Медицина и экология, 2016, 3

22 
Клиническая медицина 
24  Grant  A.  J.  Exploring  student's  percep-
tions of the use of a significant event analysis as a 
part  of  a  portfolio  assessment  process  in  general 
practice, as a tool for learning how to use reflection 
in learning /A. J. Grant, J. D. Vermunt, P. Kenners-
ley //BMC Med. Educ. – 2007. – V. 7. – P. 5. 
25 Guba E. G. Judging the Quality of fourth 
generation evaluation //Fourth Generation Evalu-
ation  /Eds.  E.  G.  Guba,  Y.  S.  Lincoln.  –  London: 
Sage, 1989. – 234 p. 
26 Hammerness K. How teachers learn and 
develop /K. Hammerness, J. Bransford, D. C. Ber-
liner //Prepairing teachers for a Changing World: 
What teachers should learn and be able to Do. – 
San-Francisco: Jossey-Bass, 2005. – P. 358-359. 
27  Harden  R.  M.  How  to  assess  students: 
An  overview  //Med.  Teach.  –  1979.  –  V.  1.  –  P. 
65-70. 
28  Hatton  N.  Reflection  in  teacher  educa-
tion:  Towards  definition  and  implementation  /N. 
Hatton, D. Smith //Teaching Tech. Educ. – 1995. 
– V. 11. – P. 33-49. 
29 Kjaer N. K. Using online portfolio in post-
graduate  training  /N.  K.  Kjaer,  R.  Maagard,  S. 
Wies //Med. Teach. – 2006. – V. 28. – P. 708-712. 
30  Korthagen  F.  A.  J.  Linking  theory  and 
Practice: The Pedagogy of realistik Teacher Edu-
cation /F. A. J. Korthagen, J. Kessels, B. Koster. – 
NY: Lawrence Elbraum Associates, 2001. – 566 p. 
31  Korthagen  F.  A.  J.  Teach  teachers  to 
reflect:  Systematic  reflection  in  training  and 
coaching  of  teachers  /F.  A.  J.  Korthagen,  B. 
Koster,  K.  Melief  //Docenten  leren  reflecteren: 
Systematiche  reflectie  in  de  opleiding  en  be-
geleiding  van  leraren.  –  Soest:  Uitgeverij  Nelis-
sen, 2002. – 344 p. 
32 Lawson M. An e-portfolio in health pro-
fessional education /M. Lawson, D. Nestel, B. Jol-
ly //Med. Educ. – 2004. – V. 38. – P. 569-570. 
33  Mathers  N.  J.  Portfolios  in  continuing 
medical education – effective and efficient? /N. J. 
Mathers, M. C. Challis, A. C. Howe //Med. Educ. – 
1999. –V. 33. – P. 521-530. 
34  Miller  G.  E.  The  assessment  of  clinical 
skilss/competence/performance  //Acad.  Med.  – 
1990. – V. 65. – P. 363-367. 
35 Oerman M. H. Developing a professional 
portfolio in  nursing  //Orthop. Nurs.  –  2002.  –  V. 
21. – P. 73-78. 
36  Paulson  F.  L.  What  makes  a  portfolio  a 
portfolio? Eight thoughfull guidelines that will help 
educators  encourage  self  directed  learning  /F.  L. 
Paulson,  P.  R.  Paulson,  C.  A.  Meyer  //Edicational 
Leadership. – 1991. – №2. – P. 60-63. 
37  Pearson  D.  J.  Portfolio  use  in  vocational 
training: A surwey of GP registrars /D. J. Pearson, P. 
Heywood //Med. Educ. – 2004. – V. 38. – P. 87-95. 
38 Shulman L. S. Teacher portfolios: a theo-
retical  activity  //With  portfolio  in  Hand:  Validating 
the New Teacher Professionalism /Ed. N. Lyons. – 
NY.: Teachers College Press, 1998. – P. 23-28. 
39  Shute  V.  J.  Focus  on  formative  feed-
back //Rev. Educ. Res. – 2008. – V. 78. – P. 153-
189. 
40 Smitter J. W. Can working with an exec-
utive coach improve multisource feedback ratings 
over time? A quasi-experimental field study /J. W. 
Smitter,  M.  London,  R.  Flaut  //Pers.  Psycol.  – 
2003. – V. 56. – P. 23-44. 
 
Поступила 03.06.2016 
Обзоры литературы 
S. T. Kizatova, B. T. Tukbekova, G. S. Kemelova, S. B. Dyusenova 
PORTFOLIO AS A TECHNOLOGY OF LEARNING AND EVALUATION IN MEDICAL UNIVERSITY 
Karaganda state medical university (Karaganda, Kazakhstan) 
 
A portfolio has found application in the area of medical education, not only as a tool for the assessment of hu-
man abilities, manifested in the work, but also as a way to stimulate educational progress of portfolio’s author based on 
his own experience. This article describes the advantages of electronic portfolio, presented the methodology and the 
strategic aspects of using the portfolio as an incentive to learning and a tool for assessing knowledge and skills. 
A portfolio has a great potential, but its implementation fully in practice requires new pedagogical and educa-
tional approaches, as well as a significant investment of time and effort from both the teachers and students. 
Key words:
 portfolio, technology education, assessment 
 
С. Т. Кизатова, Б. Т. Тукбекова, Г. С. Кемелова С. Б. Дюсенова 
ПОРТФОЛИО КАК ТЕХНОЛОГИЯ ОБУЧЕНИЯ И ОЦЕНКИ В МЕДИЦИНСКОМ ВУЗЕ 
Карагандинский государственный медицинский  университет (Караганда, Казахстан)  
 
Портфолио нашло применение в области медицинского образования не только как инструмент для оцен-
ки способностей человека, проявляемых на работе, но и как способ стимулировать образование автора портфо-
лио на основе собственного опыта. В данной статье приведены преимущества электронных портфолио, пред-
ставлены методика и стратегические аспекты использования портфолио в качестве стимула к обучению и ин-
струмента для оценки знаний и навыков. 
Портфолио имеет большой потенциал, однако его реализация в полной мере на практике требует новых 
педагогических и образовательных подходов, а также значительных затрат сил и времени как от преподавате-
лей, так и от обучающихся. 
Ключевые слова:
 портфолио, технология обучения, оценка 

23 
Медицина и экология, 2016, 3 
Клиническая медицина 
Обзоры литературы 
При гидатидозном эхинококкозе имеются 
абсолютные показания к хирургическому лече-
нию [12]. Для интраоперационной обработки 
гидатидных кист необходимы высокоэффек-
тивные методы, губительно влияющие на аце-
фалоцисты эхинококка как наиболее устойчи-
вое звено паразита и самого важного фактора 
в возникновении послеоперационных рециди-
вов заболевания [7, 25]. По данным сотрудни-
ков факультетской хирургической клиники им. 
Н. Н. Бурденко ММА им. И.М. Сеченова, про-
тосколексы эхинококка погибают практически 
в первые минуты воздействия химическими 
агентами [17, 20]. Наиболее устойчивым заро-
дышевым элементом эхинококка оказались 
ацефалоцисты, которые прежде хирургами не 
контролировались. При этом более устойчивы-
ми оказались гигантские ацефалоцисты (до 3 
000 мкм). Именно они ответственны за реци-
див заболевания после хирургических вмеша-
тельств [24]. Общепринятые в хирургии эхино-
коккоза гермициды  –  формалин, 10 -20% ги-
пертонические растворы хлорида натрия 
–
оказались малоэффективными, так как не при-
водили к гибели ацефалоцист даже при экспо-
зиции 10 -15 мин. Увеличение времени экспо-
зиции (в особенности при применении форма-
лина) повышало токсическое действие препа-
рата на организм человека [7].
 
С конца  XIX  века были начаты поиски 
антипаразитарных средств для интраопераци-
онного применения [8]. 
А. А. Бобров 
использовал 5% раствор карболовой кислоты, 
Franke  –  1%  раствор формалина,  R.  Bourgeon 
et al. – 5% раствор формалина, И. Г. Скворцов 
– антибиотики, Г. Д. Дудкевич  –  10% раствор 
формалина,  W.  Zimmerli,  C.  Scharma  –  10% 
раствор формалина в смеси с 10% раствором 
поваренной соли, W. Bross – сложный раствор, 
содержащий спирт, формалин, перекись водо-
рода, нитрат серебра, Д. Арнаудов, А. Де-
реджан  –  эфир,  P.  F.  Saidi,  Р. Г. Григорянц и 
соавт.  –  5% раствор нитрата серебра, А. Т. 
Пулатов – 70% этиловый спирт,  B. Saade et al. 
– 0,1% раствор цетремида, С. П. Гайбатов, М. 
М. Омаров  –  протеолитические ферменты,  J. 
Djilali  –  перекись водорода, Б. А. Акматов 
– 
горячий (+70 С
0
) раствор, Т. 
Todorov,  D. 
Yurukova, H. Togel, А. А. Эль -Мулля – 30% ги-
пертонический раствор поваренной соли и пе-
рекиси водорода, А. А. Мовчун и соавт., Б. С. 
Турсунов и соавт.  –  80-100% глицерин [3, 9, 
19, 24, 28, 29, 34, 36]. Наибольшее распро-
странение получил 9% раствор формалина, 
предложенный С. И. Спасокукоцким [27].
 
А. А. 
Бобров для дезинфекции полости кисты и пре-
дупреждения рецидивов после вскрытия и уда-
ления ее содержимого предлагал обрабаты-
вать стенки кисты 10% настойкой йода с по-
следующим протиранием марлевыми салфет-
ками. 
В настоящее время наиболее часто при-
меняются следующие гермицидные препара-
ты: гипертонический раствор поваренной соли 
(15-30%), спирт (70 -96%), раствор хлоргекси-
дина (0,5 -1%) в спирте, перекись водорода 
(3,0%). Эти препараты менее токсичны, чем 
формалин, однако описаны осложнения после 
использования гипертонического раствора у 
ребенка с развитием гипернатриемии и ле-
тальным исходом [35]. Некоторые авторы 
предлагают использовать 50 С
0
 спиртовой рас-
твор празиквантеля (5 мг/мл),  «йокса» (1:40), 
0,1%  раствор хлористого кальция, хлоргекси-
дина биглюконат
 
в низких концентрациях 
(0,4%) [13, 37]. Недостатками большинства 
© 
Д. К. Калиева
, 
2016 
УДК 616.831-002.951/36-089 
 
Д. К. Калиева  
 
МЕТОДЫ САНАЦИИ ОСТАТОЧНОЙ ПОЛОСТИ ПРИ ЭХИНОКОККЭКТОМИИ  
 
Кафедра хирургических болезней №2 и патологической анатомии  
Карагандинского государственного медицинского университета (Караганда, Казахстан)  
Для интраоперационной обработки гидатидных кист необходимы высокоэффективные методы, губитель-
но влияющие на зародышевые элементы эхинококка. В настоящее время существуют различные методы обезза-
раживания остаточной полости при проведении эхинококкэктомии. Условно данные методы делятся на химиче-
ские, физические и биологические.   В статье представлены современные методы санации остаточной полости 
при проведении эхинококкэктомии. Описаны механизмы воздействия химических, физических методов обезза-
раживания на зародышевые элементы эхинококковой кисты. Представлены положительные и отрицательные 
стороны каждого описанного метода. 
Ключевые слова:
 эхинококкэктомия, остаточная полость, обеззараживание, интраоперационная обработ-
ка, методы санации
 

24 
Клиническая медицина 
Обзоры литературы 
препаратов является необходимость длитель-
ной экспозиции в полости кисты и возможное 
разведение препарата в процессе экспозиции 
со снижением его эффективной концентрации 
[30]. Хотя 2 -5% раствор формалина в глице-
рине остается наиболее популярным противо-
паразитарным средством, его применение не-
редко сопровождается образование инфиль-
тратов, тахикардией, снижением артериально-
го давления, явлениями токсического шока и 
т. д. Некоторые хирурги используют более 
концентрированные растворы формалина 15 -
40%, в связи с чем отравления больных 
наблюдаются чаще и описан ряд летальных 
исходов [5]. Формалин и йод относятся к хими-
ческим веществам раздражающего и прижига-
ющего действия, которые могут вызывать по-
вреждение окружающей паразита ткани и тем 
самым привести к различным послеоперацион-
ным осложнениям, а также проявляют токси-
ческое действие на организм в целом [3]. От-
мечены тяжелые последствия системной и би-
лиарной абсорбции концентрированного рас-
твора сколицидного агента (анафилактический 
шок, склерозирующий холангит) [22]. По дан-
ным Г. Б. Гаджиабакарова (2004) при воздей-
ствии 4% раствора формалина в тканях пече-
ни возникают дистрофические изменения ге-
патоцитов, характерные для гепатита, а также 
воспалительные изменения вокруг желчевыво-
дящих путей. Применение 80% раствора гли-
церина при нагноении фиброзной капсулы 
проявляется гепатоксическим и нефротоксиче-
ским действием на организм [8]. Ряд авторов 
применяют 33% раствор перекиси водорода 
(пергидроль), время экспозиции 7
-10 мин., 
который обладает выраженным местным при-
жигающим действием [4]. Результаты сравни-
тельного исследования губительного воздей-
ствия гипертонических растворов хлорида 
натрия и глицерина на зародышевые элементы 
гидатидного эхинококка показали, что выра-
женную гермицидную активность проявили 80-
100% глицерин и 30% гипертонический рас-
твор хлорида натрия, которые вызывали ги-
бель зародышевых элементов на 5 -7 мин экс-
позиции. Однако внутри формирующихся, не 
имеющих связи с основной кистой (то есть 
изолированных) мелких кист гермицид эти 
препараты своего действия не оказывали, за-
родышевые элементы оставались жизнеспо-
собными. Губительное действие 80 -100% вод-
ного раствора глицерина проявлялось только 
через 5-6 ч экспозиции [31].
 
В последнее время для обеззараживания 
ложа паразита успешно применяются препара-
ты йода: 3 -5% растворы йода с последующей 
инактивацией его 30% раствором тиосульфата 
натрия, 1% раствор йодфиксонала [5].
 
По дан-
ным ВОЗ, спирт (70 -95%), солевой гипертони-
ческий раствор (15 -20%), раствор цетримида 
(0,5%) являются наименее токсичными. Для 
оптимальной эффективности время экспозиции 
химического агента не должно превышать 15 
минут [33]. Однако зафиксированы случаи раз-
вития метгемоглобинемии при применении рас-
твора цетримида (0,5%) [38]. Большое количе-
ство больных, отсутствие эффективных парази-
тотропных химиопрепаратов, высокая леталь-
ность эхинококкоза печени  –  все эти факторы 
обусловливают актуальность разработки новых 
эффективных методов лечения [18].
 
Для повышения надежности противопа-
разитарной обработки, помимо химических 
средств, предложено использовать физиче-
ские методы воздействия  – «озвучивание» по-
лости низкочастотным ультразвуком, облуче-
ние различными видами лазеров (гелий
-
неоновый, СО
2
- лазеры), плазменно-аргоновый 
коагулятор, пневмотермокоагуляция, обработ-
ка паром, плазменным потоком гелия. Приме-
няется, но не получила широкого распростра-
нения криодеструкция остаточной полости 
[30]. В связи с громоздкостью и недоступно-
стью аппаратуры перечисленные выше спосо-
бы не нашли широкого применения в хирургии 
эхинококкоза [8]. Предложенная Б. А. Акмато-
вым (1987) обработка остаточной полости 
фиброзной капсулы растворами антисептиков, 
нагретых до 60-70 С
0
, имеет ряд существенных 
недостатков. Этот метод сопряжен с неудоб-
ством термостатирования и использования 
горячих растворов во время сложных полост-
ных операций, особенно при множественных 
формах эхинококкоза, а также связан с воз-
можностью ожогов органов и тканей опериру-
емого больного  через тонкую  фиброзную кап-
сулу обезвреживаемых паразитарных кист или 
при случайной разгерметизации системы из -за 
перфузии горячих растворов [2]. Применение 
высоконапорной гидропрессивной обработки 
остаточной полости может способствовать 
травматизации стенок фиброзной капсулы, 
открытию желчных свищей, желчеистечению, 
развитию холангита, кровотечению в фиброз-
ную полость, а также неблагоприятно сказы-
ваться на сокращении остаточной полости 
[26]. Применение низкочастотного ультразвука 
малоэффективно. Это объясняется тем, что в 
брюшной полости ларвоцисты эхинококка ча-
ще достигают больших размеров и имеют не-
правильную форму, в результате чего не все-

25 
Медицина и экология, 2016, 3 
Клиническая медицина 
Обзоры литературы 
гда обеспечиваются основные условия губи-
тельного действия ультразвука на зародыше-
вые элементы паразита  – полное перемешива-
ние жидкой фазы под влиянием этого агента. 
Неудобство подведения ультразвукового вол-
новода к гидатидной кисте при поддиафраг-
мальной локализации и глубоком внутриорган-
ном расположении паразита являются еще 
одним фактором ограничения применения уль-
тразвука [21]. Предложена интраоперацион-
ная обработка остаточной полости низкоча-
стотным ультразвуковым воздействием 
(кавитацией) с санацией раствором 0,05% уре-
султана [23]. Попытки обезвреживания заро-
дышевых элементов при хирургическом лече-
нии рентгеновскими и ультрафиолетовыми 
лучами и воздействия УВЧ не дали обнадежи-
вающих результатов.  
Сотрудниками НЦХ им. академика В. Ва-
хидова  МЗ  республики  Узбекистан  (отделение 
хирургии печени и желчных путей и лаборато-
рия патологической анатомии) были изучены 
морфологические изменения, происходящие в 
фиброзных капсулах после обработки их излу-
чением углекислого лазера и плазменным по-
током гелия. Проведенные морфологические 
исследования показали, что разрушения фиб-
розной капсулы не происходит, в то же время 
оба способа обработки капсулы обладают 
весьма выраженным  антипаразитарным дей-
ствием по отношению к ларвоцистам, которые 
могли попасть в капсулу или вглубь ее стенки. 
Однако для полной эффективности данных 
методов полость кисты предварительно обра-
батывали 3% раствором перекиси водорода, 
70% раствором этилового спирта. Кроме того, 
конструкция лазерного скальпеля не позволя-
ет свободно манипулировать в труднодоступ-
ных участках печени. К тому же излучение СО
2
-лазера поглощается и рассеивается даже тон-
ким слоем жидкости, снижая его паразитоцид-
ный эффект. Для качественной обработки по-
лости приходится постоянно осушать ее мар-
левыми тампонами. Доказано, что излучение 
азотного (ультрафиолетового) лазера (УФЛ) и 
арсенид-галлиевого (инфракрасного) лазера 
(ИКЛ) на жизнеспособность зародышевых эле-
ментов не влияет [32]. Увеличение длительно-
сти импульса приводит к значительному воз-
растанию температуры ткани. В результате 
формируется зона абляции, окруженная зоной 
необратимого термонекроза, и расширенная 
зона коагуляционного повреждения за счет 
теплопередачи в тканях. Таким образом, вы-
бор глубины абляционного и коагуляционного 
воздействия, необходимого в каждом конкрет-
ном случае, определяется особенностями дли-
ны волны и техническими характеристиками 
конкретной лазерной установки. Для полно-
ценной работы необходимо использовать раз-
ные типы абляционного воздействия даже в 
рамках одной процедуры [10]. Ряд авторов 
предлагают применение местной озонотера-
пии. Озон является сильным антимикробным, 
антивирусным, противогрибковым средством, 
вызывающим гибель микроогранизмов путем 
повреждения плазматической мембраны, при-
водящей к утрате жизнеспособности клеток и 
способности к размножению. Гибель организ-
мов находится в прямо пропорциональной за-
висимости от концентрации озона и времени 
экспозиции. Противопоказанием к применению 
озона является высокая чувствительность к 
озону, тромбоцитопения. Оптимальное время 
воздействия озоном при обработке остаточной 
полости должно быть не меньше 10 мин [1]. М. 
А. Кахаров и соавт. предложили проводить 
перицистэктомию путем  «выпаривания»  фиб-
розной капсулы при помощи плазменной уста-
новки СУРП -М с гелиевым источником. Мощ-
ность, направление плазменной струи и про-
должительность контакта регулируется в зави-
симости от плотности и толщины удаляемой 
фиброзной оболочки. Недостатком данного 
метода является образование ожогового стру-
па, который необходимо постоянно очищать 
влажными салфетками. При интимном сраще-
нии фиброзной капсулы с диафрагмой, близо-
сти нижней полой вены участок фиброзной 
капсулы оставляли и производили ее 
«выпаривание» до 50% толщины, что снижает 
эффективность обработки. Также клинические 
наблюдения показали, что после перицистэк-
томии с использованием плазменной установ-
ки возможно развитие печеночной недостаточ-
ности в ранний послеоперационный период. 
Причина лежит в пролонгированном действии 
термического фактора на печеночную парен-
химу [16]. Этими же авторами (М. А. Кахаров и 
соавт., 2003) предложен метод обработки 
остаточной полости с применением антипара-
зитарных средств и ультразвуковой кавитации. 
Авторы использовали модифицированный ап-
парат  «УРСК-7Н-18»  или  «Узор».  После обра-
ботки остаточной полости антипаразитарными 
средствами в течение 3 мин осуществляли уль-
тразвуковую кавитацию через жидкость 
(гипертонический раствор хлорида натрия), 
введенную в опорожненную кисту. Как показа-
ли исследования, через 30 с после начала про-
цедуры разрушались оболочки сколексов, а 
через 2 мин они превращались в гомогенную, 
нежизнеспособную массу. Недостатком данно-
го метода является необходимость примене-

26 

жүктеу/скачать 5,25 Mb.

Достарыңызбен бөлісу: