1999 ж. Шыға издается бастады с 1999 г

183 
 
2.
 
Басибеков  Б.С.   Умбетов  А.К.   Сайтбеков  Ж.С.  Рекомендации  по  удобрению 
озимой пшеницы на юге и юго-востоке Казахстана. – Алма-Ата: «Кайнар», 1975. – 19 c. 
3.
 
Панникова В.Д., Минеев В.Г. Почва, климат, удобрение и урожай. – М.: Колос, 
1977. – 
413 с.  
4.
 
Койшыбаев М. Болезни зерновых культур. – Алматы: Бастау, 2002. – 368 с. 
5.
 
Приказ и.о. Министра сельского хозяйства Республики Казахстан от 13 мая 2011 
года  №  06-2/254
. 
Об  утверждении  Методики  проведения  сортоиспытания 
сельскохозяйственных растений. http://online.zakon.kz/ Document/?doc_id= 31016934 
6.
 
Рекомендация КазНИИЗиР. Озимая пшеница, – Алматы,  2006. – 55 с. 
7.
 
Zadoks J.C., Chang T.T., Konzak C.F. A decimal code for the growth stages of cereals 
// Weed Research. – 1974. – 14. – P. 415-421. 
8.
 
Доспехов Б.А. Методика полевого опыта (с основами статистической обработки 
результатов исследований). – 5-е изд., доп. и перераб. – М.: Агропромиздат, 1985. – 351 с. 
9.
 
Чумаков А.Е., Фадеев Ю.Н. Инфекционные фоны в фитопатологии. – М.: Колос, 
1979. – 
206 с. 
10.
 
McIntosh R.A., Wellings C.R., Park R.F. Wheat Rusts: An atlas of Resistance Genes. 
Australia: CSIRO, 1995. – P.80.  
11.
 
Peterson R.F., Campbell A.B., Hannah A.E. A diagrammatic scale for estimating rust 
intensity on leaves and stems of cereals // Canad. J. Res. – 1948. – Vol. 26 – P. 496-500.  
 
Сапахова З.Б., Кохметова А.М., Елешев Р.Е., Моргунов А.И., Ғалымбек К. 
 
ТЫҢАЙТҚЫШТАР МЕН ФУНГИЦИДТЕРДІ КЕШЕНДІ ҚОЛДАНУДЫҢ КҮЗДІК 
БИДАЙДЫҢ ӨНІМДІЛІК ЭЛЕМЕНТТЕРІ МЕН ӨНІМДІЛІГІНЕ ӘСЕРІ 
 
Дән  шаруашылығында  минералды  тыңайтқыштар  мен  өсімдік  қорғау  заттарын 
қолданбай жоғары өнім алу мүмкін емес. Бұл мақалада күздік бидай үлгілерінің өнімділік 
элементтері  мен  өнімділігіне  тыңайтқыштар  мен  фунгицидтердің  әсері  зерттелген. 
Тыңайтқышты  фунгицидпен  бірге  қолдану  сабақ  санын  (17,1-41,7%),  өсімдіктегі  дән 
санын  (19-27,8%)  және  масақтағы  дән  санын  (7,7-14,3%)  арттырды.  Минеральды 
тыңайтқыштар  мен  фунгицидтерді  кешенді  қолдану  өнімділіктің  50%-ға  дейін  артуына 
ықпал етті. Тыңайтқыш қолданғанда өнімділік 30%-ға дейін, ал фунгицидтердің әсерінен 
14,6%-
ға дейін артты. Максималды өнімділік L372 линиясында (75,0 ц/га) тыңайтқыш пен 
Альто Супер фунгицидін қолданғанда қалыптасты.  
Кілт сөздер: бидай, тыңайтқыш, фунгицид, қоңыр тат, өнімділік, өнімділік 
элементтері. 
 
Z.B. Sapakhova, А.M. Kokhmetova, R.E. Yeleshev, A.I. Morgounov, K. Galymbek 
 
INFLUENCE COMPLEX APPLICATION OF FERTILIZERS AND FUNGICIDES ON 
ELEMENTS OF PRODUCTIVITY AND THE FORMATION YIELD OF WINTER WHEAT 
 
In grain production is impossible to obtain a high yield without using of fertilizers and 
plant protection products. In this studied effect of complex using of fertilizers and fungicides on 
the elements of productivity and grain yield. Application of fertilizers in combination with 
fungicides increased productive tillers (17,1-41,7%), grain weight per plant (19-27,8%) and 
number of grains  (7,7-14,3%). Integrated using of fertilizers and fungicides increased yield of 
wheat up to 50%. Only fertilizers increased grain yield up to 30%; treatment by fungicides 
increased up to 14.6%. The maximum grain yield was formed in line L372 (7500,0 kg/ha) in the 
variant of treatment Alto Super and fertilizers application. 
Keywords: wheat, fertilizer, fungicide, leaf rust, productivity, elements of productivity. 

184 
 
УДК: 632.42: 631.8:633.11:577.21 
 
1
З.Б. Сапахова, 
1,2
А.М. Кохметова, 
3
А.И.,Моргунов, 
1
Р.Е. Елешев  
 
1
Казахский Национальный Аграрный университет, Алматы 
2
Институт биологии и биотехнологии растений, Алматы 
3
CIMMYT, 
P.K. 39 Emek, 06511, Анкара, Турция 
 
ИДЕНТИФИКАЦИЯ НОСИТЕЛЕЙ ГЕНОВ УСТОЙЧИВОСТИ К БУРОЙ 
РЖАВЧИНЕ НА ОСНОВЕ МОЛЕКУЛЯРНОГО СКРИНИНГА ОБРАЗЦОВ ПШЕНИЦЫ 
 
Аннотация  
Бурая  ржавчина  является  опасным  заболеваниям  пшеницы.  В  настоящем 
исследовании  внимание  было  обращено  на  часть  эффективных  генов  устойчивости  к 
бурой  ржавчине  –  Lr9,  Lr10,  Lr22а,  Lr24,  Lr29,  Lr32,  Lr68  а  также  комплекс  генов 
Lr19/Sr25,  Lr26/Sr31/Yr9/Pm8,  Lr37/Yr17/Sr31,  Lr35/Sr
39  и  Lr34/Yr18.  В  результате 
молекулярного  скрининга  установлено,  что  линия  L286  является  носителем  пяти 
эффективных Lr-генов (Lr22a, Lr29, Lr34, Lr35, Lr68), включающие APR-гены возрастной 
устойчивости (Lr22a, Lr34 и Lr68), а у линии L372 идентифицировано 4 гена (Lr24, Lr29, 
Lr35, Lr37
) и у сорта Жетысу идентифицирован 1 Lr-ген (Lr22a). Полученные результаты 
используются в Казахстане для создания устойчивых к бурой ржавчине сортов пшеницы с 
применением MAS-селекции. 
Ключевые  слова:  пшеница,  бурая  ржавчина,  гены  устойчивости,  Lr-гены, 
молекулярные маркеры. 
 
Введение  Основным  критерием  высокого  уровня  продовольственной  безопасности 
является  устойчивое  воспроизводство  зерна,  масла  и  других  сельскохозяйственных 
продуктов.  Регион  Центральной  Азии  является  одним  из  важнейших  мировых 
производителей  пшеницы,  которая  выращивается  на  площади  15  млн.  га.    На  этой 
территории  в  последние  годы  получила  распространение  бурая  ржавчина  пшеницы 
Puccinia recondita f. sp. tritici, 
которая наносит серьезный экономический ущерб, снижая и 
качество  зерна.  В  связи  с  этим,  одной  из  главных задач  агропромышленного  комплекса 
Казахстана  является  повышение  урожайности  и  качества  стратегически  важных 
сельскохозяйственных культур.  Использование  генетически  устойчивых  сортов  является 
наиболее  эффективным,  экономически  и  экологически  надежным  методом  контроля 
болезней, позволяющим снизить или элиминировать применение фунгицидов и свести к 
минимуму потери урожая от ржавчины [1].  
В  научной  литературе  имеется    обширная  информация  о  генах  устойчивости 
пшеницы    к    возбудителю    бурой    ржавчины.  К  настоящему  времени  в  каталоге  генов 
пшеницы  имеется  информация  о  68  Lr-генах  [2].  Однако  одной  из  основных  проблем 
недолгой  эффективности  большинства  Lr-генов  является  появление  вирулентных  рас 
патогена,  которые  способны  преодолеть  устойчивость.  Вследствие  этого  многие  из 
известных Lr-генов устойчивости становятся неэффективными [3]. 
В каталоге 36  Lr-генов интрогрессированы в вид Triticum aestivum от других видов 
злаков. Ген Lr9 перенесен Sears в мягкую пшеницу от Aegilops umbelulata в 1961 г. [4]. Ген 
Lr9 
локализован  в  хромосоме  6В  и  имеется  у  сортов  Transfer,  Abe,  Arthur  71,  Riley  67, 
Oasis. В Казахстане в популяции возбудителя бурой  ржавчины  вирулентность  к этому 
гену отсутствует или  встречается очень редко. Агрессивных к нему рас и биотипов нет, 
ген высокоэффективен [3]. Ген Lr10 изолирован у гексаплоидной пшеницы и расположен 
на  хромосоме  1AS.  Он  кодирует  белок  типа  CC-NBS-LRR  с  N-терминал  доменом.  При 

185 
 
экспрессии  в  трансгенных  растениях  пшеницы,  Lr10  обеспечивает  повышенную 
устойчивость к бурой ржавчине. Lr10 имеет сходство с RPM1 в Arabidopsis thaliana и и 
устойчив  к  генам  аналогам  в  рисе  и  ячмене,  но  не  тесно  связаны  с  другими  Lr-генами 
пшеницы  [5].  Источником  генов  Lr19,  Lr24,  Lr29  явился  пырей  Agropyron  elongatum 
(Thinopyrom  elongatum)
.  Очень  редко  появляющиеся  вирулентные  патотипы  пока 
агрессивностью не обладают и угрозы для носителей этого гена не представляют [6,7,8]. 
Ген устойчивости Lr22a интрогрессирован от Aegilops tauschii на 2DS хромосому мягкой 
пшеницы. Ген Lr22a обеспечивает возрастную устойчивость (APR) к бурой ржавчине [9]. 
Источником  гена  Lr26  является  рожь  Secale cereale  [10].  Ген  Lr26  интрогрессирован  в 
хромосому  1B.  Ген  Lr32  трансформирован  от  Aegilops  tauschii  на  3DS  хромосому 
гексаплоидной  пшеницы,  что  обеспечивает  устойчивость  к  бурой  ржавчине  на  уровне 
проростков [11]. Небольшая группа генов устойчивости к бурой ржавчине, такие как Lr34 
и  Lr46,  известна  как  «slow  rusting  genes»  [12].  Они  обеспечивают  длительную  и 
неспецифическую устойчивость взрослых растений, но их эффект более ограничен, чем у 
расаспецифических генов. Наблюдался плейотропный эффект между Lr46 и Yr29, также 
«slow  rusting  gene
»  к  желтой  ржавчине.  Ген  Lr34  расположен  на  коротком  плече 
хромосомы 7D, недалеко от локуса Xgwm295. Lr34 тесно связан с локусом некроза листья 
(LTN),  также  возможно,  что  фенотип  LTN  может    иметь  плейотропный  эффект  самого 
Lr34 
[12].  Ген  Lr35  происходит  от  Aegilops speltoides.  Ген  Lr35  интрогрессирован  2B 
хромосому  пшеницы.  Lr35  был  переведен  в  гексаплоидную  пшеницу  сорта  Marquis  от 
Aegilops speltoides
.  Ген  расположен  на  сегменте  2S  хромосом  А.  speltoides  и 
транслоциривался  к  2В  хромосомы  пшеницы.  Транслоцируемый  сегмент  является 
носителем гена против стеблевой ржавчины Sr39 и adult-plant гиперчувствительный геном 
устойчивости  к  бурой  ржавчине  Lr35  [13].  Источником  гена  Lr37  является  Aegilops 
ventricosa
. Этот ген идентифицирован Барианой и Макинтошем в 1991 г. и локализован в 
2AS 
хромосоме.  Носители  этого  гена  поражаются  в  ювенильной  фазе  растений,  но 
проявляют  возрастную  устойчивость.  Длинный  хромосомный  фрагмент  (25-38  сМ), 
содержащий  три  гена  устойчивости  к  ржавчине  был  транслоцирован  между  короткими 
плечами 2NS хромосомы от Triticum ventricosum в 2AS хромосомы мягкой пшеницы. Этот 
сегмент  включает  три  гена  устойчивости  к  болезням:  Lr37, Yr17  и  Sr38  устойчивости  к 
бурой,  желтой  и  стеблевой  ржавчине,  соответственно.  Фрагмент  2NS  впервые 
интрогрессирован  у  сорта  пшеницы  VPM1,  а  затем  он  был  переведен  в  другие 
коммерческие  сорта,  как  Madsen  и  Thatcher  [14].  Группа  ученых  из  СИММИТ  в  сорте 
пшеницы 
Parula 
идентифицировали 
APR-ген 
Lr
68 
у 
Parula(FKN/3/2*Frontana
//Кения350AD. 9C.2/Gabo55 /4/Bluebird/Chanate), 
и 
он 
локализован  на  длинном  плече  хромосомы  7B.  Ранее  был  назван  как  LrP.  Выявлены 
молекулярные  маркеры,  фланкирующие  ген  Lr68,  которые  могут  быть  использованы  в 
маркерной  селекции.  Сорт  Parula  создан  учеными  CIMMYT  в  1981  году,  который 
объединяет также  APR-генов устойчивости как Lr34 и Lr46. Возможно, происхождение 
Lr68 
гена является бразильский сорт Frontana [15].  
Однако  на  большое  количество  идентифицированных  Lr-генов  одной  из  основных 
проблем  их  недолгой  эффективности  является  появление  вирулентных  рас  патогена, 
которые способны преодолеть устойчивость. Вследствие этого многие из известных генов 
устойчивости  становятся  неэффективными.  Особая  опасность  бурой  ржавчины 
обусловлена способностью патогена к мутации и быстрой смене генераций, что ускоряет 
расообразовательный  процесс  [16].  Тем  не  менее,  четыре  гена  устойчивости,  Lr34/Yr18, 
Lr46/Yr29,  Sr2/Yr30,  Lr68 
и  Lr67/Yr46,  обеспечивают  частичную,  но  длительную 
устойчивость  [17].  Эти  гены  способствуют  замедленному  типу  развития  ржавчины  и 
являются  эффективными  ко  всем  расам  патогена.  Дополнительное  действие  этого  типа 
гена приводит к повышению устойчивости до уровня иммунности. Поэтому необходимо 

186 
 
продолжать поиск источников новых доноров устойчивости к бурой ржавчине пшеницы. 
  
Поэтому  необходим  поиск  источников  новых  генов  устойчивости  к  ржавчине 
пшеницы. Для того чтобы с большей надежностью контролировать болезнеустойчивость, 
очень  важно  иметь  в  распоряжении  молекулярные  маркеры,  сопряженные  с  этим 
признаком. В настоящем исследовании внимание было обращено на часть эффективных 
генов устойчивости к бурой ржавчине – Lr9, Lr10, Lr22а, Lr24, Lr29, Lr32, Lr68 а также 
комплекс  генов  Lr19/Sr25,  Lr26/Sr31/Yr9/Pm8,  Lr37/Yr17/Sr31,  Lr35/Sr39  и  Lr34/Yr18, 
которые идентифицировали в процессе молекулярного скрининга гермоплазмы пшеницы.  
Материалы и методы  
Материалами  исследований  являются  сорта  и  перспективные  линии  мягкой  озимой 
пшеницы;  Жетысу,  L286  Алмалы/Обрий,  L372  Алматинская  полукарликовая  /Прогресс. 
Анализ  устойчивости  образцов  пшеницы  к  видам  ржавчины  проводили  на  полевом 
стационаре  Казахского  НИИ  земледелия  и  растениеводства.  Оценку  развития  болезни 
желтой и бурой ржавчиной проводили в фазу молочно-восковой спелости по принятой в 
CIMMYT 
методике, определяя инфекционный тип (в баллах) и степень поражения (%) [18] 
Коллекции образцов пшеницы высевали во всех фитопатологических опытах на делянках 
площадью  1  м
2
 
в  трехкратной  повторности.  Выделение  геномной  ДНК  из  растительного 
материала  осуществлено  из  проростков  пшеницы  на  основе  CTAB  метода  выделения 
геномной  ДНК,  с  использованием  5–дневных  проростков  по  методике  C.R.Riede, 
J.A.Anderson, [19]. Для идентификации носителей генов устойчивости использован метод 
полимеразной цепной реакции (ПЦР) в соответствии с протоколом X.M.Chen et al. [20]. В 
качестве  положительного  контроля  при  идентификации  генов  использованы  образцы 
пшеницы, в которых гены устойчивости идентифицированы, а в качестве отрицательного 
контроля – ddH
2
O 
или образцы, в которых гены устойчивости не выявлены. Амплификация 
проведена в амплификаторе Mastercycler (Eppendorf, Германия), программы амплификации 
выбраны  в  зависимости  от  идентифицируемого  Lr–гена  устойчивости  (Таблица  1–2). 
Объем реакционной смеси для ПЦР составлял 10 мкл и содержал 1,0 мкл 10× буфер, 1,0 
мкл 2,5 mM dNTP, 0,2 мкл 10 микромоль каждого праймера, 0,2мкл 5 Unit Taq-полимеразы, 
6,4 мкл MQ-H
2
O, 1 мкл 20 нг/мкл ДНК. Для выявления носителей генов устойчивости Lr9, 
Lr10, Lr19/Sr25, Lr22a, Lr24, Lr26, Lr29, Lr32, Lr34/Yr18, Lr35/Sr39, Lr37/Yr17/Sr38, Lr68 
использованы  SSR,  STS,  SCAR,  CAPS  маркеры  J13, F1.2245Lr10-6/r2, GbF/R, WMS296, 
J91/2, 
iag95, 
Lr29F/R18, Xbarc135, csLV34, Sr39#50, 
VENTRIUP/LN2, csGS, 
соответственно.  Для  разделения  фрагментов  амплифицированной  ДНК  электрофорез 
осуществляли в 2 %-м агарозном или 8 % полиакриламидном геле (ПААГ) в ТВЕ-буфере 
(45 мМ трис-борат, 1мМ EDTA, pH-8) [20].  
 
 

187
 
 
 
 
Таб
ли
ца 
1
 –
 И
ст
оч
ни
ки
 ге
на
, л
ок
ал
из
ац
ия в
 х
ром
ос
ом
е и
 п
ос
ле
дов
ат
ел
ьн
ос
ть
 п
ра
йм
еров
 к
 Lr
-г
ен
ам
 у
ст
ой
чи
во
ст
и 
 
Lr
-
ген
s 
И
ст
оч
ник
и 
ген
а 
Н
аз
ван
ие 
мар
кер
а 
Тип 
мар
кер
а 
Лок
ализ
ация
 
П
осл
ед
ов
ат
ел
ьн
ост
ь 
Л
ит
ер
ат
ур
а 
L
r9
 
A
egi
lops
 
um
be
ll
ul
at
a
 
J13
 
S
TS
 
6В
 
5'
- 
TC
C
 TTT TA
T 
TC
C
 G
C
A
 C
GC
 C
GG 
-3’
 
5'
- 
C
C
A C
AC
 T
AC
 C
C
C
 AAA GAG 
AC
G 
-3’
 
S
ch
ach
er
m
a
y
r G
. 
et
 al
. 
1994 
[4]
 
L
r10
 
T
ritic
u
m
 
a
es
ti
vu
m
 
F
1.2245
L
r10
-
6
/r2
 
S
TS
 
1
AS
 
5'
- 
GT
G T
AA T
GC
 AT
G
 C
AG GT
T
 C
C
  
-3’
 
5'
- 
AGG T
GT
 GAG T
G
A GT
T
 AT
G T
T
 -
3’
 
F
eu
ille
t C
.,
 2003
 [
5]
 
L
r19
 
A
gr
opy
ron 
el
ongat
um
 
Gb
 
S
TS
 
7E
L
 
5'
- 
5'
- 
CA
T
 CCT
 T
G
G
 G
G
A
 CCT
 C 
-3’
 
5'
- 
CCA
 G
CT
 CG
C A
T
A
 CA
T
 CCA
 -
3
’ 
 
P
ri
ns
 R
. e
t a
l. 2001 
[6]
 
L
r22a
 
A
egi
lops
 
taus
chi
i 
 
W
M
S
296
 
 
SSR
 
2
DS
 
5'
- 
AAT
 T
C
A AC
C
 T
AC
 C
AA T
C
T
 C
T
G 
–
3'
 
5'
- 
GC
C
 T
AA T
AA AC
T
 GAA AAC
 GAG 
–
3'
 
H
ieb
er
t C
.W
. e
t a
l., 
2007 
[9
] 
L
r24
 
A
gr
opy
ron 
el
ongat
um
- 
J9
 
S
TS
 
3D
L
 
5'
- 
T
C
T
 A
GT
 C
T
G T
AC
 AT
G GGG GC
 -
3’
 
5'
- 
T
GG C
AC
 AT
G AA
C
 T
C
C
 AT
A C
G
 -
3’
 
S
ch
ach
er
m
a
y
r G
. 
et
 al
. 
1995 
[7]
 
L
r26
 
S
eca
le c
er
ea
le
 
iag
95
 
S
C
AR
 
1B
 
5'
- 
C
T
C
 T
GT
 G
GA T
AG
 T
T
A C
T
T
 GAT
 C
GA 
-3’
 
5'
- 
C
C
T
 AGA 
AC
A T
G
C
 AT
G GC
T
 GT
T
 AC
A
 -
3’
 
M
ago
 R
. 
et
 al
. 
2002
 
[1
0
] 
L
r29
 
A
gr
opy
ron 
el
ongat
um
  
L
r29F
/R
18
  
S
C
AR
 
7
DS
 
5'
- 
GT
G AC
C
 T
C
A GG
C
 AAT
 GC
A 
-3
'  
5'
- 
GT
G AC
C
 T
C
A GA
A C
C
G AT
G 
-3'
 
P
roc
uni
er
 J
. 
et
 al
, 
1995
 [
8
] 
L
r32
 
A
egi
lops
 t
aus
chi
i
 
X
b
ar
c135
 
SSR
 
3
DS
 
 
5'
- 
A
T
C G
CC A
T
C T
CC
 T
CT
 A
CC A
 -
3'
 
5'
- 
GC
G AAC
 C
C
A T
G
T
 GC
T
 AAG T
 -
3'
 
T
hom
as
 J
. e
t a
l.,  2010
 
[11]
 
Lr
34
 
T
ritic
u
m
 
a
es
ti
vu
m
 
cs
LV
3
4
 
S
TS
 
7D
S
 
5'
- 
GT
T
 GGT
 T
AA GAC
 T
GG T
GA T
G
G 
-3
'  
5'
- 
T
GC
 T
T
G C
T
A T
T
G 
C
T
G AAT
 AGT
 -
3
'  
L
a
g
ud
ah E
. e
t 
al
, 2006 
[1
2
] 
L
r35
 
A
egi
lops
 
spe
lt
oi
de
s 
 
Sr
39#
50
 
S
TS
 
2В
 
5'
- 
T
AG C
AA GG
A C
C
A AGC
 AAT
 C
T
T
 -
3'
 
5'
- 
C
C
A AT
G 
AGG A
G
A T
C
A AAA C
AA C
C
 -
3'
 
M
ago
 R
. 
et
 a
l., 2009
 
[1
3
] 
L
r37
 
T
ritic
u
m
 
ven
tr
ico
su
m
 
VE
NT
R
IUP
/ 
LN
2
  
C
AP
S
 
2
AS
  
5'
- 
AGG GGC
 T
AC
 T
G
A C
C
A AGG C
T
 -
3'
 
5'
- 
T
GC
 AGC
 T
AC
 AG
C
 AGT
 AT
G T
AC
 AC
A 
AAA 
-3'
 
H
el
g
u
er
a 
M.
 et
 al
., 
2003 
[14
] 
L
r68
 
T
ritic
u
m
 
a
es
ti
vu
m
 
cs
G
S
 
S
TS
  
7B
L
 
5'
- 
AAG AT
T
 GT
T
 C
AC
 AGA T
C
C
 AT
G T
C
A 
-3'
 
5'
- 
GAG T
AT
 T
C
C
 GGC
 T
C
A AAA AGG 
-3'
 
H
er
rer
a
-F
o
es
sel
 S
.A
. 
et
 a
l., 2012 
[1
5
] 

188 
 
Таблица  2  –  Протоколы  для  проведения  полимеразной  цепной  реакции  с 
использованием праймеров к соответствующим Lr-генам устойчивости 
 
Праймер 
Начальная 
денатурация 
(
°
С, мин) 
Количес-
тво 
циклов 
 
Денату-
рация 
(
°
С, сек) 
Отжиг 
(
°
С, сек) 
Экстенция 
(
°
С, сек) 
Последняя 
экстренция 
(
°
С, мин) 
J13 
94 (5) 
35 
94 (60) 
58 (60) 
72 (120) 
72 (5) 
F1.2245Lr10
-6/r2 
94 (3) 
35 
94 (45) 
60 (45) 
72 (30) 
72 (3) 
Gb 
94 (4) 
40 
92 (30) 
60 (30) 
72 (60) 
72 (5) 
WMS296 
94 (2) 
30 
94 (60) 
55 (60) 
73(50) 
73 (5) 
J9 
94 (4) 
40 
92 (60) 
60 (60) 
72 (120) 
72 (5) 
SCM9 
95 (3) 
30 
94 (45) 
60 (60) 
72 (90) 
72 (5) 
Lr29F/R18 
94 (3) 
35 
94 (60) 
60 (60) 
72 (60) 
72 (10) 
Xbarc135 
94 (2) 
30 
95 (60) 
51 (50) 
73 (60) 
73 (5) 
csLV34 
94 (10) 
30 
94 (30) 
60 (30) 
72 (30) 
72 (7) 
Sr39#50 
95 (10) 
7 
94 (30) 
65 (30) 
72 (40) 
 
35 
94 (30) 
58 (30) 
72 (40) 
20 (60) 
VENTRIUP/ 
LN2 
94 (4) 
35 
94 (45) 
65 (30) 
72 (60) 
72 (10) 
csGS 
93 (1) 
30 
93 (30) 
60 (60) 
72 (60) 
72 (5) 
 

жүктеу/скачать 5,87 Mb.

Достарыңызбен бөлісу: