маусым                                шілде                                       тамыз

Əдебиеттер  
 
1.  Салямова  Н.Д.  Жаздық  жұмсақ  бидай  сорттары  мен  будандарының  жəне 
коллекциялық  үлгілерінің  негізгі  ауруларға  (қоңыр  тат,  септориоз,  ұатты 
қаракүйе) беріктігі. Автореферат. Алматы-2005. 25 б. 
2.  Абиев  С.А.  Ржавчинные  грибы  злаков  Казахстана.  Алматы  НИЦ:  Ғылым- 
2002. 296с. 
3.  Койшыбаев  М.  Болезни  зерновых  культур:  симптомы,  распространение  и 
вредоносность  болезней,  специализация,  биологические  особенности  и 
структура популяций возбудителей. Алматы: Бастау-2002. 367 с. 
4.  Турапин  В.П.,  Мостовой  В.А.  Ржавчинные  болезни  зерновых  культур  в 
Республике Казахстан и борьба с ними. Алматы: Ғылым. -1995. 141 с.  
5.  Каскарбаева  Ж.А.  Система  защиты  зерновых,  зернобобовых  и  масличных 
культур  от  вредителей,  болезней  и  сорняков  в  Северном  Казахстане. 
Рекомендация.  Шортанды-2005. 71 с. 
6.  Хвостова  В.В.,  Шумный  В.К.  Устойчивость  пшеницы  к  бурой  ржавчине. 
Новосибирск: Наука.1978.- 316 с. 
7.  Степанов К.М. Ржавчина зерновых культур. Ленинград: Колос- 1975.-71с.  
8.  Агрометеорологическая  и  агроэкологическая  информация  в  поддержку 
зернопроизводства в Серерном Казахстане. Под ред. Бекеновой М.К., Лебедь 
Л.В. Алматы: Бастау. 2006.- 81 с. 
 
 
Резюме 
 
В  работе  приводится  динамика  развития  и  биология  бурой  листовой 
ржавчины в посевах пшеницы Акмолинской области. Изучены распространения и 
вредоносность  болезни  в  разных  злаковых  растениях,  перезимовка  в  уредино-  и 
телиостадиях  и  морфометрические  данные  урединоспор  бурой  ржавчины  на 
культурных  и  дикорастущих  злаках  в  Акмолинской  области,  которая  дает 
возможность  бороться  с  болезьню.  А  также  наблюдалась  цикл  развития  гриба  в 
разных районах данной области. 
 
Summary 
 
In work dynamics of development and biology of a brown liefe  rust in crops of 
wheat Akmolinsky of region is resulted. Distributions and nocuity of illness in different 
cereales, hibernate in uredinio- and pseudostages and morphometrics data urediniospore  
brown rust on cultural and wild-growing cereals in Akmolinsky regions are studied and it 
makes possible to combat its spread (translocation).  And also it was observed a cycle of 
development of a mushroom in different districts of the given region.  

«ТОПОЛИН», «ТЕТРОГИДРОВИТ» ПРЕПАРАТТАРЫ ЖƏНЕ ЗООДЭНС 
АППАРАТЫНЫҢ ТАУЫҚТАР ЕТІНІҢ СЕЗІМДІК ЖƏНЕ ЗЕРТХАНАЛЫҚ 
КӨРСЕТКІШТЕРІНЕ ƏСЕРІ 
 
 
Г.Т.Кұрманова 
С.Сейфуллин атындағы ҚазАТУ 
 
Жануарларға  азықпен  немесе  сумен  енген  биологиялық  белсенді  заттар 
организмнің  табиғи  резистенттілігін  жоғарлауына,  рациондағы  құнды  заттардың 
толық сіңірілуіне ықпал етеді.  
Қазіргі  кезде  жануарлар  организміне  асқорыту  жəне  иммундық  жүйесіне 
жақсы əсер ететін  көптеген отандық жəне шетелдік биологиялық белсенді заттары 
өндіріске ұсынылған [1]. 
Жануарлар  мен  құстарда  көптеген  витаминдердің  жетіспеушілігі  жиі 
байқалады, ол балансталмаған жəне құнарсыз азықтандыру, асқорытудың бұзылуы 
жəне əртүрлі стресстардың əсерінен болады. Əсіресе бұндай жағдай өндірістік құс 
шаруашылықтарында, құстарды тар алаңдарда ұстағанда жиі стрессті факторларға 
душар  болады.  Осыны  ескере  отырып  əрдайым  құс  шаруашылығында  витаминді 
препараттармен қамтамасыз етіп отыру қажет. Құс организміне уақытында қажетті 
азық қоспаларының құрамында болатын  майда – суда еритін витаминдер мөлшерін 
беріп отыру басты рөл атқарады. Дегенмен, азық қоспалары құс организмін қажетті 
витаминдермен  қамтамасыз  ете  алмайды.  Азықтардың  өздері  витаминдерге 
қарағанда жиі агрессивті, құнарсыз болады [2]. 
Алдымызға қойған мақсаттарымыздың бірі ол «Тополин», «Тетрогидровит» 
фитопрепараттарын 0,3 мл  əр  басқа  жəне  динамикалық  электронейроадаптивтік 
стимуляцияны 5–10 минут  биологиялық  нүктелеріне  стимулдау  арқылы  тауықтар 
етінің  сезімдік  жəне  зертханалық  көрсеткіштеріне  əсерін  анықтау  болды.  Бұл 
мақсатты  жүзеге  асыру  үшін  біз 12 бас  тауықтарды  үш–үштен 4 топқа  бөліп, 
біріншісіне – «Тополин»,  екіншісіне – «Тетрогидровит»,  үшіншісіне – 
динамикалық  электронейроадаптивтік  стимуляция  қолдандық,  ал  төртінші  топқа 
ешқандай заттар қолданған жоқ, тек құрама жеммен азықтандырдық. Тəжірибе 21 
күнге  созылды,  кейін  тауықтарды  сойып  олардан  сезімдік  жəне  зертханалық 
зерттеулер үшін сынамалар алынды.                       
 
1-кесте Тауық ұшасын сезімдік зерттеу көрсеткіштері 
 
Көрсеткіш-тер 1-ші Тополин 
n =3 
2-ші  тетро-
гидровит 
n =3 
3-ші Зоо ДЭНС 
n =3 
Бақылау 
n =3 
Тұмсығы-ның  
сыртқы  түрі, 
түсі 
Жылтыр 
Жылтыр 
Жылтыр 
Жылтыр 
Ауыз 
қуысының 
кілегей 
қабығы 
Жылтыр, 
ақшыл- 
қызғылт, 
шамалы 
ылғалды. 
Жылтыр, 
қызғылт, əлсіз 
ылғалды. 
Жылтыр, 
қызғылт,  əлсіз 
ылғалды. 
 
Жылтыр, 
қызғылт, əлсіз 
ылғалды. 
 

Көз алмасы 
Тасырайған, 
қасаң 
қабағы 
жылтырайды 
Тасырайған, 
қасаң қабағы 
жылтырайды 
Тасырайған, 
қасаң қабағы 
жылтырайды 
Тасырайған, 
қасаң қабағы 
жылтырайды 
Ұшаның  беті 
(үсті) 
Құрғақ  ақшыл-
сары  қызғылт 
реңді 
Құрғақ, 
сарғыш  түсті 
қызғылт реңді 
Құрғақ  ақшыл 
–сары  қызғылт 
реңді. 
Құрғақ, 
сарғыш  түсті 
қызғылт реңді 
Майы 
Сары  
Ақшыл-сары 
Сары 
Ақшыл-сары 
Кеуде  құрсақ 
қуыстарының 
сірі қабаттары 
Ылғалды, 
жылтыр, 
кілегейсіз 
 
- 
 
- 
 
- 
Ет тілігі 
Əлсіз  ылғалды, 
фильтр  қағазда 
ылғалды 
дақ 
қалдырмайды, 
ақшыл  –қызыл 
түсті, 
кеуде 
бұлшық 
еті 
əлсіз 
қызыл 
түсті.   
Ылғалды, 
фильтр 
қағазда 
ылғ 
дақ 
қалады, 
қызғылт түсті, 
кеуде  бұлшық 
–еті 
ақшыл 
қызғылт түсті.  
Əлсіз ылғалды, 
фильтр  қазазда 
ылғалды 
дақ 
қалдырмайды, 
ақшыл  –қызыл 
түсті, 
кеуде 
бұлшық 
еті 
əлсіз 
қызыл 
түсті.   
  Ылғалды, 
фильтр 
қағазда 
ылғ 
дақ 
қалады, 
қызғылт түсті, 
кеуде  бұлшық 
–еті 
ақшыл 
қызғылт түсті.
Бұлшық 
ет 
конситен-
циясы 
Тығыз, 
серпімді, 
саусақпен 
басқан 
кезде 
шұңқыр 
тез 
қалпына келеді.
 
- 
 
- 
 
- 
Иісі  
Өзіне 
тəн, 
балауса 
құс 
етінің 
иісіне 
тəн. 
 
- 
 
- 
 
- 
Сорпаның 
мөлдірлігі 
жəне 
хош 
иістілігі 
Мөлдір, 
ароматты, 
үлпектерсіз. 
Сорпа  бетінде 
үлкен 
май 
шариктері 
көрінеді. 
Мөлдір, 
ароматты, 
үлпектерсіз. 
Сорпа  бетінде 
кішкентай 
май 
шариктері 
көрінеді. 
Мөлдір, 
ароматный, 
үлпектерсіз. 
Сорпа  бетінде 
үлкен 
май 
шариктері 
көрінеді. 
Мөлдір, 
ароматный, 
үлпектерсіз. 
Сорпа  бетінде 
кішкентай 
май 
шариктері 
көрінеді. 
1-ші кестенің көрсеткіштеріне сүйенсек,  зерттелген тауық ұшалары балауса 
құс  ұшаларының  көрсеткіштеріне  сəйкес  келіп  отыр.  Пісіріп  сынау  реакциясын 
жүргізу  нəтижесінде  ең  майлы  тауық  еті  фитопрепарат  «Тополин»  берген  топта 
жəне  ЗооДЭНС  аппаратын  қолданған  топтарда  анықталды.  Басқа  топтардың 
сезімдік  көрсеткіштерінде  шамалы  ауытқулар  байқалды,  бірақ  жалпы  сезімдік 
көрсеткіштер балауса тауық етіне сəйкес келді.  
Тауық  етін  зертханалық  зерттеуге  қышқылдық  мөлшері,  беткейлі 
бактериоскопия,  аминді – аммиакты  азот,  ұшпа  май  қышқылдары,  пероксидаза 
реакциясы,  күкірт  қышқылды  мыс  реакциясы  əдістерімен  жəне  люменескопия 
арқылы анықтадық.  
 

2-кесте Тауық ұшасын зертханалық зерттеу көрсетіштері  
 
Зертханалық  зерттеулер  жүргізу  нəтижесінде  зерттелетін 12 сынамалардың 
беткейлі  жəне  терең  қабатты  бұлшық  еттерінен  жасаған  жұғындыны  Грамм  əдісі 
бояу  нəтижесінде,  микроорганизмдердің  саны  оннан  асқан  жоқ,  яғни  бұл 
көрсеткішті бағалай отыра зерттелген еттер балауса құс етіне жатады. 
Тауық еттерінің қышқылдық көрсеткіші қалыпты жағдайда болды.  
Аминді - аммиакты  азот  мөлшерін  анықтау  нəтижесінде  бүкіл  зерттеліп 
отырған  сынамалар  мөлдір  болды,  ол  теріс  нəтижені  көрсетеді,  яғни  тауық  еті 
балауса, дені сау тауықтардан алынғанын көрсетеді.  
Ұшпа  май  қышқылдарының  мөлшерін  анықтауда  бүкіл  тауық  етінің 
көрсеткіштері қалыпты жағдайда, яғни балауса тауық еті болып анықталды.   
Құс етінің балаусалығын анықтауда 12 сынаманы пероксидаза реакциясына 
зерттегенде бүкіл сынамалар оң болып анықталды, яғни біздің сынамамыз ақшыл – 
Көрсет-
кіштер 
1-ші Тополин 
n =3 
2-ші  тетро-
гидровит 
n =3 
3-ші Зоо ДЭНС 
n =3 
Бақылау тобы 
n =3 
рН 
5,9
±0,04 6,0±0,03 5,7±0,05 6,0±0,03 
Бактериос
копия 
Беткей жəне 
терең 
қабатының 
жағындылард
а микроб 
денешіктері 
кездескен 
жоқ 
Беткей жəне 
терең 
қабатының 
жағындылард
а микроб 
денешіктері 
кездескен 
жоқ 
Беткей жəне 
терең 
қабатының 
жағындыларда 
микроб 
денешіктері 
кездескен жоқ 
 
Беткей жəне 
терең қабатының 
жағындыларда 
микроб 
денешіктері 
кездескен жоқ 
 
Аминді
− 
аммиакты 
азот, мг 
  
0,9
±0,04 
 
1,15
±0,03  
 
1,12
±0,04 
 
1,16±0,02 
Ұшпа май 
қышқылд
ары, мг 
(КОН) 
 
3,8
±0,02 
 
4,0
±0,04 
 
3,95
±0,02 
 
4,1
±0,05 
Пероксид
аза 
реакцияс
ы 
Барлығы оң  
Барлығы оң 
Барлығы оң 
Барлығы оң 
 
Аммиакт
ы Несслер 
бойынша 
анықтау 
Барлығы 
теріс 
Барлығы 
теріс 
Барлығы теріс 
Барлығы теріс 
Күкірт-
қылдылд
ы мыс 
реакцияс
ы 
Барлығы 
теріс 
Барлығы 
теріс 
Барлығы теріс 
Барлығы теріс 

қоңыр  түсті  болды,  ол  пероксидаза  ферментінің  балауса  етте  қалыпты  жағдайда 
болғанын анықтады. 
Аммиакты  Несслер  реактивімен  анықтау  нəтижесінде  бүкіл  зерттеліп 
отырған  сынамалар  мөлдір  болды,  ол  теріс  нəтижені  көрсетеді,  яғни  тауық  еті 
балауса, дені сау тауықтардан алынғанын көрсетеді.  
Күкірт қышқылды мыс реакциясын жүргізу барысында зерттелген 12 сынама 
теріс нəтиже көрсетті. 
Жүргізілген зерттеулерді қорытындылай келсек, тауық етін ветеринарлық – 
санитарлық  сараптау  кезінде,  яғни  сезімдік  жəне  зертханалық  зерттеулер 
нəтижесінде  алынған  мəліметте  бойынша  жалпы  «Тополин», «Тетрогидровит» 
фитопрепараттары  жəне  динамикалық  электронейроадаптивтік  стимуляция 
қолданған  тəжірибелік  топтардың  көрсеткіштері  оң  нəтиже  берді.  Демек,  дəлірек 
айтсақ  «Тополин»  жəне  динамикалық  электронейроадаптивтік  стимуляция 
қолдаған тауықтардың етіне жақсы əсерін көрсеттеді деген қорытындыға келдік. 
 
Əдебиеттер  
 
1. 
Қожабеков  М.,  Қожабекова  Г.  Дəрілік  өсімдіктер. – Алматы:   
Қазақстан, 1982, 182 бет. 
2. 
Липницкий С.С. и др. Зеленая аптека в ветеринарии Ураджай, 1995.– 3 
стр. 
3.  Макаров  В.А.,  Фрлов  В.П.,  Шуклин  Н.Ф.  Ветеринарно–санитарная 
экспертиза  с  основами  технологии  и  стандартизации  продуктов  животноводсва. – 
Мосвка: Агропромиздат, 1991, 69 бет.   
4. 
С.  Қырықбайұлы,  Т.М.  Тілеуғали.  Ветеринариялық – санитариялық 
сараптау практикумы. – Алматы: Агроуниверситет, 2007ж. 
 
Резюме 
 
На основании полученных результатов ветеринарно-санитарной экспертизы 
полученной  продукции,  сделаны  следующие  выводы  соответствующие 
положительному влиянию биологически активных веществ препаратов «Тополин», 
«Тетрогидровит»  и  динамической  электронейроадаптивной  стимуляции  на 
повышение качества мяса. 
 
Summary 
 
On the basis of the received results of veterinary-sanitary examination of received 
production, are drawn following conclusions corresponding positive influence of 
biologically active substances of preparations «Тopoline», «Теtrogidrovite» and dynamic 
electroneiro stimulations on improvement of quality meat.  
 
 
Ғылыми жетекші б.ғ.д., профессор Б.С.Майқанов 

ДИНАМИКА ИММУНОГЕНЕЗА СТИМУЛИРОВАННОГО 
АНТИИДИОТИПИЧЕСКИМИ АНТИТЕЛАМИ 
 
 
 Серикова Ш. аспирант, 
 Оспанова С.Г. к.б.н., доцент, 
КазАТУ им. С.Сейфуллина  
 
Антиидиотипические  антитела  (АИАТ) - антитела  против  антител, 
вырабатываемых самим же организмом против рабочего, «распознающего» участка 
антитела,  так  называемого  идиотипа.  Антиидиотипические  антитела  играют 
важную  роль  в  связывании  и  обезвреживании  избытка  антител,  в  иммунной 
регуляции выработки антител. Кроме того, антиидиотипическое «антитело против 
антитела»  зеркально  повторяет  пространственную  конфигурацию  исходного 
антигена,  против  которого  было  выработано  исходное  антитело.  И  тем  самым 
антиидиотипическое антитело служит для организма фактором иммунологической 
памяти,  аналогом  исходного  антигена,  который  остаётся  в  организме  и  после 
уничтожения  исходных  антигенов.  В  свою  очередь,  против  антиидиотипических 
антител могут вырабатываться анти-антиидиотипические антитела и т. д. 
Формальное подтверждение существования иммунной сети было получено в 
опытах,  показавших,  что  каждое  антитело  (Атх)  может  вызвать  образование 
антител  второго  порядка  (Ат2).  Идиотипы  молекул  Ат2  в  свою  очередь  должны 
вызвать образование идиотипов антител третьего порядка (Ат3), а те в дальнейшем 
—  синтез  Ат4  и  т.  д.  Оказалось,  что  действительно,  иммунизируя  нормальных, 
подобранных  по  аллотипам  кроликов  или  сингенных  мышей,  можно  получить 
антитела Ат3 и Ат4 (рисунок 1) , [2, 3]. 
 
 
 
Рисунок 1- Схема получения антиидиотипических антител 
 
Целью  настоящих  исследований  является  изучение  динамики  гуморального 
ответа  у  мышей  линии BALB/c к  моноклональным  антиидиотипическим 
антителам. 
 
Материалы и методы исследований 
В  работе  использовали  моноклональные  антиидиотипические  антитела 
продуцируемые 
штаммами 
гибридом 2G9 и 2D9, полученные 
и 
охарактеризованные  нами  ранее [5], поли-В  антиген  и  единый  бруцеллезный 
антиген, антивидовые иммуноглобулины, меченые пероксидазой хрена. В качестве 
подопытных животных использовали мышей линии BALB/c.  

Для индукции Ат3 (т.е. анти-антиидиотипических антител) отдельные группы 
мышей  линии BALB/c иммунизировали  моноклональными  антиидиотипическими 
антителами в количестве 100 мкг на одно животное, 4-х - кратно, с двухнедельным 
интервалом.  На 4-й  день  после  последней  инъекции  иммунную  сыворотку 
тестировали  в  ИФА.  Для  этого  полистироловые  планшеты  сенсибилизировали 
бруцеллезным антигеном в концентрации 5 мкг/мл в бикарбонатном буфере рН 9,5. 
Затем блокировали 1% раствором БСА в течение 1 часа. После отмывки, наносили 
серийные  разведения  иммунной  сыворотки  в  фосфатно-солевом  буфере  с 
добавлением 0,05% раствора  твина,  далее  обрабатывали  коньюгатом  кроличьих 
антител 
против 
иммуноглобулинов 
мышей. 
Реакцию 
проявляли 
ортофенилендиамином.  В  качестве  положительного  контроля  использовали 
сыворотку,  полученную  при  иммунизации  поли-В  антигеном.  В  качестве 
отрицательного контроля - сыворотку неиммунизированной мыши.  
Для  изучения  динамики  антителообразования  забор  крови  производили 
через  каждые 3 дня  после  последней  иньекции  иммуногена  в  течение  месяца  и 
исследовали методом ИФА. 
 
Результаты и обсуждение  
В  результате  гетерологичной,  гомологичной  или  сингенной  иммунизации 
можно  получить  антиидиотипические  антитела:  АТ2γ—антитела  непосредственно 
против  идиотопов,  ассоциированных  с  антигенсвязывающими  участками;  АТ2α – 
антитела  против  детерминант  каркасных  участков  вариабельной  области;  АТ2β – 
гомотела,  направленные  против  паратопа  антитела,  следовательно,  имитирующие 
антигенные  детерминанты,  т.е.  несущие  «внутренний  образ»  эпитопа  антигена 
внутри  своего  паратопа;  АТ2ε – эпитела,  узнающие  эпитопы  антигенов  и 
гомологичные этим эпитопам идиотопы антител.  
Из всех вышеназванных видов антиидиотипических антител, особый интерес 
для  науки  представляют  АТ2β-  гомотела,  несущие  идиотипы,  по  конфигурации 
напоминающие 
антиген
  (т.е.  дающие  "внутренний  образ"  антигена).  Одним  из 
методов  классификации  антиидиотипических  антител  является  исследование 
свойств индуцированных ими анти- антиидиотипических антител (Ат3), поскольку 
АТ2β,  в  силу  своей  способности  имитировать  исходный  антиген,  способны  при 
введении животным вызывать образование антигенспецифичных антител Ат3. 
В  связи  с  этим,  в  течение  месяца  наблюдали  динамику  выработки  антител 
третьего  порядка  в  организме  мышей,  иммунизированных  антиидиотипическими 
антителами. Сыворотки подопытных животных исследовали в иммуноферментной 
реакции на взаимодействие с поли-Б антигеном бруцелл.  
Динамика 
антителообразования, 
стимулированного 
введением 
моноклональных антиидиотипических антител представлена на рисунке 2. 
 

 
 
Рисунок 2- Динамика синтеза анти-антиидиотипических антител (Ат3) 
  
Как  свидетельствуют  экспериментальные  данные,  на 3-и  сутки  после 
окончания  иммунизации  титр  антител  в  опытных  сыворотках  животных  составил 
соответственно: 1:6400 – при  введении  в  организм  животных  поли-Б  антигена; 
1:1600 – при  введении  антиидиотипических  антител,  продуцируемых  штаммом 
гибридомы 2D9 и 1:400 при использовании
  
антиидиотипических антител штамма 
2G9. Повышение титров антител Ат3 на порядок наблюдалось во всех сыворотках 
на 9-е  сутки  после  последней  иммунизации.  Максимальное  количество  антител  в 
крови  мышей  зарегистрировано  на 12-15-е  сутки  у  животных,  инъецированных 
поли-Б антигеном и антиидиотипическими антителами штамма 2D9. У животных, 
иммунизированных антиидиотипическими антителами штамма 2G9, высокий титр 
антител отмечен на 18-21-е сутки эксперимента. 
Результаты  исследований  опытных  сывороток  мышей  линии BALB/c в 
течение  месяца  показывают  следующую  динамику  иммуногенеза - в  течение 2-х 
недель после последней иммунизации наблюдается постепенное повышение титра 
антител  третьего  порядка  в  крови  у  всех  животных.  У  животных 
иммунизированных  поли-Б  антигеном  высокий  титр  антител  наблюдается  на 12-
сутки  и  снижается  всего  лишь  на  один  порядок  после 18-суток  и  практически  в 
течение  всего  месяца  сохраняется  на  высоком  уровне.  При  этом  максимальный 
титр составляет 1:25000. 
У 
мышей, 
иммунизированных 
антиидиотипическими 
антителами, 
достаточно высокий титр антител сохраняется в течение 21-го дня. Максимальный 
титр Ат3 составил 1:6400. 
Несмотря  на  превышение  титра  антител  в  сыворотке  животных, 
иммунизированных  поли-Б  антигеном,  в  сравнении  с  титром  анти-
антиидиотипических  антител,  результаты  исследований  свидетельствуют  о 

присутствии  в  популяции  полученных  нами  антиидиотипических  МКА  антител 
вида  Ат2β,  несущих  «внутренний  образ»  бруцеллезного  антигена  и 
перспективности данного научного направления. 
 
Выводы 
На основании результатов проведенных исследований, можно сделать вывод 
о  том,  что  в  популяции  антиидиотипических  антител,  продуцируемых  штаммами 
2D9  и 2G9 присутствуют  АИТ  вида  Ат2β,  являющиеся  «внутренним  образом» 
антигена  бруцелл  и  обладающие  соответствующими  иммуногенными  свойствами. 
Наши  результаты  также  согласуются  с  данными  зарубежных  авторов  и 
подтверждают сущест-вование незамкнутой идиотипической сети. 
 
Литература 
 
1. 
Jerne N.K., Towards a network theory of the immune system //Ann. 
Immunolog. –1974.vol. 125-C, p. 373-378 
2. 
De Boer R. J., Recent developments in idiotypic network theory// 
Neth.J.Med.-1991.Vol.39, N 3-4. –P.254-262. 
3. 
Magliani W., Conti S., Salati A. et al. Biotechnological approaches to the 
prodaction of idiotypic vaccine and antiidiotypic antibiotics // Curr. Pharm. Biotechnol. – 
2003. – Vol.4.-P. 91-97. 
4. 
Первиков  Ю.  В.  Антиидиотипические  антитела  как  новое  биотех-
нологическое  направление  в  разработке  вакцин  против  инфекционных  болезней 
//Иммунология.-1989 №1- С.4-7. 
5. 
Оспанова  С.Г.,  Серикова  Ш.,    Получение  моноклональных 
антиидиотипических  антител  к  антигенам  бруцелл.//материал  международной 
научно-практической  конференции  «Биотехнология  в  Казахстане:  проблемы  и 
перспективы инновационного развития». Алматы 2008 
 
Түйін 
 
Моноклоналды антиидиотиптік антиденелерді иммуноген ретінде қолданған 
жағдайда  анти-антиидиотиптік  антиденелердің  түзілу  динамикасы  анықталды. 
Бруцелла антигенінің «ішкі сипаты» болатын Ат2β түріндегі АИАТ, 2Д9 жəне 2G9 
гибридома  штамдары  өндіретін  антиидиотиптік  антиденелердің  популяциясында 
бар екендігі жəне олардың иммуногендік қасиеттері көрсетілген.  
 
Summary 
 
Dynamics of an induction anti- anti- idiotypic antibodies (Аb3) with use in quality 
immunogenic monoclonal anti-idiotypic antibodies is studied. It is defined, that at 
population anti-idiotypic antibodies produced by strains 2D9 and 2G9 are present anti- 
idiotypic antibodies kind Ат2  β, being in "the internal image» brucella antigen and 
possessing corresponding immunogenics properties. 

ИЗВЕСТНЫЕ МЕХАНИЗМЫ КИСЛОТООБРАЗОВАНИЯ У 
МОЛОЧНОКИСЛЫХ БАКТЕРИЙ 
 
 
Кулмамбетова Г.Н.,  магистр биологии, 
Тыныбаева И.К.,  соискатель учёной степени к.б.н., 
Аликулов З.А.,  к.б.н., Кушугулова А.Р.,  к.м.н. 
 
В  основе  производства  молочных  продуктов  лежит  микробиологическое 
производство,  определяющее  качество  продукции,  её  пищевую  ценность  и 
безопасность  для  потребителя.  Нередко  на  молочных  предприятиях  наблюдаются 
случаи  снижения  активности  молочнокислого  процесса,  а  именно  из  главных 
показателей контроля качества – активности кислотообразования [1]. 
Проблема  изменения  молочнокислого  процесса  вследствие  повышения  или 
снижения кислотообразующей активности привлекает внимание, как ученых, так и 
практиков,  ведущих  исследования  на  производстве [2]. Изучение  механизмов 
подобных  мутаций  необходимо  не  только  для  решения  проблем  связанных  с 
потерей  активности  стартерных  культур,  но  и  для  создания  штаммов  с  новыми 
свойствами, создания генетических вариаций с помощью направленного внесения 
мутаций  в  геном  клетки  и  генетических  вариаций [1]. Подобные  работы  активно 
ведутся,  так  учеными Luciane Lapierre, Jacques-Edouard Germond, Andreas Ott, 
Michele Delley, and Beat Mollet для  создания  лактококков  с  различной 
метаболической  активностью  в  отношении  утилизации  лактозы,  поглощении 
цитрата,  а  также  различной  протеолитической  активностью,  использована 
химическая модификация генома. Такие мутации имеют частоту от 10
-3
 до 10
-1
, при 
этом  селекция  мутантных  штаммов  является  достаточно  простой  задачей [1]. 
Однако  набор  признаков,  которые  могут  быть  изменены  методом  химической 
модификации,  существенно  ограничены  и  требуются  методики,  позволяющие 
производить  селекцию  редко  встречающихся  мутаций,  с  частотой 10
-6
  и  ниже.  В 
частности,  к  таким  относятся  потеря 
β-галактозидазной  активности  (гидролиз 
лактозы),  в  результате  чего  не  происходит  скисания  продукта  после  завершения 
ферментации и достигается значительное увеличение срока хранения продукта [2].  
Особенностями 
конструктивного 
метаболизма 
гомоферментативных 
молочнокислых бактерий являются слабо развитые биосинтетические способности, 
что выражается в большой зависимости их роста от наличия в питательной среде 
готовых  органических  веществ  (аминокислоты,  витамины  группы  В,  пурины, 
пиримидины).  В  качестве  источника  углерода  молочнокислые  бактерии 
используют  лактозу  (молочный  сахар)  или  мальтозу  (растительный  сахар, 
образующийся при гидролизе крахмала). Могут они также использовать некоторые 
пентозы, сахароспирты и органические кислоты. Из всех известных непатогенных 
прокариот молочнокислые бактерии отличаются наибольшей требовательностью к 
субстрату.  Зависимость  этих  бактерий  от  наличия  готовых  органических  веществ 
среды  указывает  на  примитивность  в  целом  их  конструктивного  метаболизма. 
Молочнокислые  бактерии  распространены  там,  где  они  могут  обеспечить  свои 
высокие потребности в питательных веществах и где имеются большие количества 
углеводов, переработка которых дает им необходимую для роста энергию. В связи 
с  вышесказанным,  актуальным  является  рассмотреть  механизмы,  которые 
позволяют воспринимать изменения внешних условий, адаптироваться к ним путем 

регуляции экспрессии генов, и рассмотреть возможность влияния этих изменений 
на кислотообразующую активность [3].  
В  случае  одноклеточных  организмов  внешней  средой  служит  внеклеточное 
окружение.  В  отличие  от  этого  в  многоклеточных  эукариотических  организмах 
каждая клетка окружена другими клетками того же клона, и восприятие внешних 
изменений входит в функции особых, высокоспециализированных клеток. Однако 
это несомненное различие можно считать скорее кажущимся, а не действительным, 
если рассматривать сенсорные механизмы на клеточном и молекулярном уровнях 
[4].  Независимо  от  того  происходит  ли  изменение  экспрессии  генов  в  данной 
клетке вследствие связывания с ее поверхностью гормонов, выделяемых соседними 
клетками  или  является  результатом  появления  сахаров  в  среде,  оно  обусловлено 
одним  и  тем  же  сенсорным  механизмом,  включающим  передачу  сигнала  и 
регуляцию  активности  генов.  Прокариоты  обладают  сложными  межклеточными 
связями  на  популяционном  уровне.  Таким  образом,  клон  бактерий  можно 
рассматривать  как  функциональный  аналог  многоклеточного  организма  или 
клеточной  популяции  в  составе  такого  организма.  Многие  физиологические 
феномены  в  мире  прокариот  следует  рассматривать    как  адаптивные  механизмы, 
контролируемые общими регуляторными системами. Клетки прокариот находятся 
в общем контакте с окружающей средой, параметры которой могут изменяться от 
идеальных  для  роста  до угрожающих  выживанию,  однако  в  большинстве  случаев 
микробы  могут  к  ним  приспособиться [3,5]. Быстрая  и  эффективная  адаптация  к 
резким  изменениям  окружающей  среды  достигается  двумя  путями:  мгновенным 
изменением  активности  важных  в  данной  ситуации  метаболических  ферментов  и 
более  медленной,  но  действующей  длительное  время  положительной  или 
отрицательной согласованной регуляцией активности генов. Кроме того, поскольку 
клеткам  могут  быть  необходимы  лишь  несколько  молекул  белка  одного  типа,  но 
тысячи молекул белка другого типа, некоторые гены должны транскрибироваться 
каждую секунду, тогда как другие – лишь один раз за генерацию. Для эффективной 
адаптации  и  экономного  использования  клеточных  ресурсов  экспрессия  генов 
должна регулироваться так, чтобы продукт каждого гена синтезировался в нужном 
количестве  и  в  нужное  время [5]. Однако  такой  способ  регулирования  можно 
назвать долговременным, поскольку, во–первых, возможна значительная задержка 
в  индукции  активности  определенных  генов  и,  во-вторых,  при  действии 
механизмов  репрессии  может  требоваться  до  нескольких  периодов  генерации, 
чтобы  снизился  уровень  ранее  синтезированных  ферментов  в  результате  их 
разбавления. Наряду с такой «медленной» регуляцией  для бактерий важна также 
способность  к  более  гибкой  координации  метаболической  активности  с 
изменениями окружающей среды.  
Другой  свойственный  прокариотам  тип  регуляции – согласованное 
изменение  экспрессии  оперонов,  которые  функционально  не  родственны.  Такая 
регуляция,  называемая  общей,  накладывается  на  регуляцию  с  участием 
специфических  регуляторов  и  во  многих  случаях  необходима  для  резких  и 
существенных 
сдвигов 
в 
метаболизме. 
Функционирование 
сложных 
метаболических  путей  требует  координации  целых  блоков  или  цепочек 
метаболических процессов [6]. Соответствующие гены локализованы во множестве 
оперонов  или  регулонов  (несколько  оперонов,  контролируемых  общим 
регуляторным  белком),  и  для  их  совместной  регуляции  действует  контроль  на 
более  высоком  уровне.  Группу  оперонов  или  регулонов,  каждый  из  которых 

регулируется не только своим индивидуальным регуляторным белком, но и общим 
регулятором, называют модулоном [5,6].  
К  типичным  примерам  метаболических  блоков,  контролируемых  общей 
регуляторной  системой,  относятся  пути  синтеза  аминокислот,  нуклеотидов  и 
витаминов,  механизм  трансляции  и  процесс  спорообразования.  По  имеющимся 
оценкам, число систем, контролируемых общими регуляторами, варьирует от 50 у 
отдельной  бактериальной  клетки  до  нескольких  сотен  во  всем  мире  прокариот. 
Известные к настоящему времени генетические системы, находящиеся под общим 
контролем, разделены на четыре класса: 1) модулоны, участвующие в обеспечении 
клеток питательными веществами и энергией, 2) модулоны, участвующие в стресс-
реакции, 3) модулоны дифференцировки и 4) модулоны, участвующие в агрегации 
клеток и межклеточных контактах [1].  
Так  российскими  учеными  проведена  серия  исследований  по  изучению 
аутостимуляторов  и  аутоингибиторов  роста  у  пробиотических  микроорганизмов. 
Показано,  что  коммуникационные  и  регуляторные  функции  в  развитии 
бактериальных популяций и их ассоциаций принадлежат пулу низкомолекулярных 
экзометаболитов:  карбоновых  кислот,  аминокислот  и  некоторых  других [7]. 
Уникальность  такой  системы  заключается  в  том,  что  условия  для  перехода 
популяции  в  определенное  физиологическое  состояние  создает  не  одно 
регуляторное вещество, а комплекс выделяемых метаболитов, индивидуальный для 
каждого  штамма  микроорганизмов.  Этот  способ  регуляции  не  требует 
специализированных  регуляторов  и  структур,  предназначенных  для  их 
распознавания,  и  по  этой  причине  отличается  универсальностью,  высокой 
экономичностью 
и 
адаптивностью 
к 
окружающим 
условиям. 
Было 
продемонстрировано 
действие 
вышеперечисленных 
низкомолекулярных 
метаболитов  на  антагонистическую  активность  лактобацилл.  Проводятся  очень 
интересные  работы  по  изучению  действия  низкомолекулярных  метаболитов 
аутомикрофлоры организма in vivo. 
Качество  конечного  продукта  зависит  от  множества  технологических 
факторов,  к  которым  относятся  свойства  исходного  сырья  и  бактериальных 
заквасок,  условия  проведения  технологического  процесса  выработки  продукта  и 
его  хранения.  Первостепенное  значение  в  формировании  качества  имеют 
бактериальные  закваски,  обуславливающие  интенсивность  и  направленность 
микробиологических  и  биохимических  процессов,  протекающих  во  время 
сквашивания, созревания и хранения. 
Процессы,  протекающие  при  участии  различных  биологических  объектов, 
клеток  микроорганизмов,  растительных  и  животных  тканей,  отличаются  высокой 
сложностью.  В  процессе  жизнедеятельности  клетки  испытывают  всевозможные 
воздействия,  т.е.  подвергаются  стрессу.  Ответная  реакция  клеточных  структур 
может  быть  различна:  снижение  жизнедеятельности,  физиологические  и 
морфологические  изменения  клеток  вплоть  до  нарушения  целостности  клеточной 
мембраны  и  полного  разрушения  клетки.  Особенно  интересно  исследование 
влияния  механического  стресса  на  механизмы  кислотообразования,  так  как  в 
технологическом  процессе  его  избежать  не  удаётся.  Таким  образом,  в  области 
пищевых  технологий  с  традиционными  проблемами,  в  настоящее  время  появился 
ряд  новых  задач.  Это  неизбежно  диктует  необходимость  всё  более  тесного 
переплетения  исследовательских  работ  с  изучением  различных  аспектов 
производства  кисломолочных  продуктов  и  пробиотических  препаратов.  В  целом 

это  означает,  что  наряду  с  совершенствованием  традиционных  технологий,  всё 
большее развитие начнут приобретать так называемые наукоёмкие технологии при 
усилении внимания к качеству и безопасности выпускаемой продукции. 
Круг  органических  соединений,  которые  могут  сбраживаться,  довольно 
широк.  Это  углеводы,  спирты,  органические  кислоты,  аминокислоты,  пурины, 
пиримидины.  Химическое  вещество  может  быть  подвергнуто  сбраживанию,  если 
оно содержит неполностью окисленные (или восстановленные) углеродные атомы. 
В  этом  случае  есть  возможность  для  окислительно-восстановительных 
преобразований  между  молекулами  (или  внутри  одного  вида  молекул), 
возникающими  из  субстрата.  В  результате  одна  часть  продуктов  брожения  будет 
более  восстановленой,  другая – более  окисленной  по  сравнению  с  субстратом. 
Продуктами  брожений  являются  различные  органические  кислоты  (молочная, 
масляная.  уксусная,  муравьиная),  спирты  (этиловый,  бутиловый,  пропиловый), 
ацетон,  а  также  СО
2
  и  Н
2
.  Обычно  в  процессе  брожения  образуется  несколько 
продуктов. В зависимости от того, какой основной продукт накапливается в среде, 
различают молочнокислое, спиртовое, маслянокислое, пропионовокислое и другие 
виды брожений. 
Следовательно,  в  каждом  виде  брожения  можно  выделить  две  стороны: 
окислительную  и  восстановительную.  Процессы  окисления  сводятся  к  отрыву 
электронов  от  определённых  метаболитов  с  помощью  спецефических  ферментов 
(дегидрогеназ)  и  акцептированию  их  другими  молекулами,  образующимися  из 
сбраживаемого  субстрата.  т.е.  в  процессе  брожения  происходит  окисление 
анаэробного типа [7,8]. 
Гомоферментативное молочнокислое брожение. 
Последовательность 
биохимических 
реакций, 
лежащих 
в 
основе 
гомоферментативного 
молочнокислого 
брожения, 
получила 
название 
гликолитического  пути  (гликолиза),  фруктозодифосфатного  пути,  или  пути 
Эмбдена – Мейергофа – Парнаса,  по  именам  исследователей,  внесших  большой 
вклад в изучение этого процесса. 

 
 
 
Рисунок 1. Общая схема гомоферментативного молочнокислого брожения 
Ф
1
 – гексокиназа;  Ф
2
 – глюкозофосфатизомераза;  Ф
3
 – фосфофруктокиназа;  Ф
4
 – 
фруктозо-1,6-дифосфатальдолаза;  Ф
5
 – триозофосфатизомераза;  Ф
6
 – 3-ФГА-
дегидрогеназа; Ф
7
 – фосфоглицерокиназа; Ф
8
 – фосфоглицеромутаза; Ф
9
 
– енолаза; 
Ф
10
 – пируваткиназа; Ф
11
 – лактатдегидрогеназа (по Dagley, Nicholson, 1973) 
 
Гомоферментативное  молочнокислое  брожение,  в  основе  которого  лежит 
гликолитический  путь  разложения  глюкозы,  является  единственным  способом 
получения  энергии  для  группы  эубактерий,  которые  при  сбраживании  углеводов 
превращают в молочную кислоту от 85 до 90% сахара среды. Бактерии, входящие в 
данную  группу,  морфологически  различны.  Это  кокки,  относящиеся  к  родам 
Streptococcus  и Pediococcus, а  также  длинные  или  короткие  палочки  из  рода 
Lactobacillus. Последний подразделяется на три подрода. Бактерии, включенные в 
два  из  них (Thermobacterium, Streptobacterium),  также  осуществляют 
гомоферментативное  молочнокислое  брожение.  Все  бактерии  этой  группы 
положительно  окрашиваются  по  Граму,  не  образуют  спор,  неподвижны.  Группа 
весьма  гетерогенна  в  отношении  нуклеотидного  состава  ДНК:  молярное 
содержание ГЦ-пар оснований колеблется от 32 до 51%. Значительные колебания 
по  этому  признаку  характерны  и  для  бактерий,  объединённых  в  роды  и  даже 
подроды. 
В  анаэробных  условиях  каждый  моль  молочной  кислоты  превращается 
приблизительно в 0,5 моля уксусной кислоты и 0,5 моля 1,2 пропанодеола и следов 
этанола.  Анаэробная  деградация  молочной  кислоты  базируется  на  росте  клеток  и 
рН-зависимости. Молочнокислая деградация наблюдается при рН-5,8 [8].  
Лактатдегидрогеназа,  катализирующая  превращение  пирувата  в  лактат, 
стереоспецифична.  У  разных  видов  она  содержится  в  виде  определённых 
оптических  изомеров;  в  зависимости  от  этого  бактерии  продуцируют D- или L-
форму  молочной  кислоты.  Те  из  них,  которые  образуют  смесь D- и L-форм 

содержат  или  две  формы  фермента,  различающиеся  стереоспецифичностью,  или 
лактатрацемазу.  
Два гена кодирующие изоформы фермента β-галактозидазы b-galI и b-galIII 
из  Bifidobacterium infantis HL96  были  открыты  на 3,6 и 2,4 кб  ДНК  фрагменте, 
соответственно,  анализ  нуклеотидной  последовательности  двух  фрагментов  из  b-
galI  (3,069 bp) кодируется 1,022-аминокислотами (aa) полипептида  с 
приблизительной  молекулярной  массой 113 кДа. Структура  главного трисахарида 
продуцируется b-GalI катализирующаяся как O-b-D-галактопиранозил-(1-3)-O-b-D-
галактопиранозил-(1-4)-D-глюкопираноза(3* галактозиллактоза) [9].  
Особенностями 
конструктивного 
метаболизма 
гомоферментативных 
молочнокислых бактерий являются слабо развитые биосинтетические способности, 
что выражается в большой зависимости их роста от наличия в питательной среде 
готовых  органических  веществ  (аминокислоты,  витамины  группы  В,  пурины, 
пиримидины).  В  качестве  источника  углерода  молочнокислые  бактерии 
используют  лактозу  (молочный  сахар)  или  мальтозу  (растительный  сахар, 
образующийся  при  гидролизе  крахмала).  Из  всех  известных  непатогенных 
прокариот молочнокислые бактерии отличаются наибольшей требовательностью к 
субстрату.  Зависимость  этих  бактерий  от  наличия  готовых  органических  веществ 
среды указывает на примитивность в целом их конструктивного метаболизма. 
Молочнокислые  бактерии  распространены  там,  где  они  могут  обеспечить 
свои  высокие  потребности  в  питательных  веществах  и  где  имеются  большие 
количества  углеводов,  переработка  которых  даёт  им  необходимую  энергию  для 
роста.  Их  много  в  молоке  и  молочных  продуктах,  на  поверхности  растений  и  в 
местах  разложения  растительных  остатков;  обнаружены  они  в  пищеварительном 
тракте и на слизистых оболочках животных и человека. 
 
Литература 
 
1. 
Современная 
микробиология. 
Прокариоты.под 
редакцией 
Й. 
Ленгелера, Г. Древса, Г. Шлегеля. М., Мир, 2005, том 1.  
2. 
Шлегель Г.Общая микробиология – М.Мир, 1987.- 567с. 
3. 
Bruno J.M., Ragout A.L., Córdoba P.R. and Sineriz F. Continuous 
production of L (+) lactic acid by Lactobacillus casei in two-stage systems. Applied 
Microbiology Biotechnology, March 1999, vol. 51, p. 316-24. 
4. 
J. Aarnikunnas, N. von Weymarn, K. Ronnholm, M. Leisola and A. Palva, 
Metabolic engineering of Lactobacillus fermentum for production of mannitol and pure l-
lactic acid or pyruvate, Biotechnology and Bioengeneering 82 (2003), pp. 653–663.  
5. 
G.M. Djordjevic, J.H. Tchieu and M.H. Saier Jr., Genes involved in control 
of galactose uptake in Lactobacillus brevis and reconstitution of the regulatory system in 
Bacillus subtilis, Journal of Bacteriology 183 (2001), pp. 3224–3236.  
6. 
Davidson B.E.; Lianos R.M.; Cancilla M.R.; Redman N.C. and Hillier A.J. 
Current research on the genetics of lactic acid production by lactic acid bacteria. 
International Dairy Journal, 1995, vol. 5, no. 8, p. 763-784. 
7. 
S. Chaillou, Y.C. Bor, C.A. Batt, P.W. Postma and P.H. Pouwels, Molecular 
cloning and functional expression in Lactobacillus plantarum 80 of xylT, encoding the d-
xylose-H
+
 symporter of Lactobacillus brevis, Applied and Environmental Microbiology 
64 (1998), pp. 4720–4728.  
8.  
Anaerobic Conversion of Lactic Acid to Acetic Acid and 1,2-Propanediol 

by  Lactobacillus buchneri. Stefanie J.W.H.Oude Elferink; Janneke Krooneman, Jan 
C.Gottschal, Sierk F.Spoelstra, Folkert Faber, Frank Driehuis. ID TNO Animal Nutrition, 
Lelystad,1 and Department of Microbiology, University of Groningen, Haren, The 
Netherlands P.125 – 132. 
9.  
Molecular  and  Biochemical  Analysis of Two b-Galactosidases from 
Bifidobacterium infantis HL96. Ming Nihung, Zhicheng Xia, Nien Taihu, Byong H.Lee. 
Department of Food Science and Agricultural Chemistry1 and Department of 
Chemistry,2 McGill University, Ste-Anne-de-Bellevue, Food Research and Development 
Center, Agriculture and Agri-Food Canada, Ste-Hyacinthe, Quebec J2S 8E3,4 Canada, 
and Department of Biochemistry, National Chung Hsing University, Taichung, Taiwan P. 
4256 - 4263. 
 
Түйін 
 
Сүтқышқылды  бактериялар  СҚБ  сүт  өнімдері  жəне  табиғи  микрофлоралы 
өсімдіктер  болып  табылады.  Сүтқышқылды  бактериялардың  негізгі  қасиеті 
олардың  бастапқы  өнім  ретінде  сүт  қышқылды  ашытқы  түзу  қабілеттілігі  болып 
табылады. Сүтқышқылды бактериялар ферментация кезінде сүт қышқылын қантқа 
айналдырады жəне өнімнің сақталуын оргнолептикалық қасиетін жақсартады. 
 
Summary 
 
Lactic acid bacteria (LAB) are natural microflora of plants and dairy products. The 
basic property of lactic bacteria is their ability to form as the main product of 
fermentation a dairy acid. Lactic acid bacteria at a fermentation transform sugar into a 
dairy acid and improve organoleptical properties and safety of products. 

СЕЛЕКЦИОННО-ТЕХНОЛОГИЧЕКИЕ ПРИЕМЫ ПОВЫШЕНИЯ 
ПРОДУКТИВНОСТИ ТАБУННОЙ ЛОШАДИ 
 
 
Нурушев М.Ж. д.б.н., 
(КГУ им. Ч. Валиханова, Кокшетау) 
 
Адаевская  лошадь  в  Казахстане  представляет  собой  своеобразный 
внутрипородный  зональный  тип  казахской  породы,  сложившийся  в  природно-
экономических условиях Аралокаспийской пустынной зоны. Здесь они проявляют 
хорошую  мясную,  молочную  продуктивность,  плодовитость,  выживаемость  и 
хорошие рабочие качества. Их разведение рентабельно, имеются все предпосылки 
создания  адаевской  породы  лошадей. [1] Интенсивность  роста  и  развития 
молодняка адаевских лошадей находится в прямой зависимости от паратипических 
факторов,  и  прежде  всего,  от  количества  и  качества  корма,  чем  и  объясняются 
сезонные  колебания  роста  и  развития  жеребчиков.  Наиболее  интенсивный  рост 
промеров и живой массы происходит в подсосный период, и особенно, в первые 3 
месяца. Отмечено резкое снижение роста живой массы и промеров тела с 18 до 24 
месяцев,  что  является  следствием  сложности  кормодобывания  в  первую 
самостоятельную зимовку жеребчиков.  
Промеры высоты в холке, высоты крупа, обусловленные приростом грудных 
и  тазовых  конечностей,  характеризуются  меньшим  увеличением,  чем  промеры 
косой  длины  туловища,  обхвата,  глубины,  ширины  груди,  обусловленные 
приростом  осевой  части  тела.  Оптимальные  сроки  случки  лошадей  в 
Аралокаспийской зоне, это середина апреля – начало мая.  
Нами установлены высокие темпы роста у жеребят ранних сроков рождения 
по  сравнению  со  сверстниками  поздних  сроков  (июнь,  июль)  в  основном 
объясняются благоприятными кормовыми и климатическими условиями первых 6 
месяцев жизни. 
Живая масса жеребчиков рожденных в марте и апреле составила в 2,5 летнем 
возрасте 321,5-313 кг, кобылок 310,9-304,8 кг, против 294,3 и 290,1 кг у майского, 
281,2 и 280,0 кг июньского сроков рождения.  
В  генофондных  племенных  хозяйствах  «Куланды»  и  «Карагантубек»  
созданы  селекционные  группы  адаевской  лошади  с  общей  численностью 1208 
голов.  Установлено,  что  для  эффективной  селекции  методом  чистопородного 
разведения необходимо иметь минимум 2 генофондных хозяйства и 3-4 племенных 
хозяйств-репродукторов,  а  генетическая  структура  экотипа  должна  состоять  не 
менее чем из 3-х заводских линий и 4-х маточных семейств.  
Метод  чистопородного  разведения  адаевских  лошадей  является  достаточно 
эффективным  средством  повышения  мясной  продуктивности,  не  изменяя  типа 
телосложения, присущего этому экотипу. При этом генетический прогресс уже в I-
м  поколении  составил:  по  высоте  в  холке 2-3 см,  по  живой  массе 24 кг.  В III-IV 
поколении прогресс по живой массе племенных животных генофондного хозяйства 
составил 55,9-61,0 кг по сравнению с исходным поголовьем. 
При организации и проведении селекционно-племенной работы с табунными 
лошадьми  уже  в  начальной  стадии  на  основе  фенотипической  оценки  лучших 
производителей и кобыл следует выделять селекционные группы, и после оценки 
жеребцов по качеству потомства – приступать к закладке генеалогических линий.  

Соблюдение жесткого селекционного пресса при чистопородном разведении 
адаевских  лошадей  позволяет  без  коренного  изменения  технологии  выращивания 
лошадей  существенно  повысить  их  живую  массу.  Так,  племенные  кобылы  и 
жеребцы  превышают  этот  показатель  у  исходного  стада.  При  этом  генетический 
прогресс  по  живой  массе  в III-IV поколении  по  сравнению  с  исходным  стадом 
достигает до 22,7% или 56–61 кг. Эффект селекции во многом предопределяется не 
только  отбором  и  подбором  высокопродуктивных  животных,  но  и  соблюдением 
технологии  выращивания  таких  как:  оптимальные  сроки  случки  и  выжеребки, 
доброкачественным водопоем, своевременной сменой пастбищ. 
Жеребчики  адаевского  экотипа  обладают  достаточно  хорошей  мясной 
продуктивностью. Выход туши зависит от степени развития желудочно-кишечного 
тракта,  а  в  более,  старшем – от  упитанности.  Рост,  развитие  и  формирование 
мясности  у  лошадей  в  условиях  круглогодового  пастбищного  содержания 
подтверждают  единую  закономерность - наиболее  интенсивный  рост  до 6-ти 
месячного возраста, а в дальнейшем ослабление его и высокая степень зависимости 
от паратипических факторов среды. 
Установлено, что в процессе роста животных до 3,5 летнего возраста масса 
туши  увеличилась  с 25,5 до 180,0 кг  или  в 7,06 раза.  В  постнатальный  период 
происходит  неравномерный  рост  частей  туши  и  тканей  (костной,  мышечной  и 
жировой), закономерно чередующейся возрастной последовательностью. За первые 
шесть  месяцев  масса  туши  увеличивается  в 3,38 раза,  а  в  последующие  периоды 
кратность  увеличения  составляет  соответственно: 1,46; 1,21; 1,18 раза. 
Сравнительный  анализ  показал,  что  наиболее  интенсивно  увеличивалась  масса 
осевого  отдела  туши  по  сравнению  с  периферическим.  За  три  с  половиной  года 
осевой  отдел  увеличился  в 7,5 раза,  тогда  как  периферический  в 6,3 раза, 
вследствие чего относительная масса туши этого отдела с возрастом уменьшилась с 
55,9% до 51,6%, а осевого, напротив увеличилась соответствено (с 44,1 до 48,4%). 
Неравномерный рост тканей - костной, мышечной и жировой, формирующих 
мясность  туши  лошадей,  изменяет  не  только  их  соотношение,  но  и  физико-
химические свойства и биологическую ценность мяса.  
Установлено,  что  кожа  адаевских  лошадей  является  хорошим  сырьём  в 
обувной 
промышленности 
и 
производстве 
перчаток. 
Для 
получения 
высококачественного  (более  тяжелого)  кожевенного  сырья  соответствующего 
требованиям  стандарта,  необходимо  широкое  использование  чистопородного 
разведения лошадей массивного типа адаевских лошадей.  
Материнское  поведение  кобыл - это  сложный  комплекс  безусловных 
рефлексов,  направленный  на  охрану  потомства.  Доминантность  инстинкта 
обособления над инстинктом стадности у кобылы в последние часы перед родами и 
первые дни после родов необходимо рассматривать как один из видов поискового 
поведения. Поведение матки перед родами и после складывается из аппетентного 
(поискового)  поведения  и  завершающего  акта (consummatoru akt). Завершающий 
акт,  является  в  собственном  смысле  слова  инстинктивным. «Процесс»  уединения 
кобыл перед родами как видовой признак, видимо, унаследован от диких предков. 
Однако  эта  биологическая  особенность  никак  не  связана  с  желанием  конематки 
«запомнить» жеребенка - зафиксировать его запахи, дать ей привыкнуть к себе, как 
утверждают другие ученые. 
Наиболее  прочная  связь  кобылы  и  жеребенка  отмечена  впервые, 65 дней. 
Она  выражается  в  частом  сосании,  взаимном  грумминге,  секреции  наиболее 

продуктивной части молока от всего сезонного удоя. В дальнейшем связь матери и 
жеребенка  ослабевает.  Жеребенок  через  один  месяц  приучается  к  поеданию 
подножного  корма.  Кобыла  адаевского  экотипа  способна  выкармливать  только 
одного  жеребёнка.  В  начале 3-го  месяца  лактации  удовлетворяется  только  третья 

жүктеу/скачать 2,23 Mb.

Достарыңызбен бөлісу: