-0080, отличается от эпизоотического изолята слабой 
вирулентностью,  отсутствием  заражения  при  контакте  между  животными,  высокой 
активностью при внутримышечном введении животным. 
Стабильность свойств при пассировании 
Основные  биологические  свойства  штамма  гриба Tr. sarkisoviiF-0080, стабильно 
сохраняются  на  протяжении 3-4 лет  при  условии  редких  пересевов (2-3 раза  в  год)  не 
ослабляет патогенные свойства.  
Приготовленный  таким  образом  гомогенат  из  штамма Tr. sarkisoviiF-0080, 
обеспечивает  надежную  профилактику  поголовья  верблюдов  против  трихофитийной 
инфекции.  
Литература 
1.
Кашкин  П.Н.  и  др.  Определитель  патогенных,  токсигенных  и  вредных  для
человека грибов.- Л., Мед., 1979.- 262 с.  
2.
Кашкин  П.Н.,  Лисин  В.В.  Практическое  руководство  по  медицинской
микологии. Л., Мед., 1983.-С.166-168. 
3.
Саттона    Д.,  Фотергилла    А.,  Ринальди  М.  Определитель  патогенных  и
условно патогенных грибов.-Москва: «Мир», 2001.- С.5-486. 

368 
УДК 619:615.35 
ВЛИЯНИЕ ОЦС НА ДИНАМИКУ ИММУНОГЛОБУЛИНОВОГО СОСТАВА 
СЫВОРОТКИ КРОВИ КОРОВ 
Утянов А.М., Заманбеков Н.А., Оспанкулов А., 
Баймурзаева М.С., Азизов К.А. 
Казахский национальный аграрный университет, г. Алматы 
         Аңдатпа  
 Мақалада  овариоцитотоксикалық  қан  сарысуының  (ОЦС)  қуаттандырғыш 
мөлшерінің  сиырлардың  жыныстың  процесстің  əр  түрлі  кезеңдеріндегі  қан  сарысуы 
құрамындағы  иммуноглобулиндердің  динамикасына  əсер  етуі  нақты  деректермен 
көрсетіледі.  Зерттеу  барысында  алынған  нəтижелер  негізінде  ОЦС  препаратының 
сиырлардың  қан  сарысуы  құрамындағы  иммуноглобулиндердің  динамикасына 
қуаттандырып əсер ететіндігі анықталады.   
         Annotation 
 In given article results influences stimulated dose ovari cytotoxic serum  (OCS) on 
speaker immunogobulin wheys cortex at different periods reproductive  to functions. The Got 
results of the studies are indicative of stimulated influence OCS on quantitative importances 
immunogobulin wheys shelters cortex.  
Ключевые слова:  гуморальный, клеточный иммунитет, коровы алатау-ской породы, 
овариоцитотоксическая 
сыворотка, 
антиген-антитело, 
иммуноглобулины, 
иммунокоррегирующее действие. 
Введение  
О  иммунореактивном  состоянии  организма  судят  по  показателям  гуморального  и 
клеточного  иммунитета.  Одним  из  компонентов  гуморального  иммунитета  являются  
иммуноглобулины различных классов. 
В  настоящее  время  феномен  естественного  иммунитета  рассматривается,  прежде 
всего,  как  результат  совокупной  деятельности  гуморальных  и  клеточных  факторов, 
обеспечивающих  устойчивость  иммунноструктурного  гомеостаза  внутренней  среды  при 
всевозможных неблагоприятных воздействиях на организм негативных факторов [1, 2]. 
К  числу  первых  относятся  ряд  субстанции,  значительная  роль  среди  которых 
отводится    иммуноглобулинам  сыворотки  крови  животных.  Известно,  что  определение 
количественного    состава  иммуноглобулинов    сыворотки  крови  сельскохозяйственных 
животных  позволяет  выяснить  взаимосвязь  репродуктивной  функции  с  естественной 
резистентностью организма [3, 4, 5]. 
В  настоящее  время  во  всем  мире  уделяется  большое  внимание  направленной 
регуляции обмена веществ организма животных, которая имеет большое теоретическое и 
практическое значение и представляет собой одну из важнейших проблем. Искусственные 
методы стимуляции позволяют мобилизовать резервные силы организма, активизировать 
обмен  веществ  и  на  этой  почве  создают  благоприятные  условия  для  восстановления 
физиологического  состояния  организма,  и  тем  самым,  стимулирует  иммунный  статус 
организма,  повышает  продуктивность,  репродуктивную  функцию,  рост  и  развития 
молодняка в пренатальном и постнатальном онтогенезе. 
К  препаратам  подобного  ряда  относится  овариоцитотоксическая  сыворотка  (ОЦС), 
полученную  по  разработанной  кафедрой  методике.  Следует  отметить,  что  в  последние 
годы  в  производственных  условиях  широко  апробированы  и  внедрены  различного  рода  

369 
цитотоксические  сыворотки  направленного  и  общестимулирующего  действия [6, 7, 8]. 
Цитотоксические  сыворотки-это  сыворотки,  специфичные  к  соотвествующим  клеткам 
организма.  Действующим  специфическим  началом  в  них  является  антиген  (клетка)-
антитело  (цитотоксин).  Степень  этого  эффекта  зависит  от  интенсивности  реакции 
антиген-антитело, которая является основным механизмом эффекта.  
В  связи  с  этим  поиск  и  испытание  препаратов  повышающих  неспецифическую 
резистентность организма является актуальной задачей, особенно, в проблеме повышение 
воспроизводительной функции коров. 
Цель  работы:  Изучить  влияния  стимулирующего  действия  ОЦС  на  динамику 
иммуноглобулинового сыворотки крови коров. 
Материалы и методы исследований   
С 
целью 
изучения 
стимулирующего 
влияния 
ОЦС 
на 
динамику 
иммуноглобулинового  состава  сыворотки  крови  коров  нами  была  проведены  опыты  на 
коровах алатауской породы. При этом коровы подбирались с учетом их общего состояния, 
возраста,  массы  тела  и  содержались  в  одинаковых условиях  содержания  и  кормления.  В 
помещении  систематически  контролировались  параметры  микроклимата.  Коровы  были 
разделены на две группы: опытную и контрольную, в каждой группе находились по пять 
голов. Животным опытной группы была введена стимулирующая доза ОЦС, двухкратно, с 
интервалом  между  введениями 5-7 дней,  а  контрольной  группе  вводилась  нативная 
сыворотка. 
Материалом для исследований служила сыворотка крови. Количественные значения 
исследуемых  показателей  определяли 5 раза  по  следующей  последовательности:  до 
введения  сыворотки  (фоновые  данные)  и    на 7, 14, 21 и 30-ые  сутки  после  введения 
препарата. 
Количественное  содержание  иммуноглобулинов  в  сыворотке  крови  определяли 
методом  дискретного  осаждения  по  Костыну  М.А. [9]. Полученные  цифровые  данные 
обработаны константым методом вариационной статистики. 
Результаты исследований и их обсуждение  
Проведенные нами исследования по изучению влияния стимулирующей дозы ОЦС  
на  иммуноглобулиновый  состав  сыворотки  крови  коров  в  различные  периоды 
репродуктивной функции показали, что препарат оказывает выраженное стимулирующее 
влияние на динамику иммуноглобулинов сыворотки крови.  
Анализ  результатов  исследований  показывает,  что  первоначальные  данные 
иммуноглобулинов  в  обеих  группах  находились  на  одинаковом  уровне.  Изменения  в 
количественном  содержании  иммуноглобулинов  наблюдаются  в  последующие  сроки 
исследования.  Значительные  повышения  концентрации  иммуноглобулинов  отмечены  в 
опытной  группе  животных.  Так,  на 7-день  после  инъекции  ОЦС  концентрация    IgA  по 
сравнению  с  первоначальным  показателем  увеличивается  на 8,8%, на 14-день  достигает 
своего  максимального  значения,  повышаясь  на 16,2%, а  в  последующие  сроки 
исследования  уровень  несколько  понижается,  но  удерживается  на  довольно  высоком 
уровне.  Тенденция  к  нарастанию IgA наблюдается  и  в  контрольной  группе,  но  степень 
повышения  был  незначительным  и  находился  в  пределах 0,64±0,07-0,71±0,04 мг  /мл 
(Р<0,05; Р<0,001 ). 
Подобные  изменения  зарегистрированы  и  со  стороны IgМ.  После  введения 
препарата величина IgМ с 2,44 ± 0,12 мг/мл к 7-дню достигает отметки 2,61± 0,13 мг/мл, а 
максимального уровня достигает на 14-день после введения препарата (2,78±0,18 мг/мл), 
на 21- и 30-дни  количество IgМ  находилось  в  пределах 2,71±0,14-2,74±0,13 мг/мл.  В 
контрольной  группе  уровень IgМ  варьировал  лишь  в  пределах  2,41±0,18- 2,53 ± 0,15 
мг/мл (Р<0,05). 
Более  интенсивные  изменения  в  сторону  увеличения  отмечены  в  отношении IgG. 
Концентрация IgG уже на 7-день после введения препарата по сравнению с началом опыта 
увеличивается    на 4,3%; на 14-день – 15,9%; на 21-день – 13,6%, на 30-день–12,3% 

370 
(Р<0,01;  Р<0,05;  Р<0,001).  В  сравниваемой  контрольной  группе  степень  повышения 
уровня IgG был незначительным и в вышеуказанные сроки составил лишь 0,6; 3.7; и 1,3 % 
соответственно,  а  на 30- день  показатель IgG даже  имел  тенденцию  к  уменьшению  по 
сравнению с фоновым показателем (Р<0,05). 
По сумме всех классов иммуноглобулинов изменения выглядят в следующем: на 7 -
день после введения ОЦС увеличение составило – 4,7 %; на 14-день– 15,3 %; на 21-день – 
13.4 %; на 30-день – 11,9 (Р<0,05).  В  контрольной  группе  показатель  суммы 
иммуноглобулинов находился в пределах с 25,1 ± 1,39 - 26,28 ± 1,37 мг/мл (Р<0,05). 
Изучение соотношения иммуноглобулинов между собой и по отношению к общему 
белку  показало,  что  применение  стимулирующей  дозы  ОЦС  вызывает  определенные 
сдвиги в зависимости от их класса.  
У  опытных  животных  после  обработки  препаратом  доля IgG к  общему  белку 
непрерывно нарастала с момента прихода коров в охоту и после осеменения. Так, если до 
введения препарата  процент к белку был 32,12 %, а в дни охоты и после осеменения он 
достигает отметки до 34,12; 34,27 и 34,90 % соответственно, а в контрольной группе этот 
показатель  особым  изменениям  не  подвергается  и  остается  в  пределах 31,96–32,37%. 
Соотношение IgG к  общей  сумме  иммуноглобулинов  в  контрольной  группе  постоянно 
имело  тенденцию  к  снижению,  то  в  опытной  группе  этот  показатель  повышался,  хотя 
степень повышение был незначительным и находился в пределах 87,63 – 88,07 %. 
Следует отметить, что доля IgМ к общему белку в опытной группе во все периоды 
исследования  постоянно  нарастала  и  достигала  максимального  значения  на 21-30-дни 
после  введения  препарата  и  составила  соответственно 3,73 и 3,81 % против 3,55 % 
исходного уровня (Р<0,05).  Доля IgМ к общему количеству Ig на 7-день после введения 
препарата достигает максимального значения 9,88 против 9,67 % исходного показателя, а 
в последующие сроки снижается и к завершению опыта составила 9,60% к общему классу 
Ig. Аналогичные изменения наблюдаются и в соотношении IgА к общему белку и сумме 
иммуноглобулинов. 
По  отношению  суммы  иммуноглобулинов  к  общему  белку  в  опытной  группе 
животных наблюдается непрерывное нарастание. Наибольшего значения она достигает на 
21-  и 30-ые  дни  после  введения  препарата  и  составляет,  соответственно, 39,06 и 39,7 % 
против 36,67 % исходного показателя (Р<0,05). Данные в контрольной группе практически 
остаются на одном уровне.  
Таким  образом,  обобщая  полученные  данные  следует  отметить,  что  применение 
стимулирующей  дозы  ОЦС    оказывает  благоприятное  влияние  на  показатели 
неспецифической  резистентности  организма  коров.  Повышение  количественного 
содержания  иммуноглобулинов  свидетельствует  о  иммунокоррегирующем  действии 
препарата, которое благоприятно отразилось на  воспроизводительную функцию коров.  
Литература 
1. Шипилов В.С.  Физиологические особенности профилактики бесплодия коров. –
М.: Колос, 1977. – С. 336. 
2. Болиев  Ш.К.,  Шералиева  С.,  Муртазин  Б.Ф.  Профилактика  послеродовых
осложнений    у  коров//  Матариалы  Межд  научно-практич  конф  «Интеграция  науки  и 
практики  в  обеспечении  ветеринарного  благополучия»,  ТОО  КазНИВИ.-  Алматы, 2015.-
С.79-83. 
3. Землянкин В.В. Морфибиохимическая картина крови при сочетании гипофункции
яйчников и хронического эндометрита у коров// Сборник науч. тр. Межд. научно-практич. 
конф. «Актуальные  вопросы  морфологии  и  биотехнологии  в  животноводстве»,  РФ.- 
Кинель, 2015.- с.160-164. 

371 
4. Коба  И.С.,  Новикова  Е.Н.  Клинические  испытания  препарата  «гипролам»  на
коровах до и после отела// Материалы Межд. науч.-практич конф., посвященной 45-летию 
ГНУ ВНИВИПФиТ Россельхозакадемии. 1-2.10.2015. - г.Воронеж.- с. 220-223. 
5.
Джуланов  М.Н.  Коррекция  нарушений  воспроизводительной  функции  при
искусственно приобретенном и симптоматическом бесплодии коров и телок: дис. д-ра вет. 
наук 16.00.07 – Алматы, 2007. – С. 290.  
6. Утянов  А.М.  Физиологическое  обоснование  применения  ОЦС  для  стимуляции
воспроизводительной  функции  коров:  дис.  д-ра  биол.  наук. 03.00.13.  –Алматы, 1996. – 
321с. 
7.
Заманбеков  Н.А.  Коррекция  иммунного  статуса,  продуктивности  и
репродуктивной функции животных с применением цитотоксических сывороток : дис. д-
ра  вет. наук – Алматы, 2007. – 291с. 
8.
Корабаев  Е.М.  Влияние  ОЦС  на  естественную  резистентность  и
воспроизводительную функцию овцематок: Автореф. дис. канд.  вет. наук – Алматы, 2004. 
– 20с.
9. Емельяненко  П.А.,  Грызлова  О.М.,  Денисенко  В.М.  Методические  указания  по
тестированию естественной резистентности телят.- М.,19 

372 
СОДЕРЖАНИЕ 
АГРОИННОВАЦИЯ И ЭКОЛОГИЯ 
Абдураманов Н.А., Хе И.Н.  Состояние и пути совершенствования рисовых 
оросительных систем 
3 
Атақұлов Т., Ержанова К., Айтбаева А., Сұлтан Ə.  Прогрессивті су қорын үнемдейтін 
технологиялардың картоп дақылының өнімділігіне əсері 
7 
Балгабаев А.М., Умбетов А.К., Рамазанова Р.Х., Бакенова Ж.Б., Ошакбаева Ж.О. 
Продуктивность культур в зависимости от средств химизации и биопрепаратов в 
плодосменном севообороте 
10 

жүктеу/скачать 4,57 Mb.

Достарыңызбен бөлісу: