Қорытынды
1. Сезімдік зерттеулердің нəтижелері бойынша «Фелуцен» минералдық - азықтық
коспамен азықтандырылған сауын сиыр сүті жəне күнделікті рационмен азықтандырылған
сауын сиыр сүті толығымен мемлекеттік стандарттың талаптарына сай.
2. «Фелуцен» минералдық - азықтық коспамен азықтандырылған сауын сиыр сүтінің
майлылығы күнделікті рационмен азықтандырылған сауын сиыр сүтінің майлылығынан
жоғары болды. Қалған көрсеткіштері шамалас болды.
3. Біздің ғылыми зерттеу нəтижелері бойынша «Фелуцен» азықтық қоспаны сауын
сиыр рационына қолданған тиімді. Сүттің майлылығы жоғарылайды.
Əдебиеттер
1. Барақбаев Б., Сүт жəне сүт тағамдары, «Қайнар», Алматы, 1989.-170б.
2. Қырықбайұлы С.,Телеуғали Т.М., «Ветеринариялық санитариялық сараптау
практикумы» Алматы, Агроуниверситет, 2007.-362б.
261
3. Житенко П. В., Боровков М. Ф. Ветеринарная санитарная экспертиза продуктов
животноводства. Москва, Колос, 2000 г. с. 335.
Найманбеккызы А., Ромашев К.М., Жумагелдиев А.А, Аккозова А.С., Рожаев Б.Г
ВЕТСАНЭКСПЕРТИЗА И ОЦЕНКА МОЛОКА КОРОВ ПРИНИМАВШИЕ В РАЦИОНЕ
МИНЕРАЛЬНО - КОРМОВУЮ ДОБАВКУ «ФЕЛУЦЕН»
В статье приведены органолептические и лабораторные показатели молока дойных
коров, которые в рационе кормления принимали минерально - кормовую добавку
«Фелуцен».
Ключевые слова:
Фелуцен, добавка, корова, органолептические исследования,
лабораторные исследования.
Naimanbekkyzy A.,Romashev K.M., Zhumageldiev A.A., Akkozova A.S., Rojaev B.G.
VETERINARY SANITARY EXAMINATION AND ESTIMATION OF MILK OF COWS
ACCEPTING IN A RATION "FELUCEN"
The article presents the organoleptic characteristics of milk and laboratory dairy cows which
in the diet took a feed additive 'Felucen'.
Key words:
Felucen, addition, cow, sensory studies, laboratory tests.
ƏОЖ: 636.3.082.+ 636.3:612
Несіпбаев Т., Несіпбаева А.Қ., Жылқышыбаева М.М.,
Талпақов Б.
Қазақ ұлттық аграрлық университеті
ҰЯҢ ЖҮНДІ ДЕГЕРЕС ҚОЙЛАРЫ ҚАНЫНДАҒЫ ЛЕЙКОЦИТТЕР САНЫНЫҢ
МАУСЫМДЫҚ ӨЗГЕРІСТЕРІ МЕН ФАГОЦИТОЗ БЕЛСЕНДІЛІГІНІҢ
КӨРСЕТКІШТЕРІ
Кілт сөздер:
Ұяң ақ жүнді, ұяң сұрғылт жүнді, дегерес қойлары, лейкоцит, фагоцитоз
белсенділігі,
Кіріспе
Қандай бір болмасын организмнің қалыпты физиологиялық жағдайын анықтау -
биологияның маңызды проблемаларының бірі болып саналады. Организмге тəн
физиологиялық критерияларды анықтап алмай, малды өсіру, азықтандыру, күтіп-бағу
мəселелерін оң нəтижелі шешіп, табысқа жету мүмкін болмайды. Бұл қағида барлық түлік
үшін маңызды, соның ішінде еліміздегі мал шаруашылығының негізгі саласы – қой
шаруашылығы үшін де. Соңғы онбес- жиырма жылдықта қой саны əлемде 11,6 пайызға, ал
жүн өнімі 30 пайызға азайыпты. Қой санының кемуіне байланысты қой етінің бағасы 32,1
пайызға өсе түскен (Қ.Ү.Медеубеков т.б.). Осындай үрдістер тəуелсіздіктің алғашқы
жылдарында біздің елде де байқалды. Осының нəтижесінде Республикамыздың ішкі
саудасында қой етіне деген үлкен сұраныс туындап, етті-майлы қой тұқымын қарқындата
өсіруге мұқтаждық пайда болды [1]. Осымен байланысты мал басын көбейту, оның
денсаулығын сақтау, өнімділігін арттыру мақсатында жəне мал дəрігірлік-санитариялық іс-
262
шараларды нəтижелі жүргізіп, қоршаған ортаның малдың физиологиялық күйіне əсерінің
сипатын бағалау мақсатында биолог мамандар малдың, соның ішінде қойдың да, нақтылы
өсіру аймағында физиологиялық-морфологиялық статусын жан-жақты зерттеулері қажет
(Терентьев С.М.,1970,1978; Баймуканов A.A., 1982; Селимсултанова JI.A., 2010). Демек,
өсіру ортасының жағдайына жақсы бейімделе алатын, генетикалық əлеуеті жоғары
тұқымды таңдап, олардың басын көбейту қой шаруашылығының өзекті проблемаларының
бірі. Баяндалған жайттармен жəне əлемде ашық түсті биязылау жəне қылшықты жүндерге
сұраныстың артуымен байланысты республика қой шаруашылығында еті бағалы азық-
түлік, ал жүні кілем-тоқыма өндірісі үшін құнды шикізат көзі болып табылатын биязылау
жəне қылшық жүнді қой тұқымдарын көбейтуге бағытталған селекциялық жұмыстар
жоспарлы түрде жүзеге асырылуда. Осындай жүйелі селекциялық жұмыстардың жемісі
ретінде Қазақ ұлттық аграрлық университеті ғалымдарының [2] қатысуымен
шаруашылыққа тиімді белгілерінің жоғары сапалылығымен ерекшеленетін дегерес
қойының биязылау жəне ұяң жүнді тұқымдық типтері шығарылып, шаруашылықтарға
таралуда. Мысалы, Республиканың шөл жəне шөлейт аймақтарында аудандастырылған
дегерес қойлары нарық талабына сəйкес соңғы жылдары Алматы облысының тау бөктері
аймақтарында өсіріле бастады. Ал, жаңа экологиялық аймаққа тап болған жануарлар өз
тіршілігін сақтау үшін қоршаған ортаның құбылмалы жағдайларына мүлтіксіз бейімделуге
мəжбүр болады, сондықтан оның организмінде бейімделу процестері толассыз жүріп
отырады . Организмнің функционалдық жүйесінің қалыпты əрекетін қамтамасыз етуге
қажет осы бейімделу процестерінің мəні мен механизмдерін зерттеу, организмнің
бейімделгіштік қабілетінің заңдылықтарын анықтау - физиология ғылымының басым
міндеттерінің бірі болып табылады [3,4,5]. Өкінішке орай жоғарыда аталған қой
тұқымдарының функционалдық жүйелерінің, соның ішінде қан жүйесінің, жаңа
экологиялық жағдайындағы қалыпты физиологиялық параметрлері, олардың маусымдық
ауытқулары толық зерттелмеген. Бұл бағыттағы мағлұматтар зерттеу нысандарының
қоршаған ортаның жаңа жағдайларына бейімделгіштік қабілетін физиологиялық тұрғыдан
бағалау үшін қажет. Осымен байланысты түрлі генотипті құйрықты қойлардың интерьерлік
қасиеттерін зерттеу, малдың орта жағдайына бейімделгіштік қабілетін физиологиялық
тұрғыдан бағалаудың теориялық жəне практикалық маңызы зор. Біз таңдаған зерттеу
нысаны – дегерес тұқымды қойлар, республиканың шөлейт аймақтарында іріктеліп
өсіріліп, қазіргі кезде оның екі тармағы (типі) – биязылау жəне ұяң жүнді, Алматы
облысының тау бөктерлік аймақтарында өсіріліп жүр. Осыған орай аталған қой тұқымының
осы екі тармағының еліміздің таулы аймақтарының биогеохимиялық жағдайындағы
физиологиялық параметрлері терең зерттелмеген. Оқырман қаперіне ұсынылып отырған
біздің мақаламыз осындай олқылықты азайту мақсатында жүргізілген тəжірибелер
нəтижесі болып табылады.
Талқылауға ұсынылып отырған бұл мақалада мемлекеттік тапсырыс негізінде
атқарылған іргелі зерттеулердің «Денсаулық сақтауға, ауыл шаруашылығына жəне
қоршаған ортаны қорғауға арналған ғылыми технологияларды құрудың биологиялық
негіздері» атты Бағдарламасына сəйкес бастау алып, қазіргі кезде кафедраның ынталы
тақырыбына айналған ғылыми-зерттеу жұмыстардың нəтижелері баяндалған. Тəжірибелер
Алматы облысындағы «Мəди» атты шаруа қожалығы жағдайында жүргізілді. Зерттеу
нысандары ретінде асыл тұқымды ұяң жүнді дегерес қойлары (ҰЖДҚ) пайдаланылды.
Тəжірибелер төрт серияда - қысқы, көктемгі, жазғы жəне күзгі жайылым жағдайларында
атқарылды. Физиологиялық бақылауда бас-аяғы 10 бас қой болды.
Тəжірибедегі малдан қанды жайылымға шығар алдында, ашқарын жағдайында, ойық
венадан алдық. Ұю процесінен қанды гепарин көмегімен қорғадық та, оның морфологиялық
құрамын PS-5 атты гематологиялық талдағыш көмегімен зерттедік. Лейкоциттер санын
анықтау мақсатында 0,9 % физиологиялық ерітінді құйылған шыны ыдысқа 1:500
263
пропорциясында сұйылтылған қан сынамасына 3 тамшы «Lyzer Globin» реактивін қосып,
гемолиз тудырдық. Араға 3 минут салып, қан сынамасын гематологиялық талдағыш
детекторының астына қойдық та, лейкоциттер санын анықтадық.
Қанның фагоцитарлық белсенділігі – нейтрофильдердің жалпы санынан олардың
фагоцитозға қатысқан санының пайыздық үлесін есептеу арқылы анықталды.
Лейкоциттердің фагоцитарлық белсенділігін анықтау үшін əр топтағы малдан ішінде 0,05
миллилитр гепарині бар пəктелген (стерилизацияланған) пробиркаларға бір миллилитрден
қан алынды. Əр побиркадағы қан антикагулянтпен ақырын жəне мұқият араластырылды.
Осыдан соң əр пробиркадағы қанға бір тəулік бойы арнайы ортада өсіріліп, стандартқа
сəйкес 1 миллиардтық E.coli (штамм 209, 997) өскіні (культурасы) бар 0,1 мл. мөлшерінде
ақ тұнбалы сұйықтық құйылды. Пробиркалардағы қан ақырын араластырылып, 30 минутқа
37
0
С температуралы термостатқа қойылды. Осы мерзім өткен соң пробиркалардағы қаннан
төсеніш шыныларына жұқа жағынды (мазок) дайындалды да, ол метил спирті арқылы
бекітілді (кептірілді). Одан кейін жағынды Романовский-Гимза əдісімен боялды. Зерттеу
барысынада кем дегенде 200 нейтрофиль тексеріліп, олардың фагоцитозға
қатысқандарының саны пайызбен (процентпен) есептелініп шығарылды. Фагоцитарлық
индекс - фагоцитоз кезінде бір нейтрофиль қарбыған микроб санының орташа шамасын
анықтау арқылы есептелді.
Тəжірибеде жинақталған материалдар Н.А.Плохинский мен Е.А.Меркурьевалардың
вариациялық статистика тəсілі негізінде «Biomet» компьютерлік бағдарламасы арқылы
биометриялық өңдеуден өткізілді. Сенімділік көрсеткіші Стьюдент кестесі көмегімен
анықталды. Мақалада сенімділік көрсеткіші Р < 0,05 - 0,01 аралығындағы деректер ғана
көрсетілді.
Осы тəжірибелерде қандағы лейкоциттер саны ақ жүнді қойларда көктемгі жəне
жазғы жайылым жағдайларында біртіндеп артып, күзгі жайылым жағдайында айтарлықтай
кеміді де, қысқы көрсеткіштен 30 пайызға жуық төмен болды. Сұрғылт жүнді қойлардың
қанында лейкоциттер саны көктем жəне жазғы жайылым жағдайларында жоғары деңгейге
көтерілді де, қысқы жəне күзгі жайылым жағдайларында бұл көрсеткіш 5 пайызға жуық
кеміді (1- сурет).
Абсцисс өсінде: I–қыс, II- көктем, III- жаз, IV- күз; 1-Ұяң ақ жүнді жəне 2-Ұяң сұрғылт
жүнді дегерес қойлары. Ординат өсінде: А- лейкоциттер саны, х10
9
/л; Б-фагоцитарлық
белсенділік, %; В- фагоцитарлық индекс, бірлік.
1 сурет - Ұяң жүнді дегерес қойлары қанындағы лейкоциттер саны мен фагоцитоз
белсенділігі
264
Жыл маусымына сəйкес фагоцитарлық көрсеткіш пен фагоцитарлық индекс
көрсеткіштері де ауытқып отырды. Фагоцитарлық белсенділіктің төмен деңгейі көктемгі
жайылым жағдайында байқалса, жаз айларында бұл көрсеткіш ақ жүнді қойларда 10
пайызға, сұрғылт жүнді қойларда 15 пайызға жуық көтерілді. Ал қысқы жайылым
жайындағы бұл көрсеткіш жаз бен күз айларына қарағанда төмен болғанымен, көктемгі
көрсеткішке қарағанда қойлардың екі типінде де жоғары болды. Фагоцитарлық көрсеткіш
көктем мен жазғы жайылым жағдайларында айтарлықтай өсті. Күзгі жайылым жағдайында
бұл көрсеткіш 40 пайызға жуық төмендеп бірдей деңгейде тұрақтады.
Салыстырмалы түрде зерттелген дегерес қойының бұл типтерінің қанында жазғы
жайылым жағдайында лейкоциттер саны айтарлықтай жоғарылады. Сонымен қатар,
фагоцитарлық белсенділіктің қыс жəне көктемгі жайылым жағдайларындағы көрсеткіші
төмен болса, ол жаз бен күз айларында айтарлықтай жоғарылады. Бұл жайтты сұрғылт
жүнді қойлар организмінің резистенттігінің жоғарылығымен түсіндіруге болады.
Ғылыми əдебиетте күз жəне жаз маусымдарында қыс жəне көктем маусымдарымен
салыстырғанда қанның көрсеткіштері жақсырақ болады [1] деп көрсетілген. Біздің
деректерге қарағанда қан көрсеткіштерінде маусымдық өзгерістер байқалғанымен, дəл
осындай қатал заңдылық анықталмады. Демек, қан көрсеткіштерінің динамикасына тек
жыл маусымы ғана емес, малдың биологиялық ерекшеліктері мен олардың орта жағдайына
бейімделгіштік қасиеттері де белгілі деңгейде өз ықпалын тигізеді.
Сонымен, біздің зерттеулерімізде байқалған жалпы заңдылық – лейкоциттер санының
жыл маусымына байланысты ауытқып отыратыны: жаз жəне күз маусымдарында
лейкоциттер саны көбейіп, қыс жəне көктем айларында – азайып отырды. Бұл жайтты жыл
маусымына байланысты организмнің иммунологиялық күйінің өзгеріп отыруымен
түсіндіруге болады. Көктем айларында жануарлар қабылдайтын азығының құрамындағы
өзгерістерге байланысты əркез темір, белок, дəрмендəрілер (витаминдер) мен
микроэлементтер тапшылығына ұшырайды. Мал қанындағы лейкоциттер саны жыл
маусымына байланысты ауытқып отырады: жаз жəне күз маусымдарында лейкоциттер
саны көбейіп, қыс жəне көктем айларында – азайып отырды. Демек, жыл маусымына
байланысты организмнің иммунологиялық күйі өзгеріп отырады.
Қорытынды
Қан көрсеткіштері деңгейіндегі аутқуларға қарап, қой тұқымының физиологиялық
жағдайына баға беруге болады. Бұл жайтты мал организімінің резистенттілігінің
жоғарлылығымен түсіндіруге болады. Организмде лейкоциттердің антиденелер түзуі мен
бөгде белоктарды залалсыздандыру қабілетіне ие екендігіне көз жеткіземіз. Қандайда
болмасын сыртқы орта факторларының əсеріне қарсы тұру қабілеті мен төзімділігін
байқауға болады.
Əдебиеттер
1.
Садыкулов Т.С., Адылканова Ш.Р., Ким Г.Л. Курдючные овцы Казахстана //
Вестник с/х. науки Казахстана. – 2003. - №4. - с 38-40.
2.
Садыкулов Т.С., Адылканова Ш.Р., Нуртулеова Б.Е. Мясная продуктивность ягнят
сарыаркинской породы в условиях Юго- востока Казахстана // Материалы международной
конференций, посвященной 100- летию Ермекова М.А. Алматы 2006г .- с166-169
3.
Емельяненко П.А. и др. Методические указания по тестированию естественной
резистентности телят. - М., 1980.-С. 25-36.
4.
Зайнчковский В.И., Косых В.П., Сатурн В.С., Дрофе В., Панютич М.
Гематологические показатели крыс при выпайке озонированной водой // Мат. Учебно-
метод. и научно – произ. конф: ин-та вет. Медицины Ом ГАУ.-Тез. докл.за 1995-1997 гг.-
Омск: изд. ОмГАУ. 1998-с.48-49.
265
5.
Даугалиева Э.Х., Сидоркин В.А., Семенов С.В. и соавт. Влияние ивермека на
показатели иммунного ответа у животных // Ветеринария – 2000- №12.- с. 29-30.
Анализ результатов исследования показал, что на динамику показателей крови
оказывают влияние не только сезоны года, но и породные особенности животных,
продуктивные качества животных, экологические условия среды обитания. Дегерес со
светло-серой окраской шерсти отличаются более спокойной реактивностью системы крови
на изменения условий содержания, что свидетельствует об их хорошей приспособленности
к условиям зоны разведения. Следовательно, продуктивность, воспроизводительная
способность, адаптационные возможности к условиям обитания у этой внутрипородной
группы животных, судя по уровню факторов естественной резистентности организма,
должны выгодно отличаться от сравниваемой группы животных.
The analysis of research results showed that on the dynamics indicators blood appearing
influence not only seasons of year but also pedigree features of animals, productive qualities of
animals, ecological terms of habitation. Degeress with the pink-grey coloring of wool difference
in more reactivity of the system of blood on the changes of terms of maintenance, that testifies to
their good adjusted to the terms of zone of breeding. Consequently, productivity, reproductive
ability, adaptation possibilities to the terms of habitation at this into breeding group of animals,
judging on the level of factors of natural resistently of organism must advantageously difference
from the compared group of animals.
UDC 636.021:619
Ospanov Y.K., Schots A.,Akhmetova G.D.
Kazakh national agrarian university
ROLE OF IMMUNE SYSTEM OF AN ANIMAL ORGANISM AGAINST ROUNDWORMS
Annotation
Nematode parasitism is a severe barrier to animal organism all over the world. Because,
parasites adapted to every ecosystem and they diminish mainly profit of production animals.
Review has done to show how an organism immune system responds to nematodes and treatment
of body with different drugs. Sometimes drugs were effective when they were combined with other
proper drug. First of all, it was founded that dendritic cells are inducers of cytokines like IL-6, IL-
10and TNF-αwhich are resulted in inflammation and induction of IgE and eosinophils. As another
immune system cytokine IL-25 was investigated. It induces mainly cytokines like IL-4, IL-5 and
IL-13. They are also like dendrytic cells’ cytokinesswiched to induce eosinophils and IgE. As a
result, eosinophils suppressed second larvae infection. Meanwhile, IgE suppressed nematodes by
binding proteins from infecting worm.
Key words
: nematodes, dentritic cells, eosinophils, IgE.
Introduction
One of the main functions of an organism is to protect against invading bacteria, viruses,
fungi and worms. The immune system is a complex organ that acts against indicated pathogens.
The immune system consists of two mains parts: innate and adaptive immunity. When pathogens
invade an organism the innate immune system will respond first. It is carried out by neutrophils,
macrophages, natural killer cells and granulocytes. If innate immune system cannot cope with
pathogen, adaptive immunity will respond to suppress the invading pathogen.They are antigen
266
presenting dendritic cells and macrophage, antigen dependant T and B cells. Localization of
immune system cells are central(thymus and bone marrow) and peripheral (lymph nodes,
appendix, Payer’s Patches, spleen) organs. After signaling of pathogen cytokines are released into
blood for further antihelminthicreactions.
Word “parasite” comes from Greek “parasitos” para-alongside, sitos-food. As I
understand, this can be explained as: “eating at the side of, when both seated at the same table”.
Parasites are organisms which gain feed and defense from other organisms. Parasites can be found
as protozoan, helminthes and other flying organisms. Flukes, tapeworms and nematodes are
classified as helminthes.Phylum nematode approximately has 1 million species. Nematodes have
successfully adapted to every ecosystem.Also they are found in most systems of an animal
organism. They are found in eye:Thelaziacaliforniensis, Thelaziacallipaeda, brain:
Halicephalobusgingivalis, Toxocaracanis, Toxocaracatis gastro-intestinal tract:
Enterobiusvermicularis, Enterobiusgregorii, connective tissue: Loa loa filarial, kidney:
Dioctophymerenale, andmuscle: Trichinellaspiralis, Trichinellabritovi.
Upon invasion by parasitic worms the immune system is initially activated. However, the immune
system is often not able to eliminate parasites from the body. The reason might be that nematodes
can find way to reach an organism. Sometimes roundworms manipulate an organism. As a result
there are no clinical signs, but parasites inside the body. At the first it seems like animals can bear
Nematodes chronically, but that is the consequence of a parasite which manipulate host and inside
the organism. That would be too late even impossible to be free from parasites. Finally, animal
might die. The only way is to treat an animal with drug and let them to continue to live. Normally,
most systemic diseases can be treated by agonizing or antagonizing of receptors of diseased
organism.However, parasite treatment works completely in another way. Parasite mostly
suppressed by blocking animals’ challenge, in growth and reproduction. The most efficient
treatment will be shown in the main part of the review.
We all know that, parasites from economic point of view bring us huge amount of losses. They
are: death of an animal, other diseased animals by direct and indirect contact, reduction in milk
production, meat amount, drug expenditures, and food additives. Let’s defend our productive
animals from parasites! This process might be done by increasing hygiene of pasture.
Materials and methods
The research was done in Wageningen University of Life sciences, Animal sciences
faculty in 2015. Research methods: clinical, parasitological (helmintoovoscopical,
haemotological, pathological) have been done in laboratory animals. They are: mice, guinea pigs
and rabbits.
Discussion
Activation of cytokines by dendrytic cells.As a first example in this review I would like to
begin with dendritic cells (DC). They are antigen presenting cells that have a key role in the
regulation of the immune response. There are four main functions of DCs in an organism. They
are: presentation of an antigen and subsequent activation of helper T cells (Th2) response, inducing
and maintaining of immune tolerance and continuing of immune memory. In this review I would
like to explain howBalic et al., - (2009) showed DCability in activation of cytokines and their
subsequent effect on T cell in their response against roundworms.DCs in the intestine of mice,
they infected withN. brasiliensis and H. polygyrus. During the exploration of mesenteric lymph
nodes of intestine of mice against nematode induced IL-10, IL-6 or TNF-a cytokines.
Subsequently, inflammation might occur after induction of IL-6 and TNF-a. As an outcome after
essential induction of cytokines and binding to adaptive immune response DCs might also promote
eosinphilic and IgE responses.As an example, administration of 1000 Toxocaracanis eggs orally
into mice resulted in pulmonary inflammation. Where there are increase in eosinophils, IgE and
cytokine IL-5, airway hyper-reactivity were seen. As background then inflammation might show
anatomical symptoms such as: redness, loss of function, swelling, pain and heat. Clinical
267
symptoms resulted in wheezing, coughing and episodic airflow obstruction when eosinophils, IgE
and IL-5 increased.
(Pinelli et al., 2005)
Eosinophils control secondary infection of T. spiralis. As a challenge of DCs Eosinophils
are cells which develop in the bone marrow and play a key role in killing parasitic worms.
Eosinophils not only combat adult worms but also their eggs and larva. However, in a research of
Lu Huang at al. showed that eosinophils support the larva growth. By infecting mice with
eosinophil ablated mice, it was founded that eosinophils required for growth and survival of the
larvae in the muscle.By being beneficial for the larva, eosinophils control production of NO by
inducing IL-10 in the skeletal muscle. This showed us there can be some opposite results between
in vitro and vivo investigation. Eopsinophils resulted positively against secondary infection of
TrishinellaSpiralis. Although, eosinophil ablated mice had no effect on Gastro-Intestinal tract
immunity, it was only affected positively skeletal muscle. Even if eosinophils support primary
infection, it works against secondary infection. I believe that, as shown in the research eosinophils
always might reduce the colonization and migration of nematodes in the body of muscle cells.
IL-25 activation suppressTrichinellaspiralis.IL-25 is another important cytokine which can
be helpful in switching from Th2 response to produce IgE. As a result, IgE might work against
parasites. IL-25 is a cytokine that activate NF-kB and induce the production of IL8. IL-25 can be
secreted by Mast cells and Th2 helper T cells. It belongs to family of IL-17. Also IL-25 induces
other cytokines such as: IL-4, IL-5 and IL-13. This cytokine is really helpful in staying against GI
tract inflammation and breast cancer cells. Angkasekwinai et al., - 2013 showed that IL-25 might
induce cytokines to defend an organism against Trichinellaspiralis. Investigation was made in
mice and I believe that this response will work on other productive animals too. Firstly, organism
was checked by treating IL-25, as a result the number of larvae reduced in a muscle of mice in the
late stage of T. spiralis infection. I also can indicate that normally organism can answer without
any treatment. However, next step was to neutralize the activity of IL-25 by treating with antibody
control rat IgG, as I expected mice failed to reduce the number of T. spiralis larvae in the muscle.
That was proved by counting the numbers of larvae after treatment. Also I want to indicate that,
larvae after additional treatment with IL-25 was completely eliminated after 7 days.
IgE cytokine induced anti-parasitic response. After Th2 response cytokines and
eosinophilsswith to response IgE, it was found thatIgE and its receptors target proteins found in
the helminthes. There are well known proteins such as EF hand domain, PR-1 and topomyosin
which belong to nematodes. They are all proteins that interact with IgE during the infection. For
example, EF hand domain is one of the important proteins from found in Anguilla japonica,
Anisakis simplex, Blattellagermanica. The code of allergen is (AF007). EF hand domains are
mostly signaling proteins such as calmodulin and troponin C which undergo a conformational
change upon calcium binding. Another important allergen is PR-1. This protein has AF044 number
in official site. These proteins founded in Ctenocephalidesfelis, Dolichovespulaarenaria,
Polistesexclamans, Glossinamorsitans. That is why, IgE is very important in killing parasites.
Достарыңызбен бөлісу: |