ҚАЗАҚСТАННЫҢ АӨК ИННОВАЦИЯЛЫҚ ДАМУЫ: АУЫЛШАРУАШЫЛЫҚ, ВЕТЕРИНАРЛЫҚ ЖӘНЕ

ҚАЗАҚСТАННЫҢ АӨК ИННОВАЦИЯЛЫҚ ДАМУЫ: АУЫЛШАРУАШЫЛЫҚ, ВЕТЕРИНАРЛЫҚ ЖӘНЕ 
ТЕХНИКАЛЫҚ ҒЫЛЫМДАРДЫҢ ДАМУ ТЕНДЕНЦИЯЛАРЫ 
ИННОВАЦИОННОЕ РАЗВИТИЕ АПК КАЗАХСТАНА: ТЕНДЕНЦИИ РАЗВИТИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ, 
ВЕТЕРИНАРНЫХ И ТЕХНИЧЕСКИХ НАУК 
 
243 
 
Таблица 1. Результаты тестирования конъюгатов эстрадиола 17В в ИФА 
                            Способ 
Носитель 
1 
2 
OVA 
1:6400-1:12800 
1:12800 
BSA 
1:12800 
1:12800 – 1:25600 
   
Тестирование конъюгатов тренболон ацетата с носителями BSA, OVA, KLH, THY с специфиче-
ской  сывороткой  к  тренболону  показало,  что  наибольшей  высокой  активностью  обладает  конъюгат 
TR-THY  с  титром  1:25600  –  1:51200,  в  РИД  1:6  (таблица  2).  Приготовления  конъюгатов  тренболона 
ацетата  с  носителями  OVA,  KLH,  THY  проводилось  с  использованием  одной  методики.  Высокая  ак-
тивность конъюгата тренболона ацетата с тиреоглобулином возможно связана с его высокой молеку-
лярной массой относительно других белков носителей и составляет 660кДа. 
 
Таблица 2. Результаты тестирования конъюгатов тренболона ацетата 
                          Носитель 
Метод 
BSA 
OVA 
KLH 
THY 
ИФА 
1:6400-1:12800 
1:12800-1:25600 
1:25600 
1:25600-1:51200 
РИД 
1:4 
1:4-1:6 
1:6 
1:6 
 
Инъекции  препаратов  конъюгатов  осуществлялись  по  схемам  использованным  для  иммуниза-
ции коммерческим конъюгатом. 
 
Заключение 
Тестирование  препаратов  конъюгатов  против  сыворотки  положительного  контроля  показало, 
что наиболее высокой активностью при сшивании  обладает конъюгат эстрадиол – BSA, полученный 
по методике 2. Мы считаем, что этому способствовала разница в длительности конъюгации,   предва-
рительная подготовка гаптена эстрадиола и большая молекулярная масса BSA относительно OVA. 
Использование единой методики для получения конъюгатов тренболона ацетата с носителями 
OVA,  KLH,  THY  показало,  что  наибольшую  иммуногенную  активность  с  антителами  иммунной  сыво-
ротки проявляет конъюгат с носителем THY, который способствует более сильной активации иммуно-
генных свойств гаптена, благодаря высокой молекулярной массе. 
 
Литература: 
1 Егоров, А. П. Теория и практика иммуноферментного анализа / А.М. Егоров, А.П. Осипов, Б.Б. 
Дзантиев, Е.М . Гаврилова // Учебное издание – М.: Высш. шк., 1991. 
2 Петров, Р.В. Иммуногены и вакцины нового поколения / Р.В. Петров, Р.М. Хаитов // – М.: ГЭО-
ТАР – медиа, 2011 
3 Карпищенко, А.И. Медицинские лабораторные технологии / А.И. Карпищенко // Руководство по 
клинической лабораторной диагностике  – М.: ГЭОТАР – медиа, 2012 
4 Иммуноферментный анализ / Под ред. Г.Г. Нго, Г.М. Ленкофф. – М.: Мир, 1988 
5 Иммунологические методы / Под ред. Г. Фримеля. -  М.: Медицина,1987 
6 Новые методы иммуноанализа / Под ред. У. Коллинза. - М.: Мир, 1991 
7 Антитела. Методы. В 2-х кн. / Под ред. Д. Кэтти. – М.: Мир, 1991 
8 ELISA: Theory and practice / Ed. by John R. Crowther. – Humana Press Inc., 1991 
9     Antibodies. A Laboratory Manual / Ed. by  E. Harlow, D. Lane. – Cold Spring Harbor Laboratory., 
1991 
10 
Whatson R.A., London J., Shaw E.G., Smith D.S. ClinChimActa 1976; 73: 51-55 
11 
Jolley M.E., Stroupe S.D., Schwenger R.S. ClinChem 1981; 27: 1190-1197. 
 
 
 
 
           
 
 
 
 

ҚАЗАҚСТАННЫҢ АӨК ИННОВАЦИЯЛЫҚ ДАМУЫ: АУЫЛШАРУАШЫЛЫҚ, ВЕТЕРИНАРЛЫҚ ЖӘНЕ 
ТЕХНИКАЛЫҚ ҒЫЛЫМДАРДЫҢ ДАМУ ТЕНДЕНЦИЯЛАРЫ 
ИННОВАЦИОННОЕ РАЗВИТИЕ АПК КАЗАХСТАНА: ТЕНДЕНЦИИ РАЗВИТИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ, 
ВЕТЕРИНАРНЫХ И ТЕХНИЧЕСКИХ НАУК 
 
244 
 
 УДК 619:616.12-073.7:636.2 
 
ПРИМЕНЕНИЕ АНАЛЬГЕЗИРУЮЩЕГО ПРЕПАРАТА У СВИНЕЙ  
ПРИ БОЛЯХ РАЗЛИЧНОЙ ЭТИОЛОГИИ 
 
Утетлеуова Д.А. – магистрант 1 курса ветеринарной медицины Костанайского государст-
венного университета им. А. Байтурсынова 
Жабыкпаева А.Г. -  магистр ветеринарных наук Костанайского государственного универси-
тета им. А. Байтурсынова 
Рыщанова  Р.М.  -  кандидат  ветеринарных  наук,  доцент  кафедры  ветеринарной  медицины 
Костанайского государственного университета им. А. Байтурсынова, доктор PhD 
Кулакова  Л.С.  -  кандидат  ветеринарных  наук,  доцент  кафедры  ветеринарной  медицины 
Костанайского государственного университета им. А. Байтурсынова 
 
В  статье  рассмотриваются  фармакологические  эффекты  анальгезирующего  препарата  - 
лидокаина поросятам при кастрации с введением различных концентраций и доз.  
Ключевые слова: анальгетическое действие, лидокаин, поросята, кастрация, дозы введения. 
 
Болевое ощущение - сигнал к функциональной перестройке организма от состояния покоя к со-
стоянию  активной  деятельности,  направленной  на  устранение  фактора,  вызвавшего  боль.  Пере-
стройка касается абсолютно всех систем и органов. Нет ни одной структуры в живот организме, кото-
рая не изменила бы свою функцию под влиянием боли. 
В начале болевого раздражения возбуждается центральная и симпатическая нервная система, 
усиливается работа сердца, учащается дыхание и ускоряется метаболизм вещества. Это своеобраз-
ная защитная реакция на борьбу с болевым процессом. Но болевой раздражитель может быть очень 
сильным,  тогда  наступает  перевозбуждение  центральной  и  симпатической  нервной  системы,  приво-
дящее в дальнейшем к их угнетению [1]. 
Актуальностью  темы  является  то,  что  изменение  отношения  к  болезненным  процедурам, 
наносимых  животным  стало  толчком  для  разработки  более  эффективных  и  инновационных 
ветеринарных  препаратов,  и  выяснения,  вероятного  источника  боли  у  животных.  Ветеринарная 
фармакология  имеет  незначительный  арсенал  болеутоляющих  средств,  однако  препараты, 
используемые  как  анальгетики  для  лечения  людей,  все  чаще  исследуется  для  применения  в 
ветеринарии в целях решения этого дефицита [2, 3]. 
Мотивацией выбора лидокаина как обезболивающего средства, явилось то, что данный препа-
рат  хорошо  зарекомендовал  себя  в медицинской  практике  и  при  использовании  на  не  продуктивных 
видах животных, а также его экономической доступностью. 
Цель  работы  является  изучение  местного  анестезирующего  действия  лидокаина  у  поросят 
при кастрации. 
Задачи: 
-  Изучить анальгетический эффект различной концентрации и доз лидокаина; 
-  определить гематологические изменения  у поросят при нанесении боли и обезболивании  
Материалы и методы исследований 
Исследования  выполнялись  в  рамках  научного  проекта  «Изучение  реальных  и  потенциальных 
источников боли у различных видов животных и разработка стратегии применения анальгезирующих 
препаратов»  государственного  заказа  по  бюджетной  программе  055  «Научная  и/или  научно-
техническая деятельность». Исследовательская работа проводилась на базе лабораторий ИНОЦ КГУ 
им. А. Байтурсынова и ТОО «Ак Кайын К» село Павловское Карасуского района Костанайской облас-
ти.  
Для проведения исследований были сформированы, по принципу аналогов, группы поросят 2-4 
месячного  возраста  по  7  голов  в  каждой  группе  из  них  четыре  опытные  и  одна  группа  контрольная. 
Всем опытным группам поросят применяли непрямую инфильтрационную анестезию, препараты вво-
дили непосредственно в мошонку. Таблица 1. 
 
 Талица 1. Схема опыта   
Группы 
Кол-во 
животных 
Лидокаин 
Доза, 
мл 
Концентрация, 
% 
контрольная 
7 
- 
- 
1- 
опытная   7 
1,0
 
1% 

ҚАЗАҚСТАННЫҢ АӨК ИННОВАЦИЯЛЫҚ ДАМУЫ: АУЫЛШАРУАШЫЛЫҚ, ВЕТЕРИНАРЛЫҚ ЖӘНЕ 
ТЕХНИКАЛЫҚ ҒЫЛЫМДАРДЫҢ ДАМУ ТЕНДЕНЦИЯЛАРЫ 
ИННОВАЦИОННОЕ РАЗВИТИЕ АПК КАЗАХСТАНА: ТЕНДЕНЦИИ РАЗВИТИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ, 
ВЕТЕРИНАРНЫХ И ТЕХНИЧЕСКИХ НАУК 
 
245 
 
2- 
опытная   7 
1,4 
1% 
3- 
опытная   7 
1,0
 
2% 
4- 
опытная   7 
1,4 
2% 
 
Первой и второй опытным группам поросят для местной анестезии вводили 1%-ный лидокаин в 
дозе 1,0 мл и 1,4 мл, соответственно. Опытным поросятам третьей и четвёртой групп применяли ли-
докаин 2 %-ной концентрации в дозах 1,0 мл и 1,4 мл, соответственно. Для удлинения действия мест-
ного анестетика и уменьшения кровотечения с места разреза, поросятам всех опытных групп, вводи-
ли 0,18% раствор адреналина в дозе 0,2 мл на голову. Контрольной группе поросят анальгетическое 
средство не применялось [6]. 
Для оценки боли были проведены клинические исследования физиологического состояния жи-
вотных:  имеренения  температуры  тела,  частоты  дыхания,  определения  артериального  давления,  а 
также  гематологическия  исследования  крови,  которые  включали  определение  количества  эритроци-
тов,  лейкоцитов,  гемоглобина,  СОЭ  и  выведение  лейкоцитарной  формулы  с  использованием  обще-
принятых методик в ветеринарии. 
Результаты исследований 
Клинические  исследование  поросят  показало:  что  температура  тела  во  всех  5  группах 
существенно не изменилась и находилась в пределах нормы (38,5 + 0,5), отмечалось незначительное 
увеличение частоты сердечных сокращений в минуту (108 + 3) и учащения дыхания поросят (30 + 5) 
[4].  
Таблица 2. Клинические исследование 
 
Группы 
 
 
Температура 
 
Частота сердечных 
сокрощений 
 
Частота дыхание 
контрольная 
38,9 + 2 
98 + 5 
30 + 2 
1 
- опытная  
39,0 + 2 
110 + 5 
25 + 2 
2 
- опытная  
38,5 + 2 
101 + 5 
23 + 2 
3 
- опытная  
39,1 + 2 
96+ 5 
28+ 2 
4 
– опытная  
38,6 + 3 
104 + 5 
21 + 2 
 
Гематологические исследование  
При  определении  уровня  гемоглобина  установлено,  что  средний  показатель  количество  гемо-
глобина составлял 115 
+
 15 
г
/
100л. 
Количество лейкоцитов составляло 18 
+
  6
*
10
9
. При определении ско-
рости оседания эритроцитов аппарате Панченко установили, что СОЭ у больных составило 2,6 
+
 0,3 
мм/час. Результаты гематологических исследований отображены в таблице №3. 
 
Таблица 3. Морфологические показатели крови поросят 
Номер 
группы 
Показатели морфологического состава крови у поросят 
 
Кол-во 
лей-
коци-
тов 
СОЭ 
Лейкоцитарная формула 
Базо-
филы 
Эози-
нофилы 
Лимфо-
циты 
Моно-
циты 
Нейтрофилы 
Сегмен-
тоядер-
ные 
Палочко 
ядерные 
Вариант 
Нормы 
 
10 -22 
2,6-0,3  2,0 
– 
0,0 
6,0 
– 
0,0 
35- 17 
10,0- 
4,0 
55 -28 
7 -3 
Контроль   14,6 
+
2  2,5
+
0,1  1
+
1 
4
+
1 
31
+
2 
8
+
1 
50
+
2 
6
+
1 
1 опыт 
16
+
2 
2,6
+
0,1  2
+
1 
5
+
1 
28
+
2 
4
+
1 
55
+
2 
6
+
1 
2 опыт 
16
+
2 
2,4
+
0,1  1
+
1 
2
+
1 
34
+
2 
5
+
1 
51
+
2 
7
+
1 
 
3  опыт  
18
+
2 
2,0
+
0,1  1
+
1 
3
+
1 
30
+
2 
7
+
1 
53
+
2 
6
+
1 
 
4  опыт 
13
+
2 
2,3
+
0,1  1
+
1 
4
+
1 
30
+
2 
8
+
1 
54
+
2 
3
+
1 
 
 
 

ҚАЗАҚСТАННЫҢ АӨК ИННОВАЦИЯЛЫҚ ДАМУЫ: АУЫЛШАРУАШЫЛЫҚ, ВЕТЕРИНАРЛЫҚ ЖӘНЕ 
ТЕХНИКАЛЫҚ ҒЫЛЫМДАРДЫҢ ДАМУ ТЕНДЕНЦИЯЛАРЫ 
ИННОВАЦИОННОЕ РАЗВИТИЕ АПК КАЗАХСТАНА: ТЕНДЕНЦИИ РАЗВИТИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ, 
ВЕТЕРИНАРНЫХ И ТЕХНИЧЕСКИХ НАУК 
 
246 
 
 
Заключение 
Полученные результаты позволяют сделать следующие выводы, что при кастрации поросят 2-4 
месячного возраста использование 1% и  2% растворов лидокаина в дозах 1,0 и 1,4 мл не вызывает 
изменений  клинического  статуса  животных  (температуры,  частоты  дыхания,  уровня  артериального 
давления), гематологических показателей (количества эритроцитов, лейкоцитов, гемоглобина, и лей-
коцитарной формулы) и не вызывает побочных реакций (саливация, тремор, поведения). 
Наиболее надежную анальгезию из четырех опытных групп дает применение 2%  раствора ли-
докаина в дозе 1 мл на животное. 
Применение  вазоконстриктора  -  анреналина  позволило  снизить  побочные  эффекты  и  пролон-
гировать действие лидокаина и способствовало уменьшению кровотечения в области разреза.  
                                                                      
Литература: 
1  Сапожников  А.Ф.,  Конопельцев  И.Г.,  Андреева  С.Д.,    Бакина  Т.А.  «Местное  обезболивание  и 
методы новокаиновой терапии животных» Санкт – Петербург – Москва -  Краснодар.2011. 
2   Субботин В.М., Александров И.Д., «Ветеринарная фармакология» М.2004; 
3   Дональд К. Пламб, «Фармакологические препараты в ветеринарной медицине» М.2002  
4   Мозгов И.Е. Фармакология. - М.: Агропромиздат, 1985. 
5   Уша  Б.В.  //  Клиническая  диагностика  внутренних  незаразных  болезней  животных.  М.:  Колос, 
2003. С. 185. 
6   Источник: http://medbe.ru/materials/anesteziya-i-narkoz-v-stomatologii/infiltratsionnoe-obezbolivanie-
vvedenie-anestetika 
 
 
 
УДК 636.084.1 
 
ТЕХНОЛОГИЯ ОТБОРА ДОЗ МОЛОЗИВА ДЛЯ КОРМЛЕНИЯ ТЕЛЯТ  
 
Ушаков  Ю.А  -    докторант,  Оренбургский  государственный  аграрный  университет, 
г.Оренбург, Россия 
Исинтаев 
Т.И 
- 
 
кандидат, 
Костанайский 
государственный 
университет 
им. 
А.Байтурсынова 
Хасенов Н.С - докторант, Костанайский государственный университет им. А.Байтурсынова 
 
В  данной  статье  предлагается  способ  кормления  телят  профилакторного  периода,  кото-
рый заключается в том, что новорожденным телятам в течение определенного периода предос-
тавляется 
возможность 
высасывать 
молозиво 
непосредственно 
из 
вымени 
коровы. 
Примуществом  предложенного  способа  получения  молозива  и  способа  кормления  телят 
профилакторного  периода  является  упрощение  процессов  получения  молозива  и  кормления 
телят, а также сохранение высокого качества молозива. 
Ключевые слова: кормление, молозиво, телята, технология. 
 
Важное  значение  в  повышении  специфической  резистентности  организма  новорожденных 
телят имеет выпаивание доброкачественного молозива, что обеспечивает телятам ярко выраженный 
колостральный  иммунитет  против  всех  ассоциаций  микробов,  с  которыми  контактировал  организм 
коровы.  Молозиво  –  переходящая  пища  от  плацентарного  питания  к  питанию  новорожденных 
молоком.  Однако,  существующий  технологический  процесс  получения  молозива  и  его  выпаивания 
новорожденным  телятам  не  отвечает  зоотехническим  требованиям  по  бактерицидному  и 
температурному качествам.  
Поэтому  нами  будут  проведены  исследования  процесса  отбора  доз  молозива  для  кормления 
телят  при  получении  и  подготовке  его  к  выпаиванию.  Доение  коров  и  выпаивание  молозива  будет 
проводиться  согласно  технологической  карте  машинного  доения  коров  на  установке  ДАС  -2В  со 
сбором  молока  в  переносные  ведра,  и  технологической  карте  содержания  коров  в  родильном 
отделении. 
Так как процесс машинного доения коров длится 5- 6 мин, при двукратном   доении то необхо-
димо в течение одного доения отобрать несколько доз молозива. В условиях большинства молочных 
хозяйств отбор порций молозива происходит после доения. По окончании доения процесс подготовки 
молозива  представлен  многоступенчатостью  операций,  таких  как,  дополнительные  переливы,  дози-
рование  и  подогрев.  При  таком  подходе  окружающая  среда  является  одним  из  главных  источников 

ҚАЗАҚСТАННЫҢ АӨК ИННОВАЦИЯЛЫҚ ДАМУЫ: АУЫЛШАРУАШЫЛЫҚ, ВЕТЕРИНАРЛЫҚ ЖӘНЕ 
ТЕХНИКАЛЫҚ ҒЫЛЫМДАРДЫҢ ДАМУ ТЕНДЕНЦИЯЛАРЫ 
ИННОВАЦИОННОЕ РАЗВИТИЕ АПК КАЗАХСТАНА: ТЕНДЕНЦИИ РАЗВИТИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ, 
ВЕТЕРИНАРНЫХ И ТЕХНИЧЕСКИХ НАУК 
 
247 
 
попадания в молозиво микрофлоры, подогревы влияют на качество молозива. Поэтому нами предла-
гается осуществлять отбор порций молозива непосредственно в процессе доения.  
Нами проведен анализ способов и технических средств для отбора порций молозива.  
Известен  способ  кормления  телят  профилакторного  периода,  который  заключается  в  том,  что 
новорожденным  телятам  в  течение  определенного  периода  предоставляется  возможность  высасы-
вать  молозиво  непосредственно  из  вымени  коровы.  Иммунитет  в  организме  теленка  развивается, 
прежде  всего,  в  результате  потребления  молозива.  Последнее  отличается  от  молока  высоким  со-
держанием белков, особенно иммунных глобулинов, или гамма-глобулинов, с которыми связаны анти-
тела. С молозивом в организм поступает много витаминов и минеральных веществ. При этом теленок 
получает молозиво оптимальной температуры [1]. 
Недостаток  данного  способа  в  том,  что  он  является  несовершенным,  снижающим  товарность 
молока,  что  свойственно  экстенсивному  типу  ведения  животноводства,  так  как  необходимо  держать 
коров-кормилиц,  подбирать  группы  телят-аналогов.  Теленок  на  одиночном  или  сдвоенном  подсосе 
получает в молоке от 358 до 717 кормовых единиц или только в пределах 32-63 % от общей потреб-
ности, что не оправдывается ни экономически, ни зоотехнически. Он может быть применен лишь под 
малопродуктивными коровами [2]. 
Известен  способ  получения  молозива  и  кормления  телят  профилакторного  периода,  заклю-
чающийся в кормлении новорожденных в первые 3-7 дней молозивом, получаемым от коровы-матери 
с помощью машинного доения. При этом отбор порции молозива для выпаивания новорожденных те-
лят начинается по окончании машинного доения коровы-матери [3]. 
Оператор  машинного  доения  переливает  выдоенное  молозиво  коровы-матери  из  доильного 
ведра  в  обычное  ведро  (в  большинстве  случаев  без  крышки),  изготовленное  из  пластмассы  или  ме-
талла, и относит в молочную. В молочной начинается работа оператора по обслуживанию молодняка, 
которая заключается в подготовке порции молозива к выпаиванию новорожденных телят. Оператор по 
обслуживанию молодняка переливает  необходимую для теленка порцию молозива из ведра, то есть 
производит  дозирование  с  помощью  мерной  емкости  или  же  на  глаз,  в  поилку  Маркцева,  а  остаток 
сливает в общую емкость для сборного молозива. 
Недостатками данного способа являются большая трудоемкость получения и подготовки моло-
зива  к  выпаиванию  новорожденных  животных  и  невозможность  кормления  телят  молозивом  опти-
мальной  температуры  и  первоначального  качества.  Это  происходит  из-за  того,  что  при  переливах 
порция молозива для выпойки охлаждается и имеет низкую температуру. Поэтому при существующем 
способе проводится технологическая операция подогрева порции молозива до 37-41 °С в водяной ба-
не.  В  результате  увеличивается  количество  технологических  операций,  необходимых  для  подготовки 
молозива к выпаиванию: подготовка водяной бани, дозирование порции и его подогрев. При этом необ-
ходимо  отметить, что  нагрев  корма  происходит  от стенок  к  середине.  Высокая  температура  водяной 
бани, время нагрева создают перепад температуры в прогреваемом корме, все это влияет на качест-
во молозива, которое в дальнейшем выпаивают новорожденным телятам. 
Другим отрицательным показателем существующего способа является то, что технологический 
процесс подготовки молозива к кормлению телят в основном сводится к соблюдению температурного 
режима. При этом никаких технологических операций по соблюдению бактериальной чистоты порции 
не существует. Вследствие чего происходит обсемененность молозива патогенной микрофлорой в про-
цессе получения, ожидания и многократных переливов из емкости в емкость. Это существенно сказыва-
ется на сохранности, росте и развитии новорожденных телят. 
Кроме того, для выпаивания новорожденных телят используется сосковая поилка, в которой со-
хранить  необходимую  температуру  заданной  порции  молозива  во  время  кормления,  составляющего 
от 4 до 10 минут у здоровых телят и от 10 до 26 минут у слабых, невозможно, что отрицательно влия-
ет на сохранность новорожденных телят [4]. 
С учетом недостатков известных способов и технических средств нами предлагается способ по-
лучения молозива для кормления телят профилакторного периода в котором доение коров с помощью 
доильного  аппарата,  дозирование  порций  молозива,  при  этом  доение  коров  и  дозирование  порций 
молозива для выпаивания телят осуществляют одновременно. Причем перед началом дозирования 
порций  молозива  проводят  промывку  коллектора  и  молочных  шлангов  доильного  аппарата  вы-
даиваемым  молозивом,  а  дозирование  порций  молозива  в  процессе  доения  осуществляют  в  термо-
изолированные емкости-поилки. 
Способ кормления телят профилакторного периода включает выпаивание молозива, получен-
ного с помощью доильного аппарата, при этом осуществляют выпаивание молозива, полученного по-
сле стабилизации температурного режима в коллекторе и молочных шлангах доильного аппарата, из 
термоизолированных  емкостей  - поилок с  кратностью, соответствующей  количеству дозируемых пор-
ций  молозива  в  процессе  доения,  причем  дозирование  порций  молозива  начинают  после  промывки 
коллектора и молочных шлангов доильного аппарата выдаиваемым молозивом. 

жүктеу/скачать 39,27 Mb.

Достарыңызбен бөлісу: